1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   35
Ім'я файлу: Глухов.Основи ухода за хирургическими больними.docx
Розширення: docx
Розмір: 565кб.
Дата: 21.02.2021
скачати
Пов'язані файли:
1-2 кровотечі.doc
2 КУРС ЛЕКЦИЙ ПО ОБЩЕЙ ХИРУРГИИ.docx
Лекції з хірургії.doc
Дерматологія_силабус (1).docx
Местно при развитии нагноения наблюдается отечность и инфиль­трация тканей, гиперемия кожи, локальная гипертермия. Нередко кожные края раны расходятся, и начинается отхождение гнойного отделяемого. Гнойному воспалению могут сопутствовать лимфангоит и лимфаденит. Необходимо помнить, что в зависимости от вида возбу­дителя, локализации процесса, глубины раны в клинической картине может преобладать какой-либо отдельный симптом воспаления. В некоторых случаях гнойный процесс может протекать атипично (мас­сивная антибиотикотерапия, тяжелые сопутствующие заболевания и др.). Часто встречается вялое, малосимптомное развитие нагноения (гипоергическое), при котором общие и местные изменения выра­жены незначительно. Однако наличие у больного даже слабовыра- женных симптомов нагноения требует настороженности врача. Реже может наблюдаться бурная клиническая картина (гиперергическое течение), как правило, не представляющая больших сложностей для диагностики.

  1. Госпитальная инфекция

Нозокомиальная (госпитальная) инфекция — обусловливает раз­витие инфекционных заболеваний и осложнений, возникающих вследствие попадания в организм больничной микрофлоры во время пребывания больного в стационаре; включает также все случаи инфекционных заболеваний, развившихся в больнице, но обуслов­ленных попаданием патогенной микрофлоры еще на догоспитальном этапе, и ятрогенные инфекции — развивающиеся непосредственно в результате медицинских манипуляций.

Среди возбудителей внутрибольничной инфекции чаще встреча­ются: Streptococcus aureus etpyogenous, Klebsiella pneumoniae, Enterobacter species, E. coli, Proteus species, Candida albicans, вирусы. Источниками заражения могут быть больные, посетители и медперсонал учреж­дения.

Особенности нозокомиальной инфекции:

  • возбудители госпитальной инфекции устойчивы к большинству антибиотиков и антисептиков;

  • развитию госпитальной инфекции предрасположены лица со сниженной иммунобиологической резистентностью организма (вследствие болезни, перенесенной операции и др.);

  • в значительном числе наблюдений отмечается массовое инфици­рование со сходной клинической симптоматикой одним штам­мом микроорганизма.

Профилактика госпитальной инфекции:

  • выдача одноразового белья, полотенец, перчаток; обязательная дезинфекция матрацев, подушек, одеял;

  • гигиена медперсонала (использование спецодежды, обязатель­ная вакцинация, дезинфекция рук персонала перед прямым контактом с больным и после него; выявление носительства стафилококка);

  • организационные мероприятия (разделение гнойных и чистых палат, отделений, операционных и оборудования; ограничение приема посетителей, контроль за использованием антибактери­альных препаратов; контроль стерильности инструментов, пере­вязочного материала, рук хирурга, кожи, операционного белья);

  • сокращение длительности предоперационного периода;

  • рациональное назначение антибактериальных препаратов.

  1. АСЕПТИКА

Асептика (а - без, septicus - гниение) - комплекс мероприятий, обеспечивающий предупреждение попадания микробов в операцион­ную рану и организм больного.

Основной закон асептики - все, что соприкасается с раной, должно быть стерильно. В 1885 году русский хирург М.С. Субботин впервые оборудовал операционную, в которой работа осуществлялась стерильным перевязочным материалом. Т. Бильрот ввел форму для врачей хирургических отделений в виде белого халата и шапочки. В последующие годы Э. Бергман, используя открытия Л. Пастера, детально разработал методы асептики, положив начало современным направлениям асептики.

Традиционно выделяются два источника инфицирования: экзо­генный и эндогенный. Экзогенной считается инфекция, попадающая в рану из внешней среды.

Выделяют следующие пути распространения экзогенной инфекции:

  • воздушно-капельный (инфекция переносимая воздушными потоками — пыль, капли жидкости),

  • контактный (инфекция переносится с предметами, соприкасав­шимися с раневой поверхностью - руки хирурга, инструменты, перевязочный материал и др.);

  • имплантационный (инфекция, попавшая в рану с шовным и пластическим материалом, дренажами, протезами).

Эндогенной считается инфекция, находящаяся внутри организма (инфекция верхних дыхательных путей, желудочно-кишечного трак­та, мочевыводящих путей и др.) или на его покровах - аутоинфекция, которая может попасть в инфекционный очаг по лимфатическим или кровеносным сосудам, а также контактным путем.

Методы профилактики воздушно-капельной инфекции

К методам борьбы и профилактики воздушно-капельной инфек­ции можно отнести соблюдение медицинским персоналом и больны­ми правил личной гигиены, ношение медицинских масок, организа­цию адекватной вентиляции, применение бактерицидных ламп.

Медицинские маски используются для уменьшения выделения при дыхании капель секрета из носоглотки и ротовой полости в окружа­ющую среду.

В настоящее время широко используют только фильтрующие типы масок. Наиболее часто используют марлевые маски, при этом их эффективность напрямую зависит от количества слоев:

-трехслойные марлевые маски, полностью закрывающие нос и рот, задерживают до 70% выдыхаемых микроорганизмов;

  • четырехслойные - до 88%;

  • шестислойные - до 96%.

По мере увлажнения марли фильтрующая способность маски сни­жается. Так, например, спустя 3 часа от начала использования 100% трехслойных марлевых масок обильно загрязнены микрофлорой.

С целью повышения эффективности фильтрующих масок послед­ние пропитываются антисептиком (хлоргексидином биглюконатом и др.), высушиваются и автоклавируются, что позволяет удлинить срок эффективного использования в 1,5-2 раза.

Наиболее часто применяемые в настоящее время целлюлозные маски сохраняют эффективность не более часа.

Значительно реже применяются в настоящее время отражающие маски, в которых конденсат, образующийся при выдыхании воздуха,

стекает по стенкам маски в специально предназначенные для этой цели емкости. К недостаткам данного типа масок относится, прежде всего, неудобство использования.

Маски необходимо носить в следующих случаях:

  • всем медицинским работникам в операционной, перевязочной;

  • в ряде случаев в отделении реанимации и палатах интенсивной терапии;

  • при выполнении любых инвазивных манипуляций (перевязка в условиях палаты, инъекции и др.);

  • при эпидемии гриппа.

Вентиляция. Проветривание помещения позволяет снизить коли­чество микробных тел на 30%. Если используется система вентиляции с бактериальными фильтрами, то эффективность увеличивается до 70-80%.

В тех случаях, когда к уровню микробной обсемененности поме­щения предъявляют особые требования, может быть использована приточная вентиляция, обеспечивающая приток воздуха в большем объеме по сравнению с оттоком.

Операционные с ламинарным потоком воздуха. В операционных ука­занного типа стерильный воздух постоянно нагнетается через пото­лок операционной. В результате создается равномерное ламинарное движение воздуха, что препятствует возникновению турбулентных потоков, поднимающих с нестерильных поверхностей пыль и микро­организмы. Л

Палаты с абактериальной средой. Особенностью таких палат являет­ся наличие бактериальных фильтров, через которые обеспечивается ламинарное поступление воздуха. В палатах, как правило, поддержи­вается повышенная температура - 22-25° и низкая влажность (до 50%). Такие палаты наиболее часто используются в отделениях трансплан­тации органов и тканей и ожоговых центрах.

  1. Методы стерилизации

Одним из наиболее важных вопросов является профилактика контактной инфекции, которая осуществляется согласно основному принципу асептики: «Все, что соприкасается с раной, должно быть стерильно».

Основными источниками контактной инфекции являются следу­ющие:

  • руки хирурга;

  • кожные покровы больного;

  • хирургические инструменты;

  • шовный материал, дренажи, скобки, различные конструкции и др.;

  • Перевязочный материал.

Подробные сведения о методах подготовки рук хирурга и операци­онного поля приведены в главе 5.

Стерилизация — метод, обеспечивающий ликвидацию в стерилизу­емом материале как вегетативных, так и споровых форм (в отличие от дезинфекции, когда споровые формы могут сохраняться) патогенных, условно-патогенных и непатогенных микроорганизмов.

С целью снижения уровня микробной обсемененности применяют термическую (паровая, воздушная), лучевую (радиактивными микро­элементами, ультразвуковыми, ультрафиолетовыми и инфракрас­ными лучами) и химическую стерилизацию (окисью этилена, парами формалина, пропиленом, бромистым метилом и др.).

Согласно современным представлениям кипячение не относится к методам стерилизации.

Термическая стерилизация осуществляется сухим паром в авто­клаве (от 100 до 140 °С) или сухим жаром в сухожаровых шкафах (160—200 °С). Автоклавирование применяют для стерилизации пред­метов, которые не выдерживают сухожаровую стерилизацию (белье, резиновые изделия, синтетические предметы, закрытые ампулы и др.). Стерилизации ионизирую­щим излучением (2-2,5 Мрад) подвергаются лекарственные вещества, перевязочный мате­риал, шприцы, иглы, шовный материал, перчатки, системы для внутривенного введения.



Z \

Стерилизация

< >










Термическая

< >







f.

Лучевая

к >







' \

Химическая



Химическая стерилизация - наиболее широко использует­ся окись этилена. При концен­трации окиси этилена 555 мг/л через 1 час погибают стрептококк, кишечная палочка, синегнойная палочка; через 4—7 часов стафило­кокк. Находит применение стери­лизация надуксусной кислотой, 6% перекисью водорода и др.

Контроль стерильности

Существует 3 группы способов контроля стерильности.

Физический — контроль за температурой в стерилизационной каме­ре с помощью термометра; использование веществ (плавкие инди­каторы), имеющих определенную температуру плавления. Плавкие индикаторы представляют собой порошкообразные вещества разного цвета, герметично запаянные в стеклянные ампулы.

В медицинской практике используется различные плавкие инди­каторы: .

  • никотинамид (порошок белого цвета с температурой плавления 132 °С);

  • сахароза (порошок белого цвета с температурой плавления 180 °С);

  • гидрохинон (порошок белого цвета с температурой плавления 180 °С);

•левомицетин (порошок белого цвета с температурой плавления 132 °С);

  • тиомочевина (порошок желтого цвета с температурой плавления 180 °С);

  • бензойная кислота (порошок розового цвета с температурой плав­ления 120 °С);

  • мочевина (порошок фиолетового цвета с температурой плавления 132 °С) и др.

Недостаток данного способа контроля состоит в том, что мы не можем быть уверены, что температура поддерживалась на протяже­нии всего времени экспозиции.

Надежность контроля стерилизации может быть повышена путем использования термовременных индикаторов, отдельно для каждо­го уровня температуры (ТВИС-180, 160, 132, 120 НПО «ВИНАР»), Особенностью действия данных индикаторов является то, что они изменяют окраску до эталонного уровня только при соблюдении тем­пературного режима в течение всего периода стерилизации. Полоски индикатора вкладывают в контрольные точки стерилизатора, при этом, если хоть один индикатор по окраске отличается от эталона, стерилизация считается недостаточной.

Химический - использование различных химических процессов, протекающих при определенной температуре, например фильтроваль­ная бумага, смоченная в растворах крахмала и Люголя, приобретает темно-бурый цвет, при экспозиции в автоклаве при температуре свыше 120 °С крахмал разрушается, бумажка обесцвечивается. Недостаток метода аналогичен недостатку физического метода стерилизации.

Биологический — посев со стерильного материала на питательные среды. Нет роста колоний — материал стерильный, есть — необходима повторная стерилизация.

Бактериологический контроль качества стерилизации проводят один раз в 10 дней. Методы бактериологического контроля:

  • прямой метод - в стерильных условиях осуществляют забор образца материала (салфетка, шарик, шовный материал и т.д.), помещают в стерильную пробирку и отправляют в бактериоло­гическую лабораторию;

  • непрямой метод (биотест) - пробирку, содержащую известную культуру микроорганизмов помещают в стерилизатор вместе со стерилизуемым материалом и проводят стандартный цикл обра­ботки. После завершения стерилизации пробирку с биокульту­рой отправляют в бактериологическую лабораторию. Материал из бикса, использованного для биотеста для работы не исполь­зуют. При отсутствии роста микрофлоры делают заключение об адекватности стерилизации.

Недостаток метода заключается в том, что ответ мы получаем только спустя 48 часов после забора материала, а материал считается стерильным после автоклавирования в биксе тоже в течение 48 часов, т.е. материал должен быть использован до получения ответа из бакте­риологической лаборатории. Метод применяют для оценки качества работы стерилизационного оборудования, персонала и т.д.


1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   35

скачати

© Усі права захищені
написати до нас