Активність основних карбокміпептідаз в тканинах пренатально алкоголізірованних щурів

[ виправити ] текст може містити помилки, будь ласка перевіряйте перш ніж використовувати.

скачати

Пензенська ДЕРЖАВНИЙ ПЕДАГОГІЧНИЙ УНІВЕРСИТЕТ ІМЕНІ В. Г. Бєлінський

На правах рукопису

Мухіна Олена Станіславівна

АКТИВНІСТЬ ОСНОВНИХ карбоксипептидази В ТКАНИНАХ ПРЕНАТАЛЬНА АЛКОГОЛІЗІРОВАННИХ ЩУРІВ

03.00.04 - Біохімія

Дисертація на здобуття наукового ступеня кандидата біологічних наук

Науковий керівник доктор біологічних наук професор Генгін М. Т.

Пенза 2003

ЗМІСТ

СПИСОК СКОРОЧЕНЬ ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .... ... ... ... ... ... .... ... ... 4

ВСТУП ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .... .... ... ... 5

РОЗДІЛ 1. ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .... ... ... 8

1.1. Вплив хронічної алкоголізації на організм ... ... ... ... ... ... ... ... ... 8

1.2. Вплив пренатального хронічного впливу етанолу на організм ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .. ... ... .. 16

1.3. Ферменти обміну регуляторних пептидів ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... 21

1.3.1. Біологічна роль пептидаз ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .... ... ... ... ... ... .. 21

1.3.2. Карбоксипептидаза Н ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .... 23

1.3.3. ФМСФ-інгібіруемая карбоксипептидаза ... ... ... .... ... ... .. ... ... ... ... ... 28

1.4. Регуляторні пептиди і ферменти їх обміну в онтогенезі ... ... ... .. ... .31

РОЗДІЛ 2. МАТЕРІАЛИ І МЕТОДИ ДОСЛІДЖЕННЯ ... ... ... ... ... ... ... .37

2.1. Матеріали дослідження ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .. ... ... ... 37

2.2. Методи дослідження ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... 37

2.2.1. Моделювання хронічного споживання етанолу ... ... ... ... ... ... .... 37

2.2.2. Метод визначення активності ферментів ... ... ... ... ... ... ... ... .... ... .. 38

2.2.3. Метод проведення тесту «відкрите поле» ... ... ... ... ... ... ... .... ... ... .... 39

2.2.4. Статистична обробка результатів дослідження ... ... ... ... ... ... .... 40

РОЗДІЛ 3. РЕЗУЛЬТАТИ ДОСЛІДЖЕННЯ ... ... ... ... ... ... ... ... .... ... ... .. ... 41

3.1. Дослідження активності основних карбоксипептидази в тканинах щурів різного віку, які зазнали пренатальний вплив етанолу ... ... ... ... .41

3.1.1. Дослідження активності карбоксипептидази Н в тканинах пренатально алкоголізірованних щурів різного віку ... ... ... .. ... ... ... ... ... ... ... ... ... .41

3.1.2. Дослідження активності ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в тканинах пренатально алкоголізірованних щурів різного віку ... ... ... ... .49

3.2. Дослідження впливу хронічної алкоголізації на активність основних карбоксипептидази в тканинах дорослих щурів, які зазнали пренатальний вплив етанолу ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .. 57

3.2.1. Дослідження поведінки пренатально алкоголізірованних тварин у тесті "відкрите поле» ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .. ... ... ... ... 57

3.2.2. Дослідження впливу хронічної алкоголізації на активність карбоксипептидази Н в тканинах дорослих щурів, які зазнали пренатальний вплив етанолу ... ... ... ... ... ... ... ... ... .... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .. ... .. 61

3.2.3. Дослідження впливу хронічної алкоголізації на активність ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в тканинах дорослих щурів, які зазнали пренатальний вплив етанолу ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .. 68

ГЛАВА 4. ОБГОВОРЕННЯ РЕЗУЛЬТАТІВ ДОСЛІДЖЕННЯ ... ... ... ... ... 74

ВИСНОВКИ ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .. 88

ЛІТЕРАТУРА .... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... ... .. 91

СПИСОК СКОРОЧЕНЬ

АДГ - алкогольдегідрогеназа

АКТГ - адренокортикотропний гормон

АПМЯК - аминопропилмеркаптоянтарная кислота

АПФ - ангиотензинпревращающий фермент

ВІП - вазоактивний інтестинального пептид

ВНД - вища нервова діяльність

ГАМК - гамма-аміномасляна кислота

ГОМК - гамма-оксимасляная кислота

ГГС - гіпоталамо-гіпофізарно система

ГГГС - гіпоталамо-гіпофізарно-гонадна система

ГГНС - гіпоталамо-гіпофізарно-надниркова система

ГПЯК - гуанідінопропілянтарная кислота

ГЕМЯК - гуанидиноэтилмеркаптоянтарная кислота

КП - карбоксипептидаза

КПN - карбоксипептидаза N

КПВ - карбоксипептидаза У

ВПП - карбоксипептидаза Н

КРФ - кортикотропін-рилізинг фактор

НАД - нікотінамідаденін дінуклеотід

НАДФ - никотинамидадениндинуклеотида фосфат

ПОМК - проопиомеланокортина

Р0, Р14, Р28, Р45, Р120 - вік тварин (0, 14, 28, 45 і 120 діб після народження, відповідно)

ФМСФ - фенілметілсульфонілфторід

ФМСФ-КП - фенілметілсульфонілфторід-інгібіруемая карбоксипептидаза

ЦНС - центральна нервова система

ЕДТА - етілдіамінтетраацетат натрію

ВСТУП

Для сучасної біології та медицини має особливу значущість дослідження загальних і приватних закономірностей розвитку алкоголізму. Вирішення зазначених питань дозволить розкрити патогенетичні механізми цього захворювання і розробити ефективні способи його профілактики та лікування.

Одним з важливих аспектів проблеми алкоголізму є дослідження порушень, що відбуваються в організмі нащадків алкоголіків, та формування у них схильності до алкоголізму. При цьому викликають інтерес процеси, що відбуваються в онтогенезі. Відомо, що в ході індивідуального розвитку організму відбувається залежить від статі перебудова різних функціональних і, особливо, регуляторних систем: нервової та ендокринної [12]. Ця перебудова супроводжується значними змінами у функціонуванні пептідергіческіх систем, наприклад опіоїдних, що, безсумнівно, пов'язане зі зміною активності ферментів, що беруть участь в обміні біологічно активних пептидів [1, 25, 52, 55, 76, 212, 278].

Біологічно активні пептиди функціонують як гормони, нейрогормонів, нейромодулятора, нейромедіаторів [76], залучаючись в регулювання практично всіх процесів, що протікають в організмі, а також у розвиток багатьох патологічних процесів [76, 120]. Відома роль багатьох регуляторних пептидів, особливо опіоїдних пептидів, в патогенезі алкоголізму [7, 13, 18, 62, 69, 120, 128, 272].

Рівень біологічно активних пептидів в організмі багато в чому залежить від активності ферментів, які беруть участь у процессингу їх попередників, модуляції та інактивації [35, 48, 52, 56, 115, 126, 140, 142, 160, 172, 174, 205].

До ферментам, що беруть участь у метаболізмі регуляторних пептидів, відносяться, зокрема, основні карбоксипептидази - це екзопептидаза, каталізують відщеплення залишків аргініну і лізину з С-кінця пептидів. (КФ 3. 4. 17. 3), лизосомальная карбоксипептидаза В (КФ 3. 4. 17. 2), ФМСФ-ингибируемая карбоксипептидаза и некоторые другие. До них відносяться карбоксипептидаза В (КФ 3. 4. 17.1), карбоксипептидаза Н (КФ 3. 4. 17. 10), карбоксипептидаза М (КФ 3. 4. 17. 12), карбоксипептидаза N (КФ 3. 4. 17. 3), лізосомальних карбоксипептидаза В (КФ 3. 4. 17. 2), ФМСФ-інгібіруемая карбоксипептидаза і деякі інші.

На справжній момент вікові і статеві зміни активності ферментів обміну регуляторних пептидів, проісходяшіе в онтогенезі у нащадків алкоголіків не вивчені. Також немає даних про зміни активності цих ферментів у пренатально алкоголізірованних особин при подальшому впливі етанолу в постнатальному періоді.

Метою нашої роботи було вивчення ролі основних карбоксипептидази у розвитку схильності до формування алкогольної залежності у нащадків алкоголіків.

При виконанні роботи були поставлені наступні завдання:

Дослідити активність карбоксипептидази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в тканинах пренатально алкоголізірованних тварин різного віку.

Дослідити вплив хронічної постнатальної алкоголізації на активність основних карбоксипептидази в тканинах дорослих щурів, що піддавалися і не піддавалися впливу етанолу в ембріональному періоді життя.

Порівняти вплив алкоголізації на активність ВПП і ФМСФ-КП у тварин різної статі.

Наукова новизна і практична цінність роботи. Вперше вивчено вплив пренатальної алкоголізації на активність ВПП і ФМСФ-КП в тканинах самок і самців щурів. При цьому досліджена ферментативна активність як у дорослих тварин, так у період їх статевого дозрівання. Встановлено залежність зміни активності ВПП і ФМСФ-КП від статі і віку тварин. Показано статеве відміну зміни активності ферментів у тканинах пренатально алкоголізірованних тварин при постнатальної хронічної етанольних інтоксикації.

Отримані результати становлять інтерес для розуміння механізмів функціонування пептідергіческіх систем і ролі основних карбоксипептидази в нормі і при алкоголізмі.

Положення, що виносяться на захист:

  1. На основі аналізу вікової динаміки, регіонального розподілу активності карбоксипептидази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази та порівняння їх із рівнем біологічно активних пептидів, обговорюється біохімічна функція даних ферментів.

  2. Пренатальна алкоголізація викликає зміну активності досліджених ферментів у мозку і периферичних тканинах тварин обох статей у процесі розвитку.

  3. Пренатальна алкоголізація модулює зміна активності ВПП і ФМСФ-КП при подальшій постнатальної алкоголізації дорослих особин.

  4. Запропоновано гіпотетичну схему одного з можливих механізмів формування схильності до алкоголізму у пренатально алкоголізірованних особин за участю досліджених ферментів.

Апробація роботи. Матеріали дисертації представлені на 2-ий Всеросійський науково-практичної конференції (Волгоград, 2003) та підсумкових наукових конференціях професорсько-викладацького складу Пензенського Державного Педагогічного Університету (2002, 2003 р.р.). За темою дисертації опубліковано 10 робіт.

Структура та обсяг дисертації. Дисертація складається з 6 розділів: вступ, огляд літератури за темою дисертації, матеріали і методи досліджень, результати, обговорення, висновки. Робота викладена на 122 сторінках, ілюстрована 16 малюнками і 13 таблицями. Список література містить 353 найменування російською та іноземними мовами.

РОЗДІЛ 1. ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ

1.1. Вплив хронічної алкоголізації на організм

Ендогенні етанол і ацетальдегід є однією з важливих метаболічних систем організму тварин і людини, обмін цих речовин - невід'ємна частина систем підтримки гомеостазу [21, 24, 63, 71, 92, 176, 184, 314, 329].

Екзогенний етанол, який надходить в організм тварин і людини, окислюється трьома ферментативними системами: 1) алкогольдегідрогеназою за участю НАД, метаболізуються 75-90% надійшов етанолу, 2) мікросомальної етанолокісляющей системою за участю НАДФ і О 2, окислювальної ~ 10% етанолу, 3) каталазою, окислювальної ~ 2% етанолу [78, 81, 82, 89, 336].

При хронічній алкоголізації відбувається зміна активності ферментів окиснення етанолу, що призводить до порушення балансу між освітою та утилізацією ацетальдегіду, що в свою чергу істотно зрушує рівень ацетальдегіду в крові [14, 24, 58, 97].

Важливо відзначити існування статевих генетичних відмінностей активності ферментів, які беруть участь у метаболізмі етанолу [15, 22, 105, 107, 197].

Етанол і його метаболіти впливають на білки нервової тканини, печінки, крові, серця та ін тканин [98]. Відзначаються залежні від дози і тривалості впливу етанолу, порушення білкового синтезу та катаболізму [112]. Ці зміни відрізняються в різних відділах мозку і субклітинних структурах [2, 23, 61].

Формування алкоголізму пов'язане з порушенням ряду фізіологічних функцій, у регуляції яких значну роль відіграють ендогенні олігопептиди. Виявлено участь окремих олігопептидів (окситоцину, вазопресину, нейротензин, бомбезину, дельта-сон-індукуючого пептиду, холіцістокініна, опіоїдних пептидів, АКТГ і ін) у розвитку толерантності та фізичної залежності від етанолу, а також у формуванні алкогольного абстинентного синдрому. Встановлено участь біологічно активних пептидів (ангіотензину-ІІ, брадикініну, β-ендорфіну, енкефалінів і дельта-сон-індукуючого пептиду) в механізмах формування та реалізації алкогольної мотивації [65]. Так, відомо, що хронічний етанол посилює секрецію АКТГ та пролактину і знижує секрецію соматотропного гормону [3, 297], збільшує експресію мРНК КРФ в гіпоталамусі [297], збільшує концентрацію КРФ і АКТГ у ГГС [98]. За іншими даними [296] хронічна алкоголізація знижує вміст КРФ в гіпоталамусі. Також наголошується повишаеніе уровеня мРНК препротахікініна у вентральній оболонці, без зміни його в стрітуме [260], порушення синтезу в мозку дельта-сон-індукуючого пептиду [24]. Ацетальдегід стимулює синтез КРФ і експресію мРНК аргінін-вазопресину в паравентрикулярному ядрі гіпоталамуса [228].

Особливо важливо відзначити вплив етанолу на ендогенних опіоїдних систему організму та її участь у патогенезі алкоголізму. Причетність опіоїдних пептидів до реалізації ейфоричногоефекту, емоційного сприйняття, условнорефлекторной та інших форм ВНД з одного боку, і припущення про реалізацію через пептідергіческіе нейрони, епілептіморфних властивостей етанолу, а також характерних для синдрому алкогольної абстиненції тремору, судом і галюцинацій з іншого, свідчать про суттєву ролі опіоїдних пептидів в патогенезі алкоголізму [80].

Встановлено, що хронічне вживання алкоголю помітно знижує щільність і спорідненість опіатних рецепторів до своїх природних лигандам [79, 133, 135]. Відзначається вплив естрадіолу і прогестерону на цей ефект етанолу в гіпоталамусі, середньому мозку і корі, що частково пояснює статеві відмінності алкогольних ефектів [133].

При хронічної алкогольної інтоксикації знижується вміст деяких опіоїдних пептидів у відділах мозку [9, 18, 24, 84, 146, 348], що є відображенням процесу адаптації опіоїдної системи до надмірної стимуляції, що приводить до зниження функціональної активності цієї системи [9, 18, 84 ].

Звертає на себе увагу неузгоджене зниження рівнів різних опіоїдних пептидів під дією хронічної алкоголізації в різних відділах мозку [9, 18, ​​24, 84, 146, 348] і дані навіть про збільшення концентрації β-ендорфіну [98] та експресії мРНК ПОМК [228] . Панченко Л. Ф. з співавт. [80] вважають, що з такого дисбалансу в опіоїдної системи мозку починається формування залежності і толерантності до алкоголю, далі в процес втягуються пов'язані з нею нейромедіаторні і нейромодуляторную системи мозку, що порушує злагоджену роботу мозку в цілому. Абстинентний синдром посилює опіоїдний дефіцит [125, 198].

Посередництво при механізмів дії етанолу на організм через нейропептиди підтверджується також даними про вплив біологічно активних пептидів на споживання алкоголю і зміна ними ефектів, викликаних етанолом. , галанин, β- эндорфин увеличивают потребление этанола [235]; вещество Р частично нормализует нарушенные этанолом центральные механизмы реакции избегания [60;]. Так холецистокінін, бомбезин [235, 233], тіроліберін [234], кортикотропін-рилізинг фактор [120], ангіотензин ІІ, брадикінін, Leu-енкефалінів, енкефаліноподобний тетрапептід, дельта-сон-індукуючий пептид [65], Met-енкефалінів [54 ] знижують споживання алкоголю; вазоактивний інтестинального поліпептид, нейропептид Y, Галанін, β-ендорфін збільшують споживання етанолу [235]; речовина Р частково нормалізує порушені етанолом центральні механізми реакції уникнення [60;].

Важливим хронічним дією етанолу на нейропептиди є зміна активності різних ферментів їх обміну [11, 67, 211, 324, 332].

Відзначається збільшення активності ВПП у гіпофізі [28, 32, 45], гіпоталамусі і стріатумі щурів [28, 32]; зменшення активності АПФ в гіпоталамусі і стріатумі [28]. Хронічна алкоголізація і її скасування збільшують активність АПФ в гіпофізі і стріатумі немуріцідних щурів і в гіпофізі муріцідних щурів [53]; збільшують активність ВПП у гіпофізі, стріатумі і середньому мозку у немуріцідних щурів [53]. Початково різна активність ферментів в мозку для муріцідних і немуріцідних щурів вирівнюється в процесі споживання етанолу і його скасування до рівня, характерного для муріцідних щурів [53].

Спільний вплив етанолу і стресу викликає гіперактивацію ВПП у гіпоталамусі, стріатумі і середньому мозку щурів [32].

Хронічний вплив етанолу підвищує активність ВПП у гіпофізі і стріатумі віддають перевагу воду і віддають перевагу етанол щурів і знижує її в гіпоталамусі і таламусі віддають перевагу воду щурів; збільшує карбоксипептидази-У подібну активність у середньому мозку і стріатумі щурів; збільшує активність АПФ в гіпофізі і стріатумі і знижує в гіпоталамусі і таламусі віддають перевагу воду щурів [54].

Активність цих ферментів (ВПП, АПФ) змінюється в напрямку, який сприяє підвищенню рівня біологічно активних пептидів [28].

-эндорфина в среднем и переднем мозге мышей [146], увеличение активности энкефалинконвертазы А в среднем мозге, гипоталамусе и стриатуме крыс [19]. Хронічна алкоголізація викликає підвищення активності ферментів, які беруть участь у метаболізмі β-ендорфіну в середньому і передньому мозку мишей [146], збільшення активності енкефалінконвертази А в середньому мозку, гіпоталамусі і стріатумі щурів [19].

За даними Бєляєва Н. А. із співавт. [20] хронічна алкоголізація викликає в корі великих півкуль зниження питомої активності розчинної і мембранозв'язаних форм енкефалінконвертази, а в стріатумі - зниження питомої активності розчинної і збільшення активності мембранозв'язаних форми ферменту. Привертає увагу, що, і зміна загальної ферментативної активності має схожу спрямованість. Порушення, які відбуваються при хронічній алкоголізації, можуть бути викликані як зниженням здатності ферменту гідролізувати субстрат, так і спільним зміною каталітичних властивостей ферменту і його змісту у відповідному біологічному зразку. Автори вважають, що зміна активності ферменту відбувається через порушення метаболізму ферменту, а в разі мембранозв'язаних форми ферменту, можливо, і зміни ліпідного складу нейрональних мембран.

Слід підкреслити, що максимальна зміна активності енкефалінконвертази, ВПП, АПФ і ін ферментів обміну нейропептидів виявлені в середньому мозку, гіпоталамусі, стріатумі - відділах, що мають найбільш важливе значення для розвитку толерантності до алкоголю і залежності від нього. Представляється ймовірним залучення цих ферментів у патогенез алкоголізму.

Деякі суперечності даних, що стосуються зміни активності ферментів обміну нейропептидів та неузгодженість з зміною рівня нейропептидів, зокрема, Leu-енкефалінів і Met-енкефалінів в зонах мозку тварин і людини, які тривалий час споживають етанол, значно залежать від термінів і форми застосовувалася навантаження етанолом (з їжею , штучне введення всередину, добровільне споживання) [12, 54]. Відзначається також, що кількість визначається пептиду є, по суті, інтегративної величиною співвідношення нейропептідобразующей і нейропептіддеградірующей активності в конкретному нейрональной регіоні. Безпосереднє визначення активності пептидаз, проведене в одиничних дослідженнях показує неоднозначність таких змін, трактування яких представляється скрутною.

При хронічній алкоголізації в мембранах клітин відбувається зменшення ступеня ненасиченості ліпідів мембран, збільшення в мембранах вмісту холестерину, зменшення кількості мембранозв'язаних аміногліканов. Ці фізико-хімічні зміни, що не залежать від тканинної приналежності клітин (кров, печінка, центральна нервова система), дозволяють компенсувати флюідізірующее дію етанолу і лежать в основі механізмів розвитку толерантності клітин до впливу етанолу при його хронічному споживанні [12].

Зміни фазового стану мембрани справляють істотний вплив на процеси мембранного транспорту, на системи трансмембранної передачі інформації, на активність мембранозв'язаних ферментів [51, 91, 252, 265].

Аналіз функціонального стану ГГНС у здорових і страждаючих алкоголізмом людей, а також дані, отримані в експериментах на різних тварин під впливом хронічної алкогольної інтоксикації, свідчать про виражений вплив етанолу на різні компоненти цієї системи [24, 66].

При хронічній алкоголізації спостерігається зміна функціонування ГГНС. Спочатку відбувається порушення на рівні гіпоталамуса і гіпофіза. Це призводить до гіперсекреції АКТГ, який діє на клітини кори надниркових залоз, стимулюючи синтез кортикостероїдів [24, 123, 222, 276, 320, 321]. Потім фаза первинного підвищення секреції цих гормонів змінюється розвитком толерантності, адаптації ГГНС до стимулюючій дії етанолу [24, 122, 209, 321]. Причому зниження функціонування ГГНС, бачимо у експериментальних тварин носить возрастозавісімий характер [189, 345]. Розвиток відносної недостатності адренокортикальної функції при алкогольної інтоксикації обумовлено прямим токсичною дією алкоголю і продуктів його метаболізму на продукцію глюкокортикоїдів у надниркових і впливом на процеси біосинтезу та вивільнення АКТГ у гіпофізі, а також на нейротрансміттерние системи, що регулюють синтез і вивільнення кортіколіберіна в гіпоталамусі [24].

Крім АКТГ, хронічна алкоголізація впливає і на інші пептиди ГГНС [276, 290, 304].

Хронічна алкоголізація знижує рівень лютеїнізуючого та фолікулостимулюючого гормонів у плазмі крові у самок і самців щурів [298, 305]. У самців при цьому в гіпофізі не змінюється концентрація цих гормонів і гонадотропін-рилізинг гормону, але знижується кількість пролактину. У сім'яниках знижується вміст рецепторів лютеїнізуючого гормону, підвищується вміст рецепторів фолікулостимулюючого гормону і не змінюється вміст рецепторів пролактину і гонадотропін-релізинг гормону [305].

Відзначаються статеві відмінності у формуванні алкогольної залежності.

У процесі розвитку експериментального алкоголізму рівень споживання етанолу вище у самок щурів у порівнянні з самцями, хоча перевагу швидше формується у самців [106, 141, 214, 294]. У той же час є дані про те, що самці макак п'ють більше, ніж самки [343]; щури обох статей споживають етанол в однакових кількостях, але у самок довше підтримується перевагу до етанолу [113]. У самців мишей вище, ніж у самок, чутливість до хронічного седатівному гіпнотичному дії етанолу [293]. У самок щурів при більш повільному розвитку залежності від етанолу відбувається більш швидке відновлення, ніж у самців [148]. У жінок відмічається більш високий рівень алкоголю в крові, ніж у чоловіків при прийомі однакової кількості етанолу [186, 337]. У людей обох статей рівень споживання алкоголю залежить від генотипу [106, 306, 320] і віку [306].

Встановлено, що у самок тварин вищий чутливість до викликаного алкоголем пошкодження печінки, а також частіше зустрічається полінейропатія і мозочкова атаксія, ніж у самців [337].

Під час скасування етанолу після його хронічного споживання ЦНС самок щурів у порівнянні з самцями більш сприйнятлива до пошкодження поліамінових нейронів [288], більш чутлива до антиконвульсантной дії нейростероідов [149], і виявляє більший відповідь на гостре введення етанолу [148]. Однак наводяться дані про меншу чутливості самок до скасування етанолу, що частково пояснюється впливом естрогену [215]. Впливом статевих гормонів також можна пояснити й інші факти статевих відмінностей при абстинентному синдромі [216, 217].

Хронічне споживання алкоголю самками змінює співвідношення стадій естрального циклу, що свідчить про порушення гіпоталамічних гормональних функцій. У самок тварин, у порівнянні з самцями, відзначаються більш виражені зміни в кінетиці етанолу й ацетальдегіду, що також сприяє споживанню високих доз етанолу [4]. При розвитку алкоголізму у самців важлива система позитивного підкріплення мозку, а у самок - система, метаболізуються етанол [4]. Зокрема є дані про статеві відмінності експресії і стимуляції ізоферментів АДГ [105, 215], причому в механізм цих відмінностей залучаються андрогени, які надають інгібуючу дію, а також прогестерон і естроген, які надають стимулюючу дію [197]; алкоголізація не змінює активність АДГ печінки у тварин обох статей, але з підвищенням споживання етанолу активність обох ізоферментів підвищується.

Алкоголь по-різному діє на ГАМК-бензодіазепінових рецепторів у етанол-залежних чоловіків і жінок [149, 240], але фізіологічні причини цього не ясні. Відомо, що при хронічній алкоголізації не змінюються рівні білка субодиниць ГАМК-рецепторів у корі етанол-залежних самок щурів, на відміну від самців, у яких ці рівні знижені [149].

У самців і самок щурів спостерігається модулюючий (знижує) вплив на перевагу до етанолу, який чиниться дигідротестостерону та естрадіолом [113].

Естадіол і прогестерон впливають на здатність етанолу змінювати кінетичні параметри зв'язування μ-опіоїдних рецепторів у відділах мозку (гіпоталамусі, середньому мозку і корі), що частково пояснює статеві відмінності алкогольних ефектів [133].

Таким чином, хронічна алкоголізація є причиною численних порушень на органному, тканинному, клітинному і молекулярному рівнях. Зокрема, відзначаються порушення у функціонуванні ферментних систем. Для розуміння механізмів зміни активності ферментів при алкоголізмі та ролі цих змін у формуванні алкогольної залежності цікаво порівняти вплив хронічної етанольних інтоксикації на активність ферментів обміну біологічно активних пептидів у тканинах інтактних та пренатально алкоголізірованних щурів. Численні дані про статеві відмінності при хронічній алкоголізації вимагають порівняння змін активності ферментів при цьому у тварин різної статі.

1.2. Вплив пренатального хронічного впливу етанолу на організм

Етанол робить багатобічна дія на організм не тільки особин, безпосередньо його споживають, але і їх потомства.

Пренатальна алкоголізація формує так званий алкогольний синдром плоду або синдром ембріофетопатіі. За сучасними уявленнями - це сума патологічних симптомів, обумовлених аномаліями розвитку плоду і функціональними порушеннями в результаті споживання алкоголю матір'ю під час вагітності. Особливо вразливі ті стадії, коли відбувається диференціювання органів і систем плоду.

Незважаючи на те, що в системі «мати-плід» існують механізми, що сприяють зменшенню ефекту алкоголізації матері під час вагітності на плід [26, 90, 227], етанол проходить через плаценту і плід піддається алкогольної інтоксикації.

У цілому, при впливі алкоголю на потомство виділяють наступні зміни: 1) підвищення біологічного ризику формування алкоголізму; 2) різноманітні соматичні порушення аж до важкої органічної патології - алкогольної ембріофетопатіі; 3) порушення поведінки, емоційних і психічних функцій [6, 26, 64, 130].

Високий ризик захворювання на алкоголізм у нащадків алкоголіків пояснюється зміною функції геному. Зокрема, можуть відбуватися порушення в активності систем генів, що беруть участь у розвитку і диференціювання нервових клітин. - fos – белка, являющегося продуктом экспрессии «раннего» гена, выполняющего роль «третичного мессенджера». Критичним моментом формування нейрофізіологічних механізмів алкогольної залежності і толерантності може бути вплив на експресію «ранніх» генів, наприклад гена c - fos - білка, що є продуктом експресії «раннього» гена, що виконує роль «третинного месенджера». У відповідь на екстрацелюлярний стимуляцію змінюється активність інших генів, що призводить до довготривалих перебудовам в нейронах мозку. - fos в структурах головного мозга одинаков у пренатально алкоголизированных и контрольных животных, постнатальное введение этанола вызывает мощное усиление экспрессии этого гена у потомков алкоголиков крыс в отличие от интактных животных [8]. Незважаючи на те, що фоновий рівень експресії гена c - fos в структурах головного мозку однаковий у пренатально алкоголізірованних і контрольних тварин, постнатальний введення етанолу викликає потужне посилення експресії цього гена у нащадків алкоголіків щурів на відміну від інтактних тварин [8].

Божко Г. Х. і Волошин П. В. [238] вважають, що порушення структури та функції генетичного апарату клітин переважно обумовлено дією ацетальдегіду. Алкогольна інтоксикація викликає формування поперечних ковалентних зв'язків між комплементарними нитками ДНК і між хроматиновий білками, викликає зміна синтезу гістонів та негістонових білків, порушуючи структуру хроматину.

Незважаючи на те, що не виявлено конкретний ген або алелі, відповідальні за ефекти алкоголю, дослідження показують залежність питного поведінки і ризику розвитку алкоголізму від генів, що кодують ферменти метаболізму етанолу. Відзначаються генетичні відмінності активності цих ферментів [15, 22, 107].

Пренатальна алкоголізація викликає гіперреактивність і зміна зворотного зв'язку ГГНС [177, 178, 182, 224, 282]. Це проявляється в одноразовому та / або тривалому підвищенні рівня АКТГ і / або кортикостерону, в тому числі і у відповідь на стрес, збільшення чутливості надниркових залоз до АКТГ, зміна чутливості гіпофіза до КРФ [182, 282]. Причому цей ефект пренатального впливу етанолу залежить від статі тварини. У ембріонально алкоголізірованних самців щурів гіпоталамус робить більший стимулюючий ефект, і / або гіпофіз більш чутливий до речовин, підвищує секрецію АКТГ, в порівнянні з пренатально алкоголізірованнимі самками і контрольними тваринами [182]. Пренатально алкоголізірованние самки мають більш високий рівень тривожності і більш високий рівень кортикостерону, ніж пренатально алкоголізірованние і контрольні самці і самки контрольні [280, 281, 291]. . al . У пренатально алкоголізірованних самок, але не у самців дексаметазон викликає підвищення рівнів АКТГ і кортикостерону [177]. Aird et. Al. [109] припускають організаційний вплив статевих гормонів на ці ефекти алкоголю. У пренатально алкоголізірованних самок, на відміну від самців, спостерігається зміна вікової динаміки рівня мРНК КРФ в гіпоталамусі у порівнянні з контрольними тваринами. Адреналектомія матерів, комбінована з пренатальної алкоголізацією, викликає зміну вікової динаміки рівня мРНК КРФ і у самців і у самок.

У пренатально алкоголізірованних самців знижується рівень мРНК ПОМК, а у самок не змінюється. Адреналеектомія матерів повертає рівень мРНК ПОМК у самців до норми, а у самок - знижує [109].

Пренатальний вплив етанолу змінює дію статевих гормонів і впливає на репродуктивну функцію самок і самців. Пригнічується секреція естрогену у самок щурів [322]; порушується збільшення кількості клітин, що експресують мРНК проенкефаліна в гіпоталамусі самок щурів у відповідь на введення естрогену, що спостерігається в нормі [239]; знижується рівень тестостерону у самців, якщо він вводиться до або під час періоду діффференціаціі гіпоталамуса та сім'яників [265].

Важливо відзначити, що в пренатальному періоді на організм, що розвивається, крім власних нейрогормональних факторів і вводиться етанолу, впливають гормони і нейрогормони матері і плаценти. Введення етанолу до складу рідкого корму з 8-го дня вагітності змінює гормональний статус матері: вміст пролактину майже не змінюється, а тестостерону і прогестерону - підвищується [64]. Ці зміни, природно, позначаються на розвитку плода.

Пренатальна алкоголізація, вносячи глибокі зміни в організм на клітинному, тканинному і органному рівнях, проявляється в зміні поведінки. У пренатально алкоголізірованних тварин відзначається гіперреактивність [309, 299] або зниження рухової активності [70, 83, 241] із зменшенням общемозговой і гіппокампіальной маси [132, 309] і зменшенням розміру таламуса [241]. . J . et . al . У самок щурів спостерігається велика дослідницька активність, тобто більш високий рівень тривожності, ніж у самців, і більш високий рівень кортикостерону [281]. Druse M. J. Et. Al. [153] відзначають порушення моторної функції у пренатально алкоголізірованних щурів, супутнє підвищення рівня мРНК проенкефаліна в стріатумі і прилеглих ядрах і аномалії в чорній речовині.

Пренатальний вплив етанолу впливає на багато нейрохимические та клітинні компоненти мозку, що розвивається. Різні відділи мозку відрізняються реакцією на токсичний ефект етанолу. В одному і тому ж відділі різні клітинні популяції теж проявляють різну чутливість до етанолу. Етанольних інтоксикація в ембріональному періоді порушує поділ, ріст, диференціацію і міграцію клітин, розвиток астроглії і нейрональних-гліальні взаємодія, пошкоджує нейротрансмітерние системи та / або їх рецептори [190, 269], є причиною загибелі нейронів у гіпокампі [226], мозочку [134 ], корі [232, 268], у вестибулярному комплексі [154], знижує рівень мієлінізації [284]. Вона впливає на ДНК, РНК і білковий синтез, знижує рівень мітозу, змінює зміст і поширення деяких цитоскелетних білків, цитозольних і мембранних глікопротеїнів [191, 208]. [114]. Пренатальна алкоголізація порушує зміст різних нейропептидів у відділах мозку, зокрема, нейротрофінів (фактора росту нервів) і нейропептида Y [114]. Пренатальна інтоксикація впливає на ферментативну активність в ЦНС: змінює посттрансляційної модифікацію оксіазотсінтази-1 і -3, знижуючи їх активність [225], зменшує активність протеїнкінази С, що є причиною глибоких і тривалих дефіцитів у клітинних сигнальних механізмах, пов'язаних з синаптичної пластичністю і формуванням пам'яті [111], пригнічує експресію мРНК ферментів катехоламінергіческой системи [331] і т. д.

Особливий інтерес, викликає зміна рівнів опіоїдів при пренатальної алкоголізації. - и Leu -энкефалинов в гипоталамусе без изменения в коре, гиппокампе [69]; увеличивает содержание Met - и Leu -энкефалинов в бледном шаре без изменения их содержания в гипофизе [263]. Пренатальний вплив етанолу вибірково змінює зміст енкефалінів в різних регіонах мозку: підвищує рівень проенкефаліна в стріатумі і прилеглих ядрах [153]; знижує кількість Met - і Leu-енкефалінів в гіпоталамусі без зміни в корі, гіпокампі [69]; збільшує вміст Met - і Leu -енкефалінів в блідій кулі без зміни їх змісту в гіпофізі [263]. Такі зміни рівнів енкефалінів в мозку, на думку деяких авторів [69], формуються в процесі постнатального онтогенезу і обумовлені не прямою дією етанолу на систему ендогенних опіоїдів, а розвивається в результаті опосередкованих реакцій.

Таким чином, можна зробити висновок, що пренатальна алкоголізація робить істотний різноманітне вплив на організм. У тому числі і на вміст біологічно активних пептидів. При цьому практично відсутні дані про вплив пренатальної етанольних інтоксикації на ферменти обміну цих пептидів, що викликає інтерес для дослідження.

1.3. Ферменти обміну регуляторних пептидів

1.3.1. Біологічна роль пептидаз

У регуляції функцій організму, поряд з класичними медіаторами, важлива роль належить регуляторним факторів пептидної природи. Регуляторні пептиди широко поширені в різних тканинах, у тому числі й у нервовій. Вони беруть участь у нейрохімічних механізмах, які підтримують основні гомеостатичні константи організму, формують і здійснюють цілеспрямоване поведінка, а також у процесах, контролюючих емоційну сферу, мотивацію, пам'ять [5, 10, 75, 93, 104]. Ймовірно, саме біологічно активним пептидів належить важлива роль в інтеграції функціональних систем організму, забезпеченні їх злагодженої роботи в умовах, що змінюються навколишнього середовища. Вони грають ключову роль в регуляції імунологічної захисту, у запуску адаптивних захисних реакцій при інфекції, пошкодженні тканин, стресі, а також у формуванні патологічних станів організму, в тому числі і алклоголізма [55, 76, 230]. Багато нейропептиди залучаються до регуляцію вікових змін, в т. ч. і процесів статевого дозрівання [12, 16, 25, 94, 95].

Одним з етапів метаболізму пептидів є обмежений протеоліз, який грає головну роль, як у процесах їх біосинтезу, так і в процесах інактивації. Пептідгідролази, здійснюють процесинг і деградацію пептидних регуляторів, забезпечують функціонування і певне співвідношення їх в організмі.

Більшість попередників нейропептидів включають послідовності пептидів, що володіють різною біологічною активністю. Те, які саме пептиди будуть утворюватися з попередника, залежить від набору протеїназ, що діють на молекулу попередника, і від співвідношення їх активностей [185, 242, 261, 352].

Інактивація пептидів також здійснюється шляхом протеолізу і характеризується наступними основними особливостями. По-перше, один і той же пептид може розщеплюватися різними пептідаза, а один і той же фермент може перетворювати різні пептиди [1, 212]. По-друге, на відміну від класичних медіаторів, продукти деградації пептидних регуляторів можуть мати власну біологічну активність, яка може відрізнятися від активності початкового пептиду як кількісно, ​​так і якісно [10].

При паракрінной дії пептиду активність позаклітинних пептидаз визначає час життя пептиду, відстань, на яку він може продіффундіровать, а, отже, і спектр мішеней, на які він діє. Таким чином, за допомогою протеїназ здійснюється регуляція фізіологічних ефектів пептидів на етапі біосинтезу і на етапі інактивації пептидів.

Особливість пептидної регуляції функціонального стану організму полягає в тому, що в кожній ділянці в кожний момент часу повинна підтримуватися необхідна концентрація певних пептидів. Це може бути досягнуто точної і узгодженої роботою протеїназ, що здійснюють синтез і деградацію пептидів, тобто підтриманням у головному мозку певної просторово-часової мозаїки протеолітичної активності. При зміні зовнішніх умов, або якому-небудь дії (наприклад, алкоголізації) ця мозаїка певним чином змінюється, щоб забезпечити роботу функціональних систем організму в нових умовах [59].

У кінцевій стадії утворення активних пептидів з неактивних попередників і в початкових стадіях їх деградації беруть участь основні карбоксипептидази - ферменти, відщеплюють залишки основних амінокислот (аргініну і лізину) з С-кінця пептидів. До них, зокрема, відносяться карбоксипептидаза Н, і нещодавно відкрита ФМСФ-інгібіруемая карбоксипептидаза. Їм належить важлива роль в регуляції рівнів активних нейропептидів в організмі [35, 40, 41, 43, 47, 48, 56, 101, 102, 131, 136, 151, 160, 172, 174, 200, 204, 292], ніж обумовлений інтерес до вивчення цих ферментів, у тому числі і при різних фізіологічних і патологічних процесах, що протікають в організмі [29, 30, 32, 39, 45, 49, 50, 52, 53, 54, 139, 140, 144, 175, 187, 196, 210, 213, 236, 237, 243, 253, 273, 283, 300, 303, 308, 311, 335, 336, 339, 340, 341].

1.3.2. Карбоксипептидаза Н

Карбоксипептидаза Н (ВПП, енкефалінконвертаза, карбоксипептидаза Е, КФ 3.4.17.10) вперше була виділена і охарактеризована в 1982 р. Fricker LD і Snyder SH з мозку, гіпофіза і хромафінних гранул надниркових залоз бика [172].

50000 – 55000, состоит из одной полипептидной цепи. Карбоксипептидаза Н є глікопротеїном з Mr 50000 - 55000, складається з однієї поліпептидного ланцюга. Це тіолзавісімий металоферментів, в активному центрі якого знаходиться іон Zn 2 + [203, 204]. 2+ , п-хлормеркурфенилсульфатом, АПМЯК, 2-меркаптометил-3-гуанидилэтилтиопропановой кислотой, ЭДТА и 1,10-фенантролином [37, 151, 174, 200, 204]. Фермент має оптимум рН 5,5-6,0 [151, 188, 205, 312, 350], pI 4,9 [251], інгібується Cu 2 +, Hg 2 +, Cd 2 +, п-хлормеркурфенілсульфатом, АПМЯК, 2-меркаптометіл-3-гуаніділетілтіопропановой кислотою, ЕДТА і 1,10-фенантроліном [37, 151, 174, 200, 204]. Найбільш ефективними інгібіторами є ГЕМЯК і ГПЯК з K i 8,8 і 7,5, відповідно [145, 169, 301, 327]. ВПП інгібується Met-і Leu-енкефалінів (K i 12,0 - 5,5), речовиною Р, вазопресином, окситоцином (при концентрації 2 - 20 мМ), тиреотропін-рилізинг-фактором [202, 287, 302]. Лізин та аргінін є конкурентними інгібіторами ВПП. K i для аргініну і лізину рівні, 4,6 ± 1,3 і 7,6 ± 1,9 [199], відповідно. Бромацетил-D-Arg, необоротний інгібітор КПВ і КПN, також інгібує і ВПП [169]. Іони цинку, кальцію, магнію, N-етілмалеімід і ФМСФ не впливають на активність ВПП [37, 151]. Фермент активується іонами Co 2 + в залежності від рН середовища в 5-10 разів, іонами Ni 2 + - в 2-3 рази [37, 145, 151, 174, 204, 301, 325, 327]. Агрегація, конформаційні зміни і мембранна асоціація ВПП залежать від рН середовища та концентрації іонів Ca 2 + [121, 318]. Зменшення pH і збільшення концентрації іонів Ca 2 + індукують агрегацію даного ферменту і його асоціацію з мембранами [121, 318]. Іони Ca 2 + при підвищеній температурі дестабілізують ВПП [274].

ВПП володіє практично абсолютною специфічністю по відношенню до пептидним субстратів з С-кінцевими залишками основних амінокислот. Фермент добре відщеплює залишки-Lys-Arg і від Arg 8-вазопресин-Gly-Lys-Arg, 125 I-Met-енкефалінів-Arg, 125 I-Met-енкефалінів-Lys, гіппуріл-L-Arg, Leu-енкефалінів-Arg , даларгіну, залишки-Lys 15-Lys 16-Arg 17 з С-кінця АКТГ 1-14 [46, 48, 86, 151, 200, 204, 344], але з дуже низькою спорідненістю відщеплює залишок гістидину з карбоксильного кінця прооксітоціна [ 277, 317].

ВПП існує у двох формах: розчинної і мембранозв'язаних. Обидві форми є глікопротеїнами. Вони мають ідентичну субстратне специфічність і чутливість до груп-специфічним реагентів. Розчинна форма ВПП більш активна, ніж мембранозв'язаних. Mr мембранної форми 55 000 - 57 000, Mr розчинної форми 53000 - 57000 [145, 188, 193, 200, 205, 206, 325, 330, 350]. Відмінності в молекулярній масі мембранозв'язаних і розчинної форм ВПП, мабуть, пов'язано з наявністю у першій, так званого "мембранного якоря". З-кінцева область мембранозв'язаних ВПП (51 амінокислотний залишок) утворює амфіфільних a-спіраль, яка і може служити гідрофобним "мембранним якорем" [166, 270, 338]. У секреторних гранулах ВПП зв'язується з детергент-стійкими ліпідними доменами мембран, багатими глікосфінголіпідамі і холестеролом [150]. Така асоціація ВПП з мембранами є необхідною умовою для виконання сортуючої функції в регульованому секреторному шляху [150]. Розчинна і мембранозв'язаних форми ВПП ймовірно відрізняються механізмами, що регулюють їх активність [33]. [37, 145, 286]. В даний час виявлено кілька видів мембранозв'язаних і розчинної форм ферменту, що відрізняються молекулярною масою, значенням pI [37, 145, 286]. Співвідношення мембранозв'язаних і розчинної форм ВПП у різних клітинах і тканинах відрізняється [161, 285]. За деякими даними мембранозв'язаних форма може переходити в розчинну при підвищенні рН [121, 318], при холестероловий виснаженні мембран [150]. и Devi [167] в секреторных везикулах мембраносвязанная форма КПН может переходить в растворимую путем протеолитического удаления С-концевой последовательности КПН. За даними Fricker і Devi [167] у секреторних везикулах мембранозв'язаних форма ВПП може переходити в розчинну шляхом протеолитического видалення С-кінцевий послідовності ВПП. Фермент, який здійснює цей перехід, активується іонами кальцію. Ймовірно, перетворення мембранозв'язаних форми в розчинну може регулюватися іонами кальцію [274], концентрація яких у клітині змінюється у відповідь на різні стимули, що, у свою чергу, впливає на секрецію нейропептидів [116]. З іншого боку, Parkinson [285, 286] висловлює сумніви щодо можливості переходу мембранозв'язаних форми в розчинну допомогою С-кінцевого протеолізу.

Ген ВПП клонований і секвенований [110, 165, 219, 220, 253, 255, 300, 316]. У послідовності гена ВПП присутні регуляторні ділянки, що підвищують активність транскрипції [157, 218, 220, 237, 316], проте рівень мРНК препроКПН і нейропептидів корелює не завжди [170, 171, 187].

При мутації в гені, що кодує ВПП (одинична точкова мутація Ser202 на Pro), зменшується ефективність процесингу прогастріна [236, 336], порушується процесинг проінсуліну (і порушення внутрішньоклітинного фолдінга КП Н) [139, 210, 273, 339, 340], синтезу соматостатину і хромограніном А [196], пригнічується процесинг проглюкагона і глюкагон-подібного пептиду 1 [175], відбувається порушення внутрішньоклітинного транспорту проопиомеланокортина та гормону росту [311], дозрівання пронейротензіна і промеланоцитстимулирующего гормону [303]. Це призводить до численних ендокринною порушень, включаючи гіперінсулінемію і безпліддя [140, 243, 273]. 2 DM ) синтезируется КПН, кодированная мутантными генами, с измененными свойствами (рН оптимумом, субстратной спечифичностью) [137]. У людини при діабеті (T 2 DM) синтезується ВПП, кодованих мутантними генами, зі зміненими властивостями (рН оптимумом, субстратної спечіфічностью) [137].

ВПП синтезується у вигляді неактивного попередника з Mr 75000, що складається з 476 амінокислотних залишків [206, 300, 319]. -концевому посттрансляционному процессингу [192, 201, 300]. Потім він піддається С-і N-кінцевого посттрансляційної процесингу [192, 201, 300].

Активність ВПП в мозку і тканинах корелює з рівнем мРНК ВПП [124, 167] і в цілому відповідають розподілу біологічно активних пептидів і їх попередників [48, 163, 164]. Найбільш високі рівні мРНК ВПП виявлені в передній і проміжної частках гіпофіза, хромафінної гранулах надниркових залоз, острівцях Лангерганса підшлункової залози [108, 144, 151, 172, 173, 174, 193, 200, 207, 246, 251, 279, 285, 323, 330, 344]. Кілька нижче рівні мРНК ВПП виявлені в задній частині гіпофізу, відділах мозку, слинних залозах [174, 246, 250, 285, 323, 330]. Найбільш низькі рівні виявлені в стовбурної частини головного мозку, спинному мозку, легенях, серці, шлунково-кишковому тракті, печінці та нирках [248, 249]. Фермент також виявлений в центральних нейронах мигдалини [246]. Тканинне і регіональний розподіл ВПП схоже у різних видів тварин і людини [168, 221]. Встановлено, що ВПП асоційована зі структурними елементами ендоплазматичного ретикулуму, комплексу Гольджі і секреторними везикулами, де протікає процесинг попередників різних біологічно активних пептидів [36, 163]. Є відомості про те, що ендоплазматичний ретикулум і елементи комплексу Гольджі містять мембранну форма ВПП (57000), секреторні гранули - розчинну форму ВПП (54000) і мембранну [192]. У регуляторному секреторному шляху ВПП виконує сортують функцію [139, 140, 183]. [131, 160], пептидов (включая проэнкефалин, проопиомеланокортин, протахикинины А и В, хромогранин А и В, секретогранин), с образованием более 100 новых пептидов [136] и т. д. ВПП бере участь у процессингу багатьох регуляторних пептидів: опіоїдних [35, 48, 56, 172, 174, 200, 204], пептидних гормонів гіпофіза, гіпоталамуса, шлунково-кишкового тракту, плаценти, фактора росту [35, 151, 200, 204, 292 ], пептидів, що мають єдиного попередника proSAAS [131, 160], пептидів (включаючи проенкефалін, проопиомеланокортина, протахікініни А і В, хромограніном А і В, секретогранін), з утворенням більш 100 нових пептидів [136] і т. д.

Рівень мРНК ВПП і активність ферменту в культурах клітин здатні змінюватися у відповідь на зовнішні впливи: при зміні умов освітленості [308]; під дією фактора росту нервів [144, 187, 237, 283, 335]; розчину KCl [144, 170]; бромкриптину [283]; дексаметазону [39, 300]; кортикотропін-рилізинг-фактора [253, 300]; гідрокортизону [39]. Короткочасна загальна ішемія знижує, а тривала підвищує активність ВПП і рівень її мРНК в гіпоталамусі і корі щурів [213]. Одноразовий емоційно-больовий стрес викликає підвищення карбоксіпептідазно-Н-подібної активності в гіпофізі і сироватці щурів, тривалий - підвищення в гіпофізі і зниження в сироватці [45]. Активність ВПП через 6 годин введення етанолу (в дозі 4 г / кг) підвищується в гіпофізі і знижується в сироватці, через 18 годин - підвищується в гіпофізі і сироватці [45]. Тривала дія емоційного стресу, етанолу та транквілізаторів (діазепаму і резерпіну) підвищує активність ВПП у гіпофізі, гіпоталамусі і стріатумі щурів [341]. У деяких відділах головного мозку щурів спільне вплив етанолу і стресу викликає гіперактивацію ВПП, причому зміна активності залежить від дози етанолу та виду стрессірующего впливу [32]. Відзначається відмінність у регіональній активності ВПП мозку і периферичних тканин у щурів з різним потягом до етанолу [54], і у муріцідних і немуріцідних щурів [53]. Відзначається підвищення активності ВПП у немуріцідних щурів при споживанні етанолу та його скасування [53]. Таким чином, показано залучення ВПП у визначення агресивності [52], у відповідь на різні стрессірующіе впливу [29, 30, 49, 50, 52], введення гормонів [39] і транквілізаторів [187, 341], схильності до споживання етанолу [54 ], у розвиток фізичної залежності від нього [17, 44, 53].

Є також дані про статеві відмінності в активності ВПП [101]. Статеві гормони впливають на активність ВПП у відділах гіпоталамо-гіпофізарно-надниркової-гонадної системи мишей: активність ферменту у контрольних тварин у самок вище, ніж в самців; екзогенно вводяться тестостерон і прогестерон по-різному знижують активність ВПП у тканинах тварин різної статі [88] .

Залучення ВПП у формування алкогольної залежності [17, 32, 44, 45, 53, 54, 341], його участь у процессингу багатьох біологічно активних пептидів [35, 48, 56, 131, 136, 151, 160, 172, 174, 200 , 204, 292] зумовлюють інтерес до дослідження активності даного ферменту і його участі у формуванні толерантності до етанолу і схильності до алкоголізму в постнатальному періоді у тварин, які зазнали пренатальний вплив етанолу.

1.3.3. ФМСФ-інгібіруемая карбоксипептидаза

Перші згадки про існування ферменту, відщеплюється аргінін та лізин з С-кінця пептидів, але в той же час відрізняється від всіх відомих металлокарбоксіпептідаз, відносяться до 1993 року. Більш докладні відомості з'явилися в 1995 році [40, 41].

Фенілметілсульфонілфторід-інгібіруемая карбоксипептидаза (ФМСФ-КП) - екзопептидаза, відщеплюється залишки основних амінокислот з С-кінця пептидів. - Gly - Gly - Arg , Met 5 -энкефалина- Arg 6 [47] с образованием, соответственно, дансил-Phe-Leu, Cbz - Gly - Gly , Met 5 -энкефалина. Зокрема, вона відщеплює залишок аргініну від данс-Phe-Leu-Arg [40], Cbz - Gly - Gly - Arg, Met 5-енкефаліну-Arg 6 [47] з утворенням, відповідно, данс-Phe-Leu, Cbz - Gly - Gly, Met 5-енкефаліну. Подальшого розщеплення утворилися продуктів не відбувається. 100000 – 110000 и проявляет максимальную активность при pH 5,0-6,0 [40]. Фермент має Mr 100000 - 110000 і проявляє максимальну активність при pH 5,0-6,0 [40]. Фенілметілсульфонілфторід і п-хлоромеркурбензоат повністю інгібують його. Іодоацетамід знижується карбоксіпептідазную активність тільки на 40%. Інший реагент на SH-групи (N-етілмалеімід), хелатуючим агент ЕДТА і специфічний інгібітор ВПП ГЕМЯК, а також іони Co 2 + не впливають на активність ферменту. ФМСФ-КП інактивується при нейтральних і слаболужних значеннях pH, але стабілізується NaCl [40]. K m для синтетичних субстратів данс-Phe-Leu-Arg і данс-Phe-Ala-Arg дорівнює 48 і 96 мМ, відповідно.

ФМСФ-КП за своїми фізико-хімічними властивостями схожа з лізосомальної карбоксипептидази А (лізосомальних КПА, катепсин А, КФ 3. 4. 16. 1), але відрізняється від неї субстратної специфічністю і розподілом активності в тканинах і відділах мозку [127, 147, 195, 256, 257, 262, 289].

Тканинне і регіональний розподіл ФМСФ-КП має деякі видові відмінності [38, 42, 43, 101, 102], але найбільша активність у всіх досліджених видів тварин (їжака європейського, кішки, щури, миші) відзначена у надниркових і гіпофізі [38, 42 , 43, 88, 101, 102]. У відділах головного мозку активність ФМСФ-КП нижче, ніж у периферичних тканинах і ще нижче, ніж у гіпофізі [38, 42, 43, 88]. Передбачається, що різних тканинах ФМСФ-інгібіруемая КП може бути представлена ​​різними ізоферментами. Тому виявлені відмінності можуть бути обумовлені різними співвідношеннями ізоферментів у тварин різних видів [43]. У мозку найбільша активність ферменту наголошується у відділах з переважанням сірої речовини (нюхових цибулинах, великих півкулях) або з високим вмістом нейропептидів (гіпоталамусі, стріатумі).

Виявлено статеві відмінності в активності ФМСФ-КП [41, 101, 102]. У самок активність ферменту в багатьох тканинах вище, ніж у самців [88]. Активність ферменту змінюється в період статевого дозрівання. Екзогенні тестостерон і прогестерон викликають зниження активності ФМСФ-КП [88]. Найбільш істотна зміна активності ФМСФ-КП при введенні тестостерону і прогестерону виявлено у гіпофізі і статевих залозах у тварин обох статей. Мінімальний вплив статевих стероїдних гормонів на активність ферментів виявлено в гіпоталамусі.

Наявні дані дозволяють зробити припущення про можливу участь ФМСФ-КП в процессингу, а за деякими даними і в катаболізмі [101], попередників ряду нейропептидів [41, 43, 47, 101, 102].

Для уточнення біологічної ролі ФМСФ-КП в нормі і при патології цікаво дослідити її активність у пренатальної алкоголізірованних тварин обох статей.

1.4. Регуляторні пептиди і ферменти їх обміну в онтогенезі

Вміст біологічно активних пептидів змінюється в процесі індивідуального розвитку організму. Ці вікові зміни відрізняються в різних органах, тканинах і групах клітин. Причому спостерігається відміну онтогенетичної динаміки зміни рівнів різних пептидів в однієї тканини і одного й того ж пептиду в різних тканинах. Безсумнівно, це пов'язано з різною біологічною роллю різних пептидів в межах однієї тканини і залученням одного і того ж пептиду у перебіг різних процесів у різних тканинах [52, 55, 76]. У онтогенезі істотно змінюються співвідношення між рівнем біологічно активних пептидів і їх попередників [266], або співвідношення між рівнем пептидів, що походять з одного попередника [181, 310], що свідчить про зміну специфічності процесингу попередників у ході індивідуального розвитку.

мРНК препроенкефаліна в мозку щурів виявляється на Е15, зберігається на цьому рівні до Р14, а потім зростає до рівня дорослих тварин [351]. Продукти розщеплення проенкефаліна виявляються на ранніх стадіях ембріонального розвитку в мозку щурів [342]. Met-енкефалінів з'являється в мозку щурів на Р0, його рівень збільшується до Р21 і далі повільно зростає [347]. За іншими даними [25, 267], його рівень підвищується в гіпофізі, знижується в корі головного мозку, гіпоталамусі і спинному мозку, не змінюється в гіпокампі і стовбурі мозку. Leu-енкефалінів з'являється в гіпокампі щурів на Р4, його зміст збільшується до Р18, в середньому мозку не змінюється [118].

У наднирниках щурів у віці Р7-Р21 змінюється співвідношення попередник / зріла форма Met-енкефаліну, очевидно за рахунок зміни процесингу проформи. Це підтверджується і підвищенням активності ВПП, яка залучається до його перетворення [266]. 6 - Phe 7 снижается в 4 раза, а Met -энкефалина – в 2 раза [266]. При цьому зміст Met-енкефаліну-Arg 6 - Phe 7 знижується в 4 рази, а Met-енкефаліну - у 2 рази [266].

Зміст β-ендорфіну у відділах мозку (гіпокампі, гіпоталамусі, корі), як правило з віком знижується, а в гіпофізі - збільшується [25, 267]. Припускають, що ці зміни пов'язані з віковими особливостями формування гіпоталамо-гіпофізарної системи.

У дітей, підлітків і дорослих обох статей концентрація АКГТ в плазмі крові практично однакова, а концентація β-ліпотропін і β-ендорфіну зростає в препубертатном періоді і до початку статевого дозрівання досягає величин, характерних для дорослих [181]. Т. до ці пептиди походять з єдиного попередника - проопиомеланокортина [247], то виборче зміна їх концентрації може відбуватися тільки за рахунок зміни специфічності процесингу або зміни швидкості деградації.

Пролактин виявляється в передній долі гіпофіза щурів з Е17, його рівень не змінюється до Е21, різко збільшується з Р1 до Р10. У сироватці крові концентрація пролактину зростає з Е17 до Е21 і знижується з Р1 до Р10 [275].

ВІП виявляється в мозку щурів на Е17, рівень його сягає мінімуму до Р20, а потім повільно підвищується [254]. У задньому мозку щурів ВІП виявляється на Р4, його концентрація досягає максимуму до Р18 [119, 159]. Його рівень у слинних залозах, як і речовини Р, хвилеподібно збільшується в перші 8 тижнів розвитку щурів [158].

появляется в коре и подкорковых ядрах крыс на Е19, его уровень увеличивается к Р0 и далее не изменяется [162, 349]. Нейропептид Y з'являється в корі і підкіркових ядрах щурів на Е19, його рівень збільшується до Р0 і далі не змінюється [162, 349]. У тазовому сплетенні спинного мозку щурів цей пептид виявляється на Е18 [328].

Рівень нейротензин в гіпоталамусі щурів зростає від Р0 до Р19 [307].

Вікові зміни рівня нейропептидів сильно залежать від статі тварин, особливо в період статевого дозрівання. Це пов'язано з тим, що багато біологічно активні пептиди залучаються до регуляцію рівня статевих гормонів і в регуляцію функціонування статевої системи [12, 94, 95]. Показано також, що зміна рівнів статевих гормонів викликає зміна рівня різних нейропептидів, в тому числі β-ендорфіну, кортикотропін-подібного пептиду, α-меланотропін-стимулюючого гормону, речовини Р [156, 346].

Виявлені до теперішнього часу вікові зміни рівня регуляторних пептидів, ймовірно, пов'язані зі змінами у функціонуванні ферментних систем, що беруть участь в їх синтезі і деградації.

-аминопептидазы в коре головного мозга котят с возрастом повышается, а A sp - аминопептидазы – снижается [259]. Активність Tyr-амінопептидази в корі головного мозку кошенят з віком підвищується, а A sp - амінопептидази - знижується [259].

Активність піроглутаміл-пептидази І знижується з Р9 до Р20 в гіпоталамусі, стріатумі, корі і гіпофізі щурів [179, 259]. Активність ферменту з Р20 до Р25 не змінюється. При цьому в гіпоталамо-гіпофізарної осі спостерігаються достовірні відмінності активності ферменту у самців і самок всіх досліджених вікових груп.

Рівень пролін-імінопептідази в сироватці крові дітей старше 1 року зменшується до 20 років, вона дещо підвищується пізніше [258]. Статевих відмінностей при цьому не виявлено.

Активність диппептидиламинолпептидазы ІV та амінопептидази М в мозку і ізольованих мікросудинах мозку під час знижується під час перших 8 тижнів постнатального розвитку. Активність амінопептидази А знижується до Р14, а потім до 8 тижнів повертається до вихідного рівня. При цьому виявлені статеві відмінності [129, 180].

Активність нейтральної ендопептидаз 24.11 в гіпоталамусі щурів підвищується з Р0 до Р7 і далі не змінюється, в корі великих півкуль вона підвищується з Р0 до Р30, а в мозочку - знижується і далі не змінюється [278].

Активність металлоендопептідази 24.15 в корі підвищується від Р0 до Р7, до Р90 повертається до вихідного рівня. У гіпоталамусі і мозочку рівень ферменту постійний в періоді Р0-Р30 і знижується до Р90 [278].

Рівень АПФ в стріатонігральном тракті і корі великих півкуль щурів зростає від Р0 до Р20, а потім дещо знижується [326].

Активність ВПП змінюється з віком. У ембріонів щурів мРНК ВПП експресується як в нервовій (таламус, гіпоталамус, середній і довгастий мозок, кортикальна пластинка і спинний мозок, а також периферичні ганглії), так і в інших тканинах (серце і первинні хрящі) [353]. У постнатальному періоді активність ВПП у щурів обох статей підвищується, причому динаміка зміни активності ферменту у відділах мозку і периферичних тканинах розрізняється [41, 142, 278]. Потрібно відзначити розбіжності даних, опублікованих різними авторами, що стосуються зміни активності ВПП у одних і тих же відділах мозку в постнатальному періоді, що, ймовірно, пов'язано з відмінностями в експериментальній методиці.

Найбільші відмінності (зокрема, в гіпоталамусі) відзначені безпосередньо в період статевого дозрівання. Починаючи з 90-денного віку, достовірні статеві відмінності в активності даного ферменту виявлено лише в нирках і статевих залозах. Особливо це виражено у 120-денних щурів [101].

Є дані про вікові зміни активності ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в мозку і периферичних тканинах самців щурів в період від народження до 120-денного віку [41]. Причому в тканинах з найбільшим вмістом даного ферменту (гіпофізі, сім'яниках, надниркових) відзначається зниження його активності з віком. Вплив віку на активність ферменту більш виражено в мозку і тканинах самців, ніж у самок [41, 101, 102]. Динаміка вікових змін у тварин різної статі в більшості випадків збігається.

Таким чином, наведені відомості вказують на можливість залучення ферментів обміну фізіологічно активних пептидів у регуляцію онтогенетичних змін рівня етоіх пептидів, а також у визначення їх статевих відмінностей. І видається цікавим дослідження вікової динаміки ферментативної активності (зокрема ВПП і ФМСФ-КП) у щурів обох статей, які зазнали алкоголізацію в ембріональному періоді.

* * *

Підсумовуючи все вище викладене, можна зробити висновок:

У процесі онтогенезу в організмі відбуваються значні зміни обміну регуляторних пептидів і ферментів їх обміну.

Важлива роль в обміні пептидів належить основним карбоксипептидази. Вони беруть участь в кінцевій стадії процесингу неактивних попередників пептидів і в початкових стадіях їх інактивації, тим самим, контролюючи рівень і співвідношення біологічно активних пептидів в організмі.

Хронічна алкоголізація змінює рівні та співвідношення різних регуляторних пептидів (в першу чергу опіоїдних пептидів, що виконують важливу роль у патогенезі алкоголізму) і активність ферментів їх обміну.

Пренатальний вплив етанолу змінює зміст регуляторних пептидів (у тому числі і опіоїдних) і формує схильність до розвитку алкоголізму.

Усі зазначені зміни залежать від статі.

Представляє інтерес порівняльне вивчення активності основних карбоксипептидази в тканинах самок і самців щурів, які зазнали ембріональний вплив етанолу, дослідження активності цих ферментів при подальшому постнатальному хронічному впливі етанолу. Ці дані можуть мати важливе значення для з'ясування біологічної ролі основних карбоксипептидази в організмі при алкоголізмі, для розуміння механізмів розвитку вікових та статевих відмінностей активності ферментів та рівнів регуляторних пептидів при цьому захворюванні, механізмів формування етанольних залежності у нащадків алкоголіків.

РОЗДІЛ 2. МАТЕРІАЛИ І МЕТОДИ ДОСЛІДЖЕННЯ

2.1. Матеріали дослідження

Досліди проводили на новонароджених, а також у віці 14, 28, 45, 120 діб після народження, самках і самцях білих безпородних щурів. Тварин утримували в стандартних умовах віваріум.

Тварин декапітованих, витягували головний мозок, гіпофіз, наднирники і статеві залози. Тканини поміщали в охолоджений фізіологічний розчин, очищали від оболонок і кровоносних судин, висушували фільтрувальним папером. Потім виділяли відділи мозку - гіпоталамус і стріатум у всіх щурів, а також четверохолміе, гіпокамп і великі півкулі у тварин у віці 120 діб.

Зразки виділених тканин гомогенізували в скляному гомогенизаторе Поттера в 20 мМ натрій ацетатному буфері (рН 5,6), що містить 50 мМ NaCl, у співвідношенні 1:100 (вага: об'єм). Гомогенат використовували як джерела ВПП і ФМСФ-КП.

У якості специфічних інгібіторів застосовували ФМСФ ("Serva", США) і ГЕМЯК ("Serva", США). В якості субстратів використовували данс-Phe-Ala-Arg і данс-Phe-Leu-Arg. Всі інші реактиви були вітчизняного виробництва з кваліфікацією "хч" і "ОСЧ".

2.2. Методи дослідження

2.2.1. Моделювання хронічного споживання етанолу.

Для дослідження онтогенетичних змін активності основних карбоксипептидази при внутрішньоутробному хронічному впливі етанолу використовували дві групи тварин: пренатально алкоголізірованную (Е) і контрольну (К). Тварини пренатально алкоголізірованной групи були потомством самок, які отримували протягом усього періоду вагітності в якості єдиного джерела рідини 12% розчин етанолу, який містить 5% сахарози; контрольної групи - потомством самок, які отримували в цей період тільки 5% розчин сахарози.

Крім того, для дослідження активності даних ферментів при подальшій постнатальної алкоголізації щурів, підданих впливу етанолу в ембріональному періоді, дорослих тварин кожної групи розділили на дві підгрупи: постнатально алкоголізірованную і контрольну. Тварини постнатально алкоголізірованной підгрупи отримували протягом 15 діб як єдиного джерела рідини 12% розчин етанолу, який містить 5% сахарози; щури контрольної підгрупи - 5% розчин сахарози. Таким чином, було сформовано чотири підгрупи дорослих тварин: контрольна (КК), пренатально алкоголізірованная (ЕК), постнатально алкоголізірованная (КЕ), пренатально і постнатально алкоголізірованная (ЕЕ).

2.2.2. Метод визначення активності ферментів

Активність ферментів визначали флюорометричних методом за Fricker LD, Snyder SH [330].

Для визначення активності ВПП 50 мкл гомогенату тканини додавали до 150 мкл (контрольна проба) натрій-ацетатного буфера або до суміші 140 мкл буфера і 10 мкл 25 мкМ водного розчину інгібітора ГЕМЯК (дослідної проби). При визначенні активності ФМСФ-КП використовували ту ж схему, з тією лише різницею, що в якості інгібітора використовували 25 мМ спиртовий розчин ФМСФ, який додавали після змішування гомогенату тканини з буфером.

Проби преінкубіровалісь 8 хв при 37 о С.

Реакцію починали додатком 50 мкл 210 мкМ субстрату - данс-Phe-Ala-Arg для визначення активності ВПП або данс-Phe-Leu-Arg для визначення активності ФМСФ-КП (кінцева концентрація субстратів в реакційній суміші становила 42 мкМ). Далі проби інкубували 60 хв при 37оС. Реакцію зупиняли додаванням 50 мкл 1 М розчину соляної кислоти. Для екстракції продукту реакції - данс-Phe-Ala або данс-Phe-Leu - до проб доливали 1,5 мл хлороформу і струшували протягом 60 с. Для розділення фаз проби центрифугували 5 хв при 1000 g. Вимірювання флуоресценції хлороформно фази проводили на флюоріметре ФМЦ-2 в кюветі товщиною 1 см при l ex = 360 нм і l em = 530 нм. В якості стандарту використовували 1 мкМ розчин данс-Phe-Ala в хлороформі.

Активність ферментів визначали як різницю в накопиченні продукту реакції у пробах, що не містять і містять інгібітор, і виражали в нмоль данс-Phe-Ala або данс-Phe-Leu, що утворилися за 1 хв інкубації, в перерахунку на 1 мг білка.

Вміст білка в пробах визначали за методом Lowry та співавт. [244].

2.2.3. Метод проведення тесту «відкрите поле»

Дорослих тварин у віці 120 днів одноразово тестували за методом «відкрите поле» [73]. Для цього тварин поміщали на яскраво освітлену майданчик (100х100 см), розділену на квадрати (20х20 см). Протягом 5 хвилин оцінювали наступні поведінкові параметри:

  • кількість відвідувань периферичних квадратів;

  • кількість відвідувань центральних квадратів;

  • сумарну рухову активність (загальна кількість відвідуванні периферичних і цетральної квадратів);

  • сумарну вертикальну активність (кількість стійок);

  • загальну активність (сумарну рухову і вертикальну активність);

Розраховували відношення сумарної рухової до сумарної вертикальної активності.

2.2.4. Статистична обробка результатів дослідження

Експериментальні дані обробляли статистично. Достовірність відмінностей між середніми визначали з використанням t-критерію Стьюдента [68]. в Кореляційний та дисперсійний аналізи проводили за допомогою програми Statgraphics (версія 3.0) ("STSC, Inc." США) у и Multifactor ANOVA. Принадлежность подгрупп животных к разным гомогенным группам оценивали с помощью Multiple range analysis ( Statgraphics (версия 3.0) (“ STSC , Inc .” США)). режимах Simple Correlation, One-Way ANOVA і Multifactor ANOVA. Приналежність підгруп тварин до різних гомогенним групам оцінювали за допомогою Multiple range analysis (Statgraphics (версія 3.0) ("STSC, Inc." США)). Належність вікових підгруп до різних гомогенним групам проводили тільки у разі достовірності критерію Фішера. При цьому оцінювали кількість гомогенних груп, утворюваних експериментальними підгрупами, з рівнем достовірності р <0,05. Бали підгрупах привласнювали на підставі їх належності до різних гомогенним групам у міру збільшення середнього. При цьому мінімальний бал отримувала тимчасова підгрупа з мінімальним середнім, максимальний бал - тимчасова підгрупа з максимальним середнім, а дробовий бал (1,5) отримували підгрупи, які входять одночасно в дві гомогенні групи. На підставі присвоєних балів робили висновок про динаміку зміни активності ферментів.

РОЗДІЛ 3. РЕЗУЛЬТАТИ ДОСЛІДЖЕННЯ

3.1. Дослідження активності основних карбоксипептидази в тканинах щурів різного віку, які зазнали пренатальний вплив етанолу

3.1.1. Дослідження активності карбоксипептидази Н в тканинах пренатально алкоголізірованних щурів різного віку

Згідно з даними дисперсійного аналізу пренатальний вплив етанолу достовірно впливало на активність ВПП у стріатумі, надниркових і сім'яниках самців, в гіпоталамусі, стріатумі і наднирниках самок (табл. 1).

Табл. 1. Ф ). Дисперсійний аналіз впливу пренатальної алкоголізації на активність ВПП у тканинах тварин різного віку (значення критерію Фішера F Ф).

Тканина

Самці

Самки


Ф F Ф

Гіпоталамус

0,16

7,65 **

Стріатум

4,75 *

4,85 *

Гіпофіз

1,78

0,00

Наднирники

9,97 **

9,16 **

Статеві залози

4,31 *

1,17

Примітка: тут і в табл. = 5÷8; достоверность критерия Фишера * – р < 0,05, ** – р < 0,01, *** – р < 0,001. 2-8, 11, 12: n = 5 ÷ 8; достовірність критерію Фішера * - р <0,05, ** - р <0,01, *** - р <0,001.

При цьому у самців спостерігалося достовірне зниження активності ВПП у стріатумі у віці Р0 і Р14 (рис. 1), в гіпофізі у віці Р14, в наднирниках у віці Р28 і Р120, в сім'яниках у Р0 і Р120 (рис. 2) в порівнянні з інтактними тваринами. У пренатально алкоголізірованних самок спостерігалося достовірне зниження активності ВПП у гіпоталамусі у Р0, Р14, Р28, в стріатумі в Р14, Р45 (рис. 3), в гіпофізі в Р0, у надниркових і яєчниках в Р0 (рис. 4); збільшення активності в гіпоталамусі (рис. 3) і в гіпофізі в Р120 (рис. 4). У всіх інших випадках змін ферментативної активності не виявлено.

Найбільш суттєві зміни активності ВПП (40% - 50%) спостерігалися в стріатумі, гіпофізі, статевих залозах тварин обох статей і гіпоталамусі самок на ранніх етапах постнатального розвитку, а так само в наднирниках самців у Р28 і Р120, в сім'яниках у Р120, в гіпофізі самок в Р120 (113%).

За даними дисперсійного аналізу активність ВПП достовірно залежала від віку у всіх тканинах тварин, крім гіпоталамуса самок (табл. 3) і сім'яників самців алкоголізірованних груп, а також гіпоталамуса самців контрольної та алкоголізірованной груп (табл. 2).

Табл. 2. Ф , баллы возрастных групп). Дисперсійний аналіз впливу віку на активність ВПП у тканинах самців щурів (значення критерію Фішера F Ф, бали вікових груп).

Тканина

Контрольні групи

Алкоголізірованние групи


Ф F Ф

Вікові групи

Ф F Ф

Вікові групи



n

0

14

28

45

120


n

0

14

28

45

120

Гіпоталамус

0,36







1,81







Стріатум

7,90 ***

2

1

1,5

2

1

1

31,58 ***

3

1

2

3

2

2

Гіпофіз

35,53 ***

4

1

2,5

4

3

2

11,52 ***

3

1

1,5

3

2,5

1,5

Наднирники

12,72 ***

2

1

1

2

1

1

9,18 ***

3

3

2,5

2

1,5

1

Насінники

5,13 **

2

1,5

1,5

1

1

2

1,19







Табл. 3. Ф , баллы возрастных групп). Дисперсійний аналіз впливу віку на активність ВПП у тканинах самок щурів (значення критерію Фішера F Ф, бали вікових груп).

Тканина

Контрольні групи

Алкоголізірованние групи


Ф F Ф

Вікові групи

Ф F Ф

Вікові групи



n

0

14

28

45

120


n

0

14

28

45

120

Гіпоталамус

5,78 **

2

1,5

2

1,5

1,5

1

0,04







Стріатум

15,40 ***

3

1

3

2

2

1,5

11,93 ***

3

1

2

3

1,5

1,5

Гіпофіз

12,54 ***

2

1

2

2

2

1

8,74 ***

2

1

2

2

2

2

Наднирники

33,83 ***

3

1,5

3

2

1,5

1

8,12 ***

2

1

2

1,5

1

1

Яєчники

8,37 ***

3

2,5

3

1,5

1

1,5

12,97 ***

3

1,5

3

2

1

1,5

У стріатумі інтактних самок (рис. 3) активність ВПП значно підвищувалася від Р0 до Р14, а потім поступово знижувалася до Р120 практично до вихідного рівня. При пренатальної алкоголізації активність ферменту поступово підвищувалася від Р0 до Р28, а потім знижувалася до Р45 - Р120 до рівня Р28.

У гіпофізі інтактних самок (рис. 4) активність ВПП підвищувалася від Р0 до Р14 - Р45, а потім знову знижувалася до початкового рівня. У пренатально алкоголізірованних самок активність ферменту також підвищувалася від Р0 до Р14 - Р45, але не зменшувалася до Р120.

У інтактних самок в наднирниках (рис. 4) активність ферменту дещо підвищується від Р0 до Р14, а потім поступово знижувалася до Р120 до вихідного рівня; в яєчниках (рис. 4) активність ВПП значно знижувалася від максимального рівня в Р0 - Р14 до Р28 - Р120. У алкоголізірованних самок вікова динаміка зміни активності ферменту у надниркових і яєчниках була схожа з інтактними щурами.

Таким чином, у пренатально алкоголізірованних тварин відзначалося порушення вікової динаміки зміни активності ВПП.

Активність ВПП залежала від статі в гіпофізі інтактних тварин, в гіпоталамусі і наднирниках алкоголізірованних тварин (табл. 4). Ферментативна активність залежала від взаємодії статі і віку у всіх тканинах контрольних тварин, крім надниркових залоз, а також у гіпофізі та надниркових алкоголізірованних щурів (табл. 4). Вплив статі у алкоголізірованних тварин менше залежало від віку, ніж у контрольних.

Табл. 4. Ф1 – влияние пола, F Ф2 – взаимодействие влияния пола и возраста). Дисперсійний аналіз впливу статі та взаємодії статі і віку на активність ВПП (значення критерію Фішера: F Ф1 - вплив статі, F Ф2 - взаємодія впливу статі і віку).

Тканина

Контрольні групи

Алкоголізірованние групи


Ф1 F Ф1

Ф2 F Ф2

Ф1 F Ф1

Ф2 F Ф2

Гіпоталамус

1,79

2,92 *

7,72 **

1,16

Стріатум

1,40

4,58 **

0,25

0,68

Гіпофіз

5,22 *

6,82 ***

0,30

3,35 *

Наднирники

1,34

1,49

6,31 *

4,44 **

Статеві залози

0,90

3,97 **

0,14

0,86

У контрольних самок в гіпоталамусі, в порівнянні з самцями, активність ВПП була вище в Р14, нижче в Р120 і однаковою в інші вікові періоди. У пренатально алкоголізірованних самок - нижче в Р28 і не відрізнялася в інших вікових групах від контрольних самців (рис. 1, 3).

У стріатумі контрольних самок активність ВПП була вищою, ніж у самців у Р14 і Р45, але не відрізнялася у алкоголізірованних щурів протягом усього досліджуваного періоду (рис. 1, 3).

У інтактних самок, у порівнянні з самцями, активність ВПП у гіпофізі була однаковою в Р0, вище в Р14 і нижче в Р28 - Р120; у пренатально алкоголізірованних - нижче в Р0 - Р14, не відрізнялась у Р28 - Р45 і вище в Р120.

У наднирниках інтактних самок ферментативна активність була однаковою в Р0, Р45 і Р120, вище в Р14 і нижче в Р28 в порівнянні з інтактними самцями, у алкоголізірованних самок - нижче в Р0, вище в Р14 і Р28, однаковою в Р45 і Р120 (рис. 2, 4).

У яєчниках контрольних самок активність досліджуваного ферменту була нижчою в Р45 і Р120 в порівнянні з семенникамі самців. У алкоголізірованних тварин обох статей активність ВПП у статевих залозах була однаковою з Р0 по Р120 (рис. 1-2).

Тобто, при внутрішньоутробному впливові етанолу відбулася зміна статевого співвідношення активності ВПП. У деяких випадках (у гіпоталамусі у Р14 і Р120, в стріатумі в Р14 і Р45, в гіпофізі в Р28 і Р45, в статевих залозах в Р45 і Р120) активність ВПП стала однаковою у тварин різної статі, в інших (у гіпоталамусі у Р28 і в гіпофізі в Р0) у самок активність ВПП стала нижчою, ніж у самців, а в гіпофізі в Р120 і в наднирниках в Р28 статеві відмінності збереглися, але співвідношення активності стало протилежним.

Таким чином, отримані результати показують, що у контрольних тварин активність ВПП змінювалася з віком майже у всіх тканинах. Причому найбільша ферментативна активність відзначалася у самців в Р28 у всіх тканинах (крім сім'яників), в сім'яниках у Р120, а у самок в Р14 у всіх тканинах. Це узгоджується з літературними даними про найбільш суттєві зміни у самок щурів в інфантильному періоді (з Р8 по Р21), у самців - в ювенільному (з Р21 по Р32) і препубертатном (після Р32) періодах [12]. Це підтверджує раніше висловлене припущення про залучення ВПП у процес пубертации процес формування статевих відмінностей [88, 101].

Вікова динаміка активності ВПП у відділах мозку відрізнялася від такої в периферичних тканинах. Ймовірно, це пояснюється залученням досліджуваного ферменту в метаболізм різних пептидів в мозку і в периферичних тканинах [41, 124, 174].

При впливі пренатальної алкоголізації спостерігалося порушення вікової динаміки зміни активності ВПП. Причому у самок найбільш істотно вона порушувалася в гіпоталамусі і стріатумі, а у самців - у надниркових і насінниках. Можливо, пренатальна алкоголізація, змінюючи рівень активності ВПП - одного з ферментів обміну біологічно активних пептидів, у самок порушувала формування і функціонування відділів ЦНС, а у самців - периферичних ланок ГГНС і ГГГС [109, 114, 177, 182, 190, 191, 208 , 269, 280, 281, 282, 291, 313].

Зміна активності ВПП у тканинах ембріонально алкоголізірованних тварин в різні вікові періоди відбувалося переважно в бік зниження. І тільки в гіпофізі і гіпоталамусі самок в Р120 активність ВПП збільшилася. Причому в гіпоталамусі (відділі, що відіграє найважливішу роль у патогенезі алкоголізму) самок спостерігалися відмінності практично протягом усього періоду онтогенезу. Тоді як у самців у цьому відділі зміни активності ВПП з Р0 до Р120 не виявлені.

Внутрішньоутробний вплив етанолу викликало порушення статевих відмінностей активності даного ферменту, що, ймовірно, пов'язано з порушенням процесу пубертации і формування статевих відмінностей у нащадків алкоголіків [109, 138, 177, 239, 264, 265, 271, 280, 281].

3.1.2. Дослідження активності ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в тканинах пренатально алкоголізірованних щурів різного віку

Згідно з даними дисперсійного аналізу пренатальний вплив етанолу достовірно впливало на активність ФМСФ-КП в яєчниках самок (табл. 5).

Табл. 5. Ф ) Дисперсійний аналіз впливу пренатальної алкоголізації на активність ФМСФ-КП тканинах тварин різного віку (значення критерію Фішера F Ф)

Тканина

Самці

Самки


Ф F Ф

Гіпоталамус

0,21

2,49

Стріатум

1,99

1,48

Гіпофіз

0,61

0,29

Наднирники

0,04

1,09

Статеві залози

0,80

4,85 *

При цьому у самців (рис. 5, 6) спостерігалося достовірне зниження активності ФМСФ-КП в стріатумі в Р14 і Р120, в гіпофізі і сім'яниках у Р14.

У пренатально алкоголізірованних самок активність ФМСФ-КП була нижче у всіх досліджених тканинах у Р14 і в яєчниках в Р120, і була вищою у гіпофізі в Р120 (рис. 7, 8) порівняно з інтактними самками. У всіх інших випадках змін ферментативної активності не виявлено.

Найбільш суттєві зміни активності ФМСФ-КП (23% - 48%) спостерігалися в гіпофізі, стріатумі, статевих залозах самців і у всіх тканинах самок на ранніх етапах постнатального розвитку, а також у яєчниках самок в Р120.

За даними дисперсійного аналізу вік достовірно впливав на ФМСФ-КП у всіх відділах і тканинах тварин обох статей контрольної та алкоголізірованной груп, крім гіпоталамуса і яєчників алкоголізірованних самок (табл. 6, 7).

Табл. 6. Ф , баллы возрастных подгрупп). Дисперсійний аналіз впливу віку на активність ФМСФ-КП в тканинах самців щурів (критерій Фішера F Ф, бали вікових підгруп).

Тканина

Контрольні групи

Алкоголізірованние групи


Ф F Ф

Вікові групи

Ф F Ф

Вікові групи



n

0

14

28

45

120


n

0

14

28

45

120

Гіпоталамус

3,32 *

2

1,5

2

1,5

1,5

1

4,46 **

2

1,5

2

2

1,5

1

Стріатум

9,15 ***

3

2,5

3

2

1,5

1

4,03 *

2

1,5

1,5

2

1,5

1

Гіпофіз

7,70 ***

3

2

3

1,5

2,5

1

7,20 ***

3

1,5

3

1,5

2,5

1

Наднирники

5,42 **

2

2

2

1

1,5

1

4,05 *

2

2

1,5

1,5

1

1

Насінники

45,70 ***

4

3

4

2,5

2

1

14,09 ***

2

2

2,5

2

2

1

При цьому спостерігалася наступна вікова динаміка активності ФМСФ-КП. У гіпоталамусі самців активність ФМСФ-КП підвищувалася до Р14 у інтактних і до Р14 - Р28 у алкоголізірованних щурів, і значно знижувалася до Р120 в обох груп (рис. 5).

У стріатумі контрольних самців активність ферменту плавно зменшувалася від максимального значення в Р0 - Р14 до Р120; у алкоголізірованних самців активність ФМСФ-КП була найбільшою в Р28 і найменшою в Р120 (рис. 5).

У гіпофізі контрольних самців активність ФМСФ-КП підвищувалася від Р0 до максимального значення до Р14, потім знижувалася до Р28, знову, але в меншій мірі, підвищувалася до Р45, а до Р120 стала нижче початкового рівня. У гіпофізі алкоголізірованних самців динаміка зміни ферментативної активності практично не відрізнялася від інтактних тварин (рис. 6).

Табл. 7. Ф , баллы возрастных подгрупп). Дисперсійний аналіз впливу віку на активність ФМСФ-КП в тканинах самок щурів (критерій Фішера F Ф, бали вікових підгруп).

Тканина

Контрольні групи

Алкоголізірованние групи


Ф F Ф

Вікові групи

Ф F Ф

Вікові групи



n

0

14

28

45

120


n

0

14

28

45

120

Гіпоталамус

6,91 ***

3

2

3

2,5

1,5

1

2,32

2

1,5

1,5

2

1,5

1

Стріатум

22,89 ***

3

1,5

3

2

1,5

1

7,20 ***

2

1,5

2

2

1,5

1

Гіпофіз

32,09 ***

3

1,5

3

1

2

1

2,80 *

2

1,5

2

1,5

1,5

1

Наднирники

6,08 **

2

2

2

1

1,5

1

3,02 *

2

2

1,5

1,5

1,5

1

Яєчники

4,52 **

3

1

3

1,5

1,5

4

1,34







У наднирниках інтактних і досвідчених самців ферментативна активність плавно зменшувалася від Р0 - Р14 до Р28 - Р120 (рис. 6).

У сім'яниках контрольних самців активність досліджуваного ферменту підвищувалася від Р0 до максимального рівня в Р14, значно знижувалася до Р28 - Р45, а в Р120 стала мінімальною. У пренатально алкоголізірованних самців активність ФМСФ-КП незначно змінювалася в Р0 - Р45 і знизилася до Р120 (рис. 6).

Також як і у самців, пренатальна алкоголізація викликала достовірні більш-менш суттєві порушення вікової динаміки активності ФМСФ-КП практично у всіх тканинах самок. Якщо у контрольних самок вікова динаміка мала пік активності в Р14 у всіх тканинах, а в наднирниках ще й у Р0, і яєчниках в Р120, то у алкоголізірованних самок таких виражених піків не було практично ніде.

У гіпоталамусі і стріатумі інтактних самок (рис. 7) ферментативна активність збільшувалася від Р0 до Р14 і плавно зменшувалася до Р120. У алкоголізірованних самок в цих відділах активність ФМСФ-КП менш значно змінювалася з віком на ранніх етапах онтогенезу, але була трохи вище в Р28 в гіпоталамусі і в Р14 - Р28 в стріатумі в порівнянні з іншими віковими групами.

У гіпофізі інтактних самок (рис. 8) активність даного ферменту суттєво змінювалася в період від народження до Р120. При цьому наголошувалося два піки активності - найбільший в Р14, і менше - у Р45. У гіпофізі алкоголізірованних самок активність ФМСФ-КП незначно змінювалася з віком, з дещо більшим рівнем активності в Р14.

У наднирниках контольних і алкоголізірованних самок активність ФМСФ-КП була найбільшою в Р0 - Р14 і найменшою в Р28 і Р120 у інтактних щурів, та найбільшою в Р0 і найменшою в Р120 у алкоголізірованних щурів (рис. 8).

У яєчниках інтактних самок активність ФМСФ-КП була мінімальною в Р0, Р28 і Р45, значно зростала в Р14 і ще більше в Р120 (рис. 8).

Пол і взаємодія статі і віку достовірно впливали на активність ФМСФ-КП в статевих залозах інтактних та алкоголізірованних тварин, а також у гіпофізі інтактних щурів (табл. 8).

У контрольних тварин активність ФМСФ-КП була достовірно вище у самок, ніж у самців у стріатумі і гіпофізі в Р14 і Р45, а також в статевих залозах в Р28-120. При алкоголізації в ембріональному періоді, активність ФМСФ-КП в стріатумі і гіпофізі в Р14 і Р45 вирівнялась у тварин різної статі, а в гіпофізі в Р120 і статевих залозах в Р0 вона стала вищою у самок, ніж у самців. При зниженні активності ФМСФ-КП в яєчниках в Р120, вона все одно залишилася вищою (у 10 разів), ніж у сім'яниках (рис. 5-8).

Табл. 8. Дисперсійний аналіз впливу статі та взаємодії впливу статі і віку на активність ФМСФ-КП (значення критерію Фішера: FФ1-вплив статі, FФ2 - взаємодія впливу статі і віку).

Тканина

Контрольні групи

Алкоголізірованние групи


Ф1 F Ф1

Ф2 F Ф2

Ф1 F Ф1

Ф2 F Ф2

Гіпоталамус

0,85

0,12

0,45

0,31

Стріатум

3,28

4,18

3,43

0,63

Гіпофіз

5,00 *

3,25 *

2,67

0,45

Наднирники

0,14

0,11

0,81

0,44

Статеві залози

62,30 ***

12,47 ***

40,72 ***

7,85 ***

Таким чином, максимальні значення активності ФМСФ-КП у контрольних тварин обох статей відзначалися у всіх тканинах на ранніх етапах постнатального розвитку (в основному в Р14, іноді в Р0-Р14), а також у яєчниках самок в Р120. Це, ймовірно, свідчить про те, що, ФМСФ-КП найбільш активно втягується в обмін регуляторних пептидів на ранніх етапах постнатального розвитку і в яєчниках в Р120. Найбільш суттєві зміни активності ФМСФ-КП при пренатальної алкоголізації спостерігалися в ці ж вікові періоди. Це, очевидно, відображає порушення процесу розвитку і статевого дозрівання нащадків алкоголіків [109,138, 177, 239, 264, 265, 271, 280, 281].

У пренатально алкоголізірованних тварин відзначалося порушення вікової динаміки зміни активності ФМСФ-КП. Причому у самців вона істотно змінювалася стріатумі і сім'яниках, а у самок - у всіх тканинах, крім надниркових залоз. Можливо, пренатальна алкоголізація, змінюючи рівень активності ФМСФ-КП, порушувала формування і функціонування пептідергіческіх систем у цих тканинах.

У залозах внутрішньої секреції щурів обох статей активність ФМСФ-КП, як правило, була в кілька разів вище, ніж у відділах мозку. Ймовірно, це пояснюється тим, що в периферичних відділах ГГНС і ГГГС досліджуваного ферменту належить більш значуща функція в обміні біологічно активних пептидів, ніж у відділах ЦНС.

При достовірному вплив статі і взаємодії статі і віку, пренатальна алкоголізація стала причиною того, що в гіпофізі і стріатумі в Р14 і Р45 активність ФМСФ-КП стала практично однаковою у тварин різної статі, тоді як в нормі ферментативна активність у самок була вищою, ніж у самців. У яєчниках і сім'яниках статеве співвідношення активності ФМСФ-КП в Р28 - Р120 збереглося (у самок вище, ніж у самців), але в Р0 в статевих залозах і в Р120 в гіпофізі стала вищою у самок, ніж у самців.

Найбільш істотні зміни статевих відмінностей активності ФМСФ-КП на різних стадіях розвитку у пренатально алкоголізірованних тварин відзначені в гіпофізі - ендокринної залозі, що грає найважливішу роль в гормональній регуляції всього організму [12, 95], що, ймовірно, є однією з причин порушення розвитку нащадків алкоголіків .

3.2. Дослідження впливу хронічної алкоголізації
на активність основних карбоксипептидази в тканинах дорослих щурів, які зазнали пренатальний вплив етанолу

Для розуміння механізмів впливу пренатальної алкоголізації на формування схильності до розвитку алкоголізму у людини і тварин становить інтерес дослідження активності ферменной обміну регуляторних пептидів, в тому числі і опіоїдних пептидів, у відділах мозку і периферичних тканинах дорослих щурів, які перенесли внутрішньоутробну алкоголізацію, при подальшому хронічному впливі етанолу . Важливим також є питання про статеві відмінності при цьому.

3.2.1. Дослідження поведінки пренатально алкоголізірованних тварин у тесті "відкрите поле»

. S . Методика «відкритого поля», впроваджена в практику лабораторних досліджень Hall C. S. в 1934 р. [194], дозволяє кількісно оцінити моторну активність щурів і мишей з двох основних компонентів: вертикальною - стійки і горизонтальною - локомоції. Реєстрація окремих форм поведінки (захід у центр, нерухомість, кількість болюсів і т. д.) при всій труднощі інтерпретації може дати досить точну первинну характеристику стану тварини (страх, збудження, нав'язливе поведінку, зниження або підвищення орієнтовною реакції і т. д.) [194]. Кількість локомоцій і стійок широко варіює у різних тварин, але зазвичай простежується певна структура, що характеризує рухова поведінка групи тварин у цілому. Зокрема, таку інформацію несе обчислюване співвідношення між рухової (локомоції) і вертикальної (стійки) активністю [194].

Незважаючи на деяку неузгодженість опублікованих даних про зміну поведінки тварин, підданих алкоголізації в ембріональному періоді [70, 83, 153, 241, 281, 299, 309], нас при проведенні експерименту цікавила наявність таких змін, вплив на них подальшої алкоголізації і статеві відмінності при це.

У контрольних тварин не було виявлено статевих відмінностей досліджених поведінкових параметрів (табл. 9, 10).

Табл. 9. Параметри поведінки в тесті "відкрите поле» дорослих самців щурів.

Параметри поведінки

КК

ЕК

КЕ

ЕЕ

Кількість відвідувань периферичних квадратів

19,8 ± 9,9

38,5 ± 15,4 **

38,4 ± 18,2 *

13,3 ± 10,8 ХХХ

Кількість відвідувань центральних квадратів

2,17 ± 2,4

5,3 ± 3,5 *

3,9 ± 3,4

0,3 ± 0,4 * ХХХ

Сумарна рухова активність

23,0 ± 11,0

42,3 ± 15,9 **

46,6 ± 26,5 *

13,8 ± 11,3 ХХХ

Сумарна вертикальна активність

14,8 ± 6,6

19,0 ± 4,0

12,1 ± 5,4

9,3 ± 4,4 * ХХХ

Сумарна рухова і вертикальна активність

37,8 ± 17,6

61,3 ± 18 **

58,8 ± 20,2 *

23,0 ± 13,5 * ХХХ

Співвідношення сумарна рухова: сумарна вертикальна активність

2:1

2:1

4:1

1,5:1

Тут і в табл. ± m ; n = 12; достоверность отличий * – р < 0,05; * * – р < 0,01, ; * * * – р < 0,001 относительно контроля; Х Х Х – р < 0,001 относительно ЭК, + – р < 0,05; + + – р < 0,01, + + + – р < 0,001 относительно самцов. 10: КК - параметри поведінки контрольних підгруп тварин, ЕК - пренатально алкоголізірованних підгруп, КЕ - постнатально алкоголізірованних підгруп, ЕЕ - пренатально і постнатально алкоголізірованних підгруп; M ± m; n = 12; достовірність відмінностей * - р <0,05; * * - р <0,01,; * * * - р <0,001 щодо контролю; Х Х Х - р <0,001 щодо ЕК, + - р <0,05; + + - р <0,01, + + + - р <0,001 щодо самців.

У пренатально алкоголізірованних тварин обох статей відзначено збільшення рухливості (табл. 9, 10). Причому у самок всі параметри збільшилися більшою мірою (в 2-3 рази), ніж у самців (у 2 рази). Сумарна рухова активність збільшилася в основному за рахунок збільшення частоти відвідувань периферичних квадратів. У самок на відміну від самців, також збільшилася кількість вертикальних стійок, що є показником дослідницької активності і / або страху.

Табл. 10. Параметри поведінки в тесті відкритого поля дорослих самок щурів.

Параметри поведінки

КК

ЕК

КЕ

ЕЕ

Кількість відвідувань периферичних квадратів

23,7 ± 9,6

62,2 ± 10,2 *** + + +

20,0 ± 13,8

61,0 ± 41,4 * + +

Кількість відвідувань центральних квадратів

2,8 ± 2,6

8,3 ± 3,1 *** +

2,0 ± 2,4

11,0 ± 11,2 * + +

Сумарна рухова активність

26,3 ± 9,6

68,1 ± 9,7 *** + + +

20,9 ± 14,6 +

62,2 ± 42,2 * + +

Сумарна вертикальна активність

13,5 ± 4,1

22,6 ± 3,4 *** +

11,4 ± 7,4

21,3 ± 11,6 + +

Сумарна рухова і вертикальна активність

39,8 ± 11,7

90,7 ± 8,8 *** + + +

32,3 ± 21,9 +

83,5 ± 53,6 * + +

Співвідношення сумарна рухова: сумарна вертикальна активність

2:1

3:1

2:1

2:1

Співвідношення «сумарна рухова активність: сумарна вертикальна активність», яка у контрольних тварин була 2:1, мало змінилася у самців (табл. 9), а у самок стала 3:1 (табл. 10).

Постатальное вплив етанолу на тварин, що не піддавалися пренатальної алкоголізації, не впливало на поведінку самок. У самців ж відбулися зміни, аналогічні тим, які були відзначені у пренатально алкоголізірованних тварин. Співвідношення сумарних активностей були у самців - 4:1 (табл. 9), у самок - 2:1 (табл. 10).

Подальша алкоголізація тварин, які піддавалися впливу етанолу у внутрішньоутробному періоді, також по-різному вплинула на поведінку самців і самок (табл. 9, 10). У самців рухливість різко знижувалася і за деякими показниками стала достовірно нижче не тільки пренатально алкоголізірованних, але і інтактних самців. Співвідношення двох видів активності у самців стало 1,5; 1 (табл. 9). Рухливість самок, а, отже, і співвідношення сумарних рухової і вертикальної активностей, була такою ж, як і у самок, що піддавалися тільки пренатальної алкоголізації. Сумарна вертикальна активність - показник реакції страху або дослідницької активності [72, 74] - повернулася практично до норми.

Результати тесту відобразили те, що пренатальна алкоголізація поглиблювала порушення поведінкових реакцій у дорослих самців при хронічному впливі етанолу. На самок пренатальна алкоголізація такого ефекту не чинила.

3.2.2. Дослідження впливу хронічної алкоголізації на активність карбоксипептидази Н в тканинах дорослих щурів, які зазнали пренатальний вплив етанолу

У табл. 11 і на рис. 9-12 представлені результати дослідження активності ВПП при пренатальної, постнатальної і обох разом видах алкоголізації щурів обох статей.

У интактных самок в этих тканях активность фермента была достоверно ниже, чем у самцов. Пол достовірно впливав на активність ВПП у гіпофізі, гіпоталамусі, гіпокампі, четверохолміе і статевих залозах (табл. 11). У інтактних самок в цих тканинах активність ферменту була достовірно нижче, ніж у самців.

Згідно з даними дисперсійного аналізу пренатальна алкоголізація впливала на активність ВПП у всіх відділах, крім стріатума і гіпокампа (табл. 11). У четверохолміе, надниркових і сім'яниках самців, які зазнали внутрішньоутробний вплив етанолу, активність ВПП була нижчою, ніж у контрольних самців (рис. 9, 10). У пренатально алкоголізірованних самок в гіпоталамусі і гіпофізі активність була вищою, а в четверохолміе нижче, ніж у контрольних самок (рис. 11, 12).

Взаємодія пренатальної алкоголізації та статі впливало на активність дослідженого ферменту в гіпофізі, стріатумі і статевих залозах (табл. 11).

Пренатальна алкоголізація викликала зміна активності ВПП у різних тканинах у самців і самок: у самців в четверохолміе, надниркових і сім'яниках; у самок в гіпоталамусі, четверохолміе і гіпофізі. Причому у самців активність ВПП знижувалася у всіх зазначених відділах, а у самок підвищувалася в гіпоталамусі і гіпофізі і знижувалася в четверохолміе.

При цьому спостерігалося вирівнювання ферментативної активності у тварин різної статі в гіпоталамусі, четверохолміе і статевих залозах, а в гіпофізі самок активність ВПП стала вищою, ніж у самців.

Постнатальная алкоголізація впливала на активність ВПП у всіх тканинах, окрім великих півкуль і гіпофіза. Взаємодія впливу постнатальної алкоголізації та статі на активність ВПП було відзначено в гіпоталамусі, четверохолміе, гіпофізі і статевих залозах (табл. 11).

Табл. 11. Дисперсійний аналіз впливу статі, пренатальної алкоголізації, постнатальної алкоголізації та їх взаємодії на активність ВПП у тканинах дорослих тварин.

Тканина

Ф1 F Ф1

Ф2 F Ф2

Ф3 F Ф3

Ф4 F Ф4

Ф5 F Ф5

Ф6 F Ф6

Гіпоталамус

31,53 ***

5,04 *

1,66

15,76 ***

3,60 *

0,81

Стріатум

2,33

0,24

7,05 *

21,14 ***

2,99

7,61 **

Гіпокамп

10,46 **

0,19

2,21

12,09 **

2,34

0,06

Четверохолміе

3,73 *

8,67 **

0,05

3,28 *

3,86 *

1,70

Великі півкулі

0,16

14,10 ***

0,75

0,49

0,10

2,02

Гіпофіз

5,14 *

3,34 *

12,2 **

0,07

3,36 *

2,88

Наднирники

0,11

11,26

2,64

6,78 *

3,05

3,95 *

Статеві залози

7,92 *

4,58 *

4,50 *

6,24 *

19,78 *

0,15

Примітка: тут і в табл. Ф1 – влияние пола, F Ф2 – влияние пренатальной алкоголизации, F Ф3 – влияние взаимодействия пренатальной алкоголизации и пола, F Ф4 –влияние постнатальной алкоголизации, F Ф5 – влияние взаимодейстия постнатальной алкоголизации и пола, F Ф6 – влияние взаимодействия пренатальной и постнатальной алкоголизации. 12 значення критерію Фішера: F Ф1 - вплив статі, F Ф2 - вплив пренатальної алкоголізації, F Ф3 - вплив взаємодії пренатальної алкоголізації і підлоги, F Ф4-вплив постнатальної алкоголізації, F Ф5 - вплив взаимодейст постнатальної алкоголізації і підлоги, F Ф6 - вплив взаємодії пренатальної та постнатальної алкоголізації.

У постнатально алкоголізірованних самців спостерігалося збільшення ферментативної активності в гіпоталамусі і зниження в четверохолміе і сім'яниках у порівнянні з контролем (рис. 9, 10). У постнатально алкоголізірованних самок активність ВПП була вищою, ніж у інтактних самок, в гіпокампі, четверохолміе, гіпофізі і яєчниках (рис. 11, 12).

Таким чином, постнатальтная алкоголізація викликала зміна активності ВПП у різних тканинах у тварин різної статі: у самців в гіпоталамусі, четверохолміе і сім'яниках; у самок в гіпокампі, четверохолміе, гіпофізі і яєчниках. Причому у самок активність ВПП підвищувалася у всіх зазначених відділах, а у самців підвищувалася в гіпоталамусі і знижувалася в четверохолміе і насінниках.

При цьому в гіпофізі, гіпокампі, четверохолміе і статевих залозах постнатально алкоголізірованних щурів, на відміну від контрольних, відбулося вирівнювання ферментативної активності у тварин різної статі. В інших тканинах статеве співвідношення активності ВПП залишилося таким же, як у інтактних підгруп.

При поєднанні пренатальної та постнатальної алкоголізації у самців активність ВПП у стріатумі і гіпокампі була вище, а в гіпофізі і сім'яниках нижче, ніж у самців всіх інших підгруп (КК, ЕК, КЕ). У гіпоталамусі ЕЕ самців активність ферменту була вищою порівняно з контрольними і пренатально алкоголізірованнимі самцями, але не відрізнялася від постнатально алкоголізірованних. У четверохолміе і наднирниках ЕЕ самців активність ВПП була вищою, ніж у пренатально алкоголізірованних самців, але не відрізнялася від контрольних і постнатально алкоголізірованних. У великих півкулях самців, підданих пренатальної та постнатальної інтоксикації, активність ферменту була нижчою порівняно з контрольними і постнатально алкоголізірованнимі самцями, але не відрізнялася від пренатально алкоголізірованних (рис. 9, 10).

У порівнянні з самками інтактною підгрупи у ЕЕ самок активність ВПП була вище в гіпоталамусі, гіпокампі, гіпофізі, яєчниках і нижче у великих півкулях. У порівнянні з пренатально алкоголізірованнимі самками у самок ЕЕ підгрупи ферментативна активність була вищою у стріатумі, гіпокампі, четверохолміе і яєчниках. У порівнянні з постнатально алкоголізірованнимі самками у самок ЕЕ підгрупи активність досліджуваного ферменту була вище в гіпоталамусі і нижче в четверохолмія. У iнших випадках чаях відмінності ферментативної активності в тканинах самок ЕЕ підгрупи від самок інших підгруп не спостерігалися (рис. 11, 12).

У ЕЕ самок активність ВПП була нижче в стріатумі, гіпокампі, четверохолміе і вище в гіпофізі, яєчниках у порівнянні з самцями ЕЕ підгрупи.

Причому, на відміну від контролю статеве відмінність ферментативної активності в гіпоталамусі зникло, в стріатумі з'явилося. У гіпофізі і статевих залозах статеве співвідношення активності ВПП стало протилежним у порівнянні з інтактними тваринами.

Таким чином, поєднання пренатальної та постнатальної алкоголізації викликало в порівнянні з контролем зміна активності ВПП у більшій кількості досліджуваних тканин, ніж кожен з них окремо. Причому в ембріонально алкоголізірованних самців дію постнатальної алкоголізації викликало у більшості досліджуваних тканин більш суттєві зміни ферментативної активності, ніж кожен з цих видів інтоксикації окремо. Постнатальная інтоксикація ембріонально алкоголізірованних самок, навпаки, приводила в більшості тканин до меншим або таким самим змінам активності ВПП в порівнянні з контролем, до яких приводило лише постнатальний вплив етанолу. Т. е., пренатальна алкоголізація самок не була причиною більшого впливу подальшої постнатальної алкоголізації, що спостерігалося у самців. Можливо, це свідчить про те, що пептідергіческіе системи пренатально алкоголізірованних самок, на відміну від самців, більш стійкі до подальшої етанольних інтоксикації.

3.2.3. Дослідження впливу хронічної алкоголізації на активність ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в тканинах дорослих щурів, які зазнали пренатальний вплив етанолу

У табл. 12 і на рис. 13-16 представлені результати дослідження активності ФМСФ-КП при окремому та спільному вплив пренатальної та постнатальної та алкоголізації на щурів обох статей.

За даними дисперсійного аналізу (табл. 12) підлогу достовірно впливав на активність ФМСФ-КП в четверохолміе, великих півкулях і статевих залозах. Пренатальний вплив етанолу достовірно впливало на активність ФМСФ-КП в гіпофізі і статевих залозах. Взаємодія впливу статі та пренатальної алкоголізації на активність ферменту виявлено в гіпокампі і статевих залозах.

При пренатальної алкоголізації у самців не виявлено зміни активності ФМСФ-КП у порівнянні з контрольною підгрупою (рис. 13, 14). У самок відмічено підвищення активності в гіпокампі і гіпофізі і зниження в яєчниках в порівнянні з інтактними самками (рис. 15, 16).

У інтактних самок активність ФМСФ-КП в стріатумі і статевих залозах була вищою, ніж у самців. У пренатально алкоголізірованних самок активність ферменту була вищою, ніж у самців, у великих півкулях, гіпофізі і яєчниках (рис. 13-16).

Постнатальний вплив етанолу впливало на активність ФМСФ-КП в гіпоталамусі, стріатумі, великих півкулях, гіпофізі та надниркових залозах (табл. 12). При цьому у самців активність ФМСФ-КП була знижена в порівнянні з контролем в четверохолміе і всіх досліджених залозах і мала тенденцію до зниження в інших тканинах (рис. 13-14). У самок активність ФМСФ-КП була знижена в порівнянні з контролем в стріатумі, великих півкулях і всіх досліджених залозах (рис. 15-16).

Активність досліджуваного ферменту достовірно залежала від взаємодії статі і постнатальної алкоголізації в гіпокампі і четверохолміе (табл. 12). У постнатально алкоголізірованних самок активність ФМСФ-КП була вище, ніж у КЕ самців, в четверохолміе і статевих залозах (рис. 13-14).

За даними дисперсійного аналізу ферментативну активність залежала від взаємодії пренатальної та постнатальної алкоголізації в гіпоталамусі (табл. 12).

Табл. 12. Дисперсійний аналіз залежності активності ФМСФ-КП від статі, пренатальної алкоголізації, постнатальної алкоголізації та їх взаємодії в тканинах дорослих тварин.

Тканина

Ф1 F Ф1

Ф2 F Ф2

Ф3 F Ф3

Ф4 F Ф4

Ф5 F Ф5

Ф6 F Ф6

Гіпоталамус

0,81

1,38

0,03

12,82 **

2,44

3,77 *

Стріатум

3,34

0,12

1,16

9,88 **

0,03

0,20

Гіпокамп

0,003

2,71

7,96 **

0,63

6,08 *

2,48

Четверохолміе

7,38 *

3,49

0,02

0,94

5,46 *

0,04

Великі півкулі

5,67 *

0,13

1,66

13,03 ***

0,001

0,51

Гіпофіз

2,85

4,49 *

1,20

31,92 ***

2,93

2,23

Наднирники

0,09

0,09

0,14

6,89 *

2,40

1,06

Статеві

залози

103,15 ***

6,06 *

5,62 *

2,44

1,69

4,23

У ЕЕ самців в порівнянні з контрольними самцями ферментативна активність була знижена у всіх тканинах, крім стріатума. У порівнянні з пренатально алкоголізірованнимі самцями вона була знижена у всіх тканинах, крім четверохолмия і гіпофіза. У порівнянні з постнатально алкоголізірованнимі самцями у ЕЕ самців ферментативна активність була знижена в гіпоталамусі, гіпокампі, сім'яниках, збільшена в гіпофізі і не відрізнялася в інших тканинах (рис. 13-14).

У ЕЕ самок у порівнянні з контролем ферментативна активність була нижчою у великих півкулях і гіпофізі і вище в гіпокампі; в порівнянні з пренатально алкоголізірованнимі самками активність досліджуваного ферменту була нижчою у великих півкулях і гіпофізі, порівняно з постнатально алкоголізірованнимі самками - вище в гіпофізі (рис . 15-16).

У ЕЕ самок у всіх тканинах, крім четверохолмия і гіпофіза, активність ФМСФ-КП стала вищою, ніж у ЕЕ самців (рис. 13-16).

Таким чином, пренатальна алкоголізація по-різному впливала на активність ферменту в різних тканинах: активність збільшувалася в гіпокампі і гіпофізі, знижувалася в яєчниках і не змінювалася в інших тканинах. Це, ймовірно, відображає дезинтегрирующей дію етанолу на пептідергіческіе системи, що проявляється, наприклад, у виборчому зміні змісту опіоїдних пептидів в різних тканинах [69, 153, 263]. Причому, пренатальна алкоголізація по-різному впливала на активність ФМСФ-КП у самців і самок: активність не змінювалася у самців, але змінювалася у самок. Можливо, пренатальний вплив етанолу більш істотно змінює білковий обмін у самок.

Постнатальная алкоголізація знижувала активність ферменту в багатьох тканинах тварин обох статей. Це узгоджується з літературними даними про зниження швидкості білкового обміну в різних органах і системах при хронічній етанольних інтоксикації [2, 23, 61, 98, 112]. Також, багато авторів відзначають зниження вмісту опіоїдних пептидів у відділах мозку [9, 18, 24, 84, 146, 348], що, на їхню думку, є відображенням процесу адаптації опіоїдної системи до надмірної стимуляції, що приводить до зниження функціональної активності цієї системи [ 9, 18, 84].

Але вплив хронічної постнатальної алкогольної інтоксикації на активність ФМСФ-КП відрізнялося в різних відділах мозку. Активність ферменту достовірно знижувалася або мала тенденцію до зниження у стріатумі і великих півкулях тварин обох статей і в четверохолміе самців в порівнянні з нормою. В інших відділах активність не змінювалася. Ймовірно, це пов'язано з неузгодженим зниженням рівнів різних нейропептидів [9, 18, 24, 84, 146, 348,] і навіть збільшенням концентрації деяких з них [98] під дією хронічної алкоголізації в різних відділах мозку. Панченко Л. Ф. з співавт. [80] вважають, що з такого дисбалансу в опіоїдної системи мозку починається формування залежності і толерантності до алкоголю, далі в процес втягуються пов'язані з нею нейромедіаторні і нейромодуляторную системи мозку, що порушує злагоджену роботу мозку в цілому.

У самців спільна дія пренатальної та постнатальної алкоголізації викликали в більшості досліджуваних тканин більш суттєві зміни ферментативної активності, ніж кожен з цих видів інтоксикації окремо. У самок пренатальна алкоголізація в більшості тканин не приводила до збільшення змін активності досліджуваного ферменту при подальшому впливові етанолу. Це, можливо, може бути ознакою меншою сприйнятливості пептідергіческіх систем у ембріонально алкоголізірованних самок до впливу етанолу в постнальном періоді.

Спільна дія пренатальної та постнатальної алкоголізації, по-різному впливаючи на самців і самок, викликало появу статевих відмінностей активності ФМСФ-КП в більшості тканин, в порівнянні з нормою і кожним видом інтоксикації окремо.

ГЛАВА 4. ОБГОВОРЕННЯ РЕЗУЛЬТАТІВ ДОСЛІДЖЕННЯ

Незважаючи на різнобічне активне вивчення проблем алкоголізму, біохімічні механізми багатьох порушень, що виникають при цьому, залишаються мало зрозумілі. Одним з основних напрямків є дослідження порушень, що виникають у потомства алкоголіків. В даний час не викликає сумнівів, що хронічне споживання алкоголю матір'ю під час вагітності згубно відбивається на всіх системах організму, в тому числі і на нейрогуморальної [3, 6]. При цьому можливі два шляхи шкідливого впливу тривалої алкогольної інтоксикації:

  • безпосередню токсичну дію в результаті переходу етанолу через плаценту [26];

  • вплив, опосередкований змінами, що виникають під впливом алкоголю в організмі матері (порушенням нейроендокринної регуляції, зрушеннями метаболічних процесів) [143, 227].

Одним з компонентів нейрогуморальної системи є пептідергіческая система. Її функціонування в значній мірі визначається пептид-гідролазами, до яких відносяться ВПП і ФМСФ-інгібіруемая КП. Як відомо, вживання алкоголю під час вагітності, що приводить до ембріо-фетогенез, виявляється і протягом постнатального розвитку потомства [26, 64, 69, 70, 130, 138, 143]. Тому викликає інтерес розгляд постнатальних онтогенетичних змін активності пептид-гідролаз в організмі ембріонально алкоголізірованних особин.

У інтактних тварин найбільша активність ВПП виявляється у тканинах з високим рівнем нейропептидів [103], а саме у гіпофізі, в гіпоталамусі і четверохолміе. У багатьох тканинах активність цього ферменту достовірно нижче у самок, ніж у самців. Отримані нами дані узгоджуються з думкою про залучення ВПП у процесинг регуляторних пептидів [163, 229, 344, 350]. Можливо, у тварин різної статі ВПП або залучається до процесинг різних пептидів, зокрема в ГГГС, або розрізняється частка її участі в цьому процесі.

Найбільша активність ФМСФ-КП відзначена в гіпофізі, надниркових і яєчниках (рис. 6). У мозку розподіл ФМСФ-КП добре корелює з інтенсивністю обміну білка (найбільш висока у великих півкулях), але не збігається з розподілом нейропептидів [38, 42, 43, 88, 103].

Виявлено наступне співвідношення активності ферментів в тканинах інтактних дорослих тварин і в процесі їх розвитку: ВПП ≥ ФМСФ-КП у відділах мозку і гіпофізі щурів обох статей, а також сім'яниках дорослих тварин. У наднирниках тварин обох статей і яєчниках активність ФМСФ-КП>> ВПП.

Особливості тканинного і регіонального распределнія ВПП і ФМСФ-КП і відмінності їх активності в одних і тих же відділах і тканинах, імовірно, пояснюються, також, деякими відмінностями в їх субстратної специфічності [40, 169, 174, 330].

Активність ВПП і ФМСФ-КП у контрольних пацюків змінюється з віком майже у всіх відділах і тканинах (рис. 1-8). Дисперсійний аналіз показав достовірне вплив віку в багатьох випадках (табл. 2, 3, 6, 7).

Згідно з наявними літературними даними [12], у процесі пубертации найбільш суттєві зміни відзначаються у самок щурів в інфантильному періоді (з Р8 по Р21), а у самців - в ювенільному (з Р21 по Р32) і періпубертатном (після Р32) періодах. У зазначені вікові періоди відбувається формування найважливіших органів і систем.

У цих же періодах була відзначена найбільша активність досліджених нами ферментів. Так, у інтактних самців найбільша активність ВПП відзначалася Р120 в сім'яниках і в Р28 в інших тканинах (рис. 1, 2, табл. 2), у самок - у Р14 у всіх тканинах (рис. 3, 4, табл. 3). У інтактних тварин обох статей найбільша активність ФМСФ-КП відзначалася у всіх тканинах у Р14, а також у надниркових в Р0 і в яєчниках в Р120 (рис. 5-8, табл. 6, 7).

Відмінність статевого дозрівання у самок і самців у значній мірі обумовлено різним вмістом статевих гормонів, регуляторних пептидів, зокрема гіпоталамічних факторів, що регулюють статеву функцію [12]. Цим можна пояснити результати нашого дослідження, що показують розходження в активності досліджуваних ферментів (ВПП і ФМСФ-КП) між інтактними самками і самцями, як в мозку, так і в периферичних тканинах. Причому найбільші (при достовірному вплив статі) статеві відмінності активності ВПП у інтактних тварин відзначені в гіпофізі, надниркових, статевих залозах, ФМСФ-КП - в гіпофізі і статевих залозах.

Результати нашого експерименту відзначили подібність активності ВПП і ФМСФ-КП в гіпофізі, відділах мозку та їх вікової динаміки у відділах мозку дорослих інтактних тварин. У наднирниках і статевих залозах активність ВПП відрізнялася від ФМСФ-КП. Вікова динаміка активності обох ферментів у відділах мозку відрізнялася від периферичних тканин і розрізнялася між семенникамі і яєчниками. У наднирниках і статевих залозах вікова динаміка активності ВПП відрізнялася від ФМСФ-КП.

Згідно з даними кореляційного аналізу (табл. 13), у відділах мозку тварин обох статей різного віку відмічена висока позитивна кореляція активності ВПП і ФМСФ-КП. У гіпофізі, надниркових і статевих залозах кореляції між ними немає.

Ймовірно, все це пояснюється тим, що ВПП і ФМСФ-КП виконують подібні функції у відділах мозку і різні - в периферичних тканинах:

  • у відділах мозку у особин обох статей (але особливо у самок) ВПП і ФМСФ-КП приблизно однаковою мірою залучаються до процесинг пропептид;

  • в периферичних тканинах (яєчниках і надниркових) ФМСФ-КП, на відміну від ВПП, відіграє більш суттєву роль у процессингу регуляторних пептидів;

Табл. 13. Коефіцієнти кореляції між активністю ВПП і ФМСФ-КП в тканинах самців і самок у процесі індивідуального розвитку (достовірність кореляції * - р <0,05; * * - р <0,01; * * * - р <0,001).

Відділи

Коефіцієнти кореляції

Гіпофіз

0,23

Гіпоталамус

0,74 ***

Стріатум

0,70 ***

Наднирники

0,06

Статеві залози

-0,04

  • в периферичних тканинах ФМСФ-КП також бере участь в катаболізмі білка.

  • в процессингу гіпофізарних пептидів у самців бере участь переважно ВПП;

При впливі пренатальної алкоголізації спостерігається порушення вікової динаміки зміни активності ВПП і ФМСФ-КП в багатьох тканинах тварин різної статі. Так, якщо у інтактних тварин піки рівнів ферментативної активності збігалися з періодами формування найважливіших органів і систем [12], то у ембріонально алкоголізірованних такої залежності, як правило, не спостерігалося. Причому значні зміни активності ферментів виявлені у тварин обох статей у Р0. Це, ймовірно, пов'язано з ефектом абстинентного синдрому, що виникає у самого новонародженого і у його матері, що також відбивається на його стані [64, 130]. У наступних періодах такі значні зміни ферментативної активності відзначалися рідше, можливо, через що розвиваються компенсаторних метаболічних механізмів [231]. У нормі в процесі індивідуального розвитку організму відзначається зміна змісту різних біологічно активних пептидів як в мозку, так і в периферичних тканинах [25, 52, 55, 76, 101, 118, 119, 158, 159, 162, 181, 247, 254, 266, 267, 275, 307, 310, 328, 342, 347, 349, 351]. При цьому в різні вікові періоди відбуваються суттєві зміни співвідношень між рівнями активних пептидів і їх попередників [266], або співвідношень між рівнями пептидів, що походять з одного попередника [181, 310]. Що, на думку авторів, свідчить про зміну специфічності процесингу попередників у ході індивідуального розвитку. Також висловлюється думка [353], що вікові зміни рівнів регуляторних пептидів пов'язані зі змінами у функціонуванні і ферментних систем, що беруть участь в їх синтезі і деградації [129, 179, 180, 258, 259, 278, 326], в тому числі і ФМСФ- КП [100]. Пренатальна алкоголізація проявляється в різних вікових періодах в зміні рівнів таких важливих у патогенезі алкоголізму пептидів, як опіоїдних пептидів у відділах мозку [69, 153, 263]. Є також розрізнені дані про порушення змісту та функціонування інших біологічно активних речовин у різні вікові періоди у пренатально алкоголізірованних особин [6, 26, 64, 130, 265]. Очевидно, що зміна вікової динаміки активності ВПП і ФМСФ-КП в ембріонально алкоголізірованних особин відображає один з механізмів опосередкованого порушення вмісту активних пептидів під час найважливіших пубертатних періодів і, отже, порушення розвитку організму, спостерігались у нащадків алкоголіків [6, 26, 64, 130 ].

Достовірне зміна активності ВПП і ФМСФ-КП у всіх досліджених тканинах у щурів обох статей різного віку, підданих пренатальної алкоголізації, відбувається переважно в бік зниження. Виняток становить активність ВПП у самок в гіпофізі і гіпоталамусі і ФМСФ-КП в гіпофізі у віці Р120, де активність ферментів збільшується в порівнянні з інтактними тваринами.

Знижена активність досліджених ферментів, можливо, є однією з причин відзначається у спадково схильних до алкоголізму тварин меншого вмісту Met-енкефаліну й β-ендорфіну [76]. Встановлено, що введення таких тварин етанолу підвищує рівень даних опіоїдів [76]. Припускають, що знижені рівні деяких ендогенних опіоїдів обумовлюють потяг до етанолу, як фактору, що веде до утворення в мозку опіоїдів, тобто до нормалізації гуморальних систем винагороди. З цим узгоджуються феномени зняття абстиненції і деякого зниження потягу до алкоголю при введенні ззовні опіоїдних нейропептидів, а також деяких інгібіторів протеолитического розпаду опіоїдних пептидів в організмі [76].

Збільшення активності ВПП у гіпофізі та гіпоталамусі і ФМСФ-КП в гіпофізі дорослих самок щурів, очевидно, аналогічно реакції організму на стрес. Багато авторів відносять алкоголізацію до стрессірующім чинникам і відзначають схожість біохімічних змін при алкогольної інтоксикації і класичних видах стресу (іммобілізаційному, емоційно-больовому, звуковому і т. д.) [27, 31, 32, 45, 99, 128, 295, 341] . За цих впливах спостерігається збільшення вмісту біологічно активних пептидів у гіпофізі та гіпоталамусі: АКТГ, β-ендорфіну, рилізинг-факторів, енкефалінів, речовини Р і т. д. [3, 80, 98, 228, 296, 297]. Вони викликають каскад біохімічних реакцій, що підготовляють організм до впливу стресорного фактора [32, 85, 99]. Ймовірно, підвищення активності ВПП у гіпофізі та гіпоталамусі і ФМСФ-КП в гіпофізі дорослих самок щурів пов'язано зі збільшенням синтезу вказаних стрес-пептидів. Це також підтверджується тим, що КРФ, збільшують секрецію АКТГ і β-ендорфін-подібних пептидів, збільшує і синтез мРНК препрокарбоксіпептідази Н [300]. Цікаво, що в процесі розвитку (Р0 - Р45) не відзначено збільшення ферментативної активності в зазначених (гіпофіз і гіпоталамус) або інших тканинах пренатально алкоголізірованних тварин. Ймовірно, збільшення активності ферментів, що носить адаптаційний характер, стало можливим тільки після сформованості всіх органів і систем та метаболічних процесів організму.

Спостерігається в деяких тканинах при пренатальної етанольних інтоксикації різне і / або різноспрямована зміна активності ВПП і ФМСФ-КП, або зміна активності тільки одного з ферментів, може бути однією з причин порушення співвідношення рівня різних регуляторних пептидів у цих відділах. Зокрема, є даними про виборчий зміні змісту енкефалінів в різних регіонах мозку при пренатальному впливові етанолу: зниженні кількості Met-і Leu-енкефалінів в гіпоталамусі без зміни в корі і гіпокампі [69], збільшенні кількості Met-і Leu-енкефалінів в блідій кулі без зміни в гіпофізі [13, 24, 57, 69, 263]. Відомо, також про різне змісті енкефалінів в мозку схильних до алкоголізму тварин: знижено змісту Met-енкефаліну й підвищено - Leu-енкефаліну [24, 76].

Збільшення активності ВПП у самок в гіпофізі і гіпоталамусі і ФМСФ-КП в гіпофізі і достовірне зниження (або тенденція до зниження) активності в статевих залозах і надниркових залозах, можливо, пов'язано (або є однією з причин) зі зміною функціонування ГГГС і ГГНС. При пренатальної алкоголізації в цих системах відзначається порушення зворотного зв'язку [177, 178, 182, 224, 282].

У нормі спостерігаються статеві відмінності активності досліджуваних ферментів і в мозку і в периферичних тканинах. Пренатальна алкоголізація, часто по-різному змінюючи активність цих ферментів, призводить до порушення цього співвідношення. У гіпофізі ж алкоголізірованних самок у віці Р120 активність ВПП і ФМСФ-КП навіть вище, ніж у самців, тоді як у контрольних тварин, навпаки. Відомо, що пренатальний вплив етанолу порушує репродуктивну функцію, змінює вміст статевих гормонів і нейропептидів, що регулюють їх секрецію [239, 265, 322, 335]. Відомо, також, що активність ВПП і ФМСФ-КП залежить від статевих гормонів [88, 101]. Таким чином, залежне від статі зміна активності ферментів у пренатально алкоголізірованних особин і зміна їх співвідношення у самок і самців, ймовірно, відображає один із механізмів порушення розвитку і функціонування статевої системи.

Наведені дані, отримані в нашому експерименті, про зміну активності ВПП і ФМСФ-КП та про порушення їх вікової динаміки при пренатальної алкоголізації, ймовірно, свідчить про участь цих ферментів у патогенезі алкоголізму, і відображують порушення обміну регуляторних пептидів. Порушення виявляються як у дорослих тварин, так і на окремих вікових етапах, коли відбувається розвиток найважливіших органів і систем.

При подальшій хронічної алкоголізації дорослих тварин обох статей, які перенесли вплив етанолу в ембріональному періоді, відзначається зміна активності ВПП у більшій кількості досліджуваних тканин, ніж у тварин, підданих тільки пренатальної або тільки постнатальної інтоксикації.

У самців спільна дія пренатальної та постнатальної алкоголізації викликали в більшості досліджуваних тканин більш суттєві зміни активності обох ферментів, ніж кожен з цих видів інтоксикації окремо. У самок пренатальна алкоголізація в більшості тканин не приводила до збільшення змін активності ВПП і ФМСФ-КП при подальшому впливові етанолу. Це, можливо, може бути ознакою меншою сприйнятливості пептідергіческіх систем ембріонально алкоголізірованних самок до впливу етанолу в постнальном періоді.

Статеві відмінності зміни активності ферментів обміну регуляторних пептидів при алкоголізації узгоджується з даними тесту відкритого поля (табл. 7). Найбільший рівень поведінкової активності відзначається у ЕК і ЕЕ самок. У самців ЕК і КЕ підгруп величина всіх або деяких показників активності теж підвищена в порівнянні з інтактними тваринами, але в меншій мірі. У самців ЕЕ підгрупи поведінкова активність нижче у порівнянні з самцями і самками всіх інших підгруп. Т. е, що пренатальна алкоголізація посилила порушення поведінкових реакцій у дорослих самців при хронічному впливі етанолу, а на самок такого ефекту не справила.

Спільна дія пренатальної та постнатальної алкоголізації викликало появу статевих відмінностей активності ФМСФ-КП в більшості тканин, в порівнянні з нормою і кожним видом інтоксикації окремо.

У літературі описуються статеві відмінності алкогольних ефектів на молекулярному, клітинному, тканинному і органному рівнях [87, 105, 106, 113, 133, 141, 148, 149, 155, 186, 214, 215, 197, 240, 288, 293, 294 , 305, 337, 343]. Згідно з нашими даними, вплив етанолу по-різному впливає на активність основних карбоксипептидази в тканинах самців і самок: в деяких відділах мозку активність ВПП у самок вище, ніж у самців, а ФМСФ-КП, навпаки; в периферичних тканинах частіше активність ВПП і ФМСФ- КП вище у самок, ніж у самців. Ці дані, імовірно, відображають роль досліджуваних ферментів у формуванні статевого диморфізму і відмінність впливу етанолу на особин різної статі. Причому ця відмінність виявляється не тільки при пренатальної або постнатальної інтоксикації, але більшою мірою при постнатальної алкоголізації внутрішньоутробно алкоголізірованних тварин.

Згідно з отриманими даними, хронічна алкоголізація змінює в тканинах співвідношення активностей ВПП / ФМСФ-КП, що узгоджується з даними бо зміні співвідношень регуляторних пептидів при впливі етанолу [3, 9, 18, 24, 80, 84, 98, 146, 228, 276, 297, 348]. Причому, якщо пренатальна алкоголізація порушує співвідношення активності досліджуваних ферментів в деяких тканинах самців і у всіх досліджених тканинах самок, то постнатальна алкоголізація цих тварин викликає зміна співвідношення активностей ферментів практично у всіх тканинах тварин обох статей і в більшості випадків сильніше, ніж тільки пренатальна алкоголізація.

Таким чином, пренатальна алкоголізація призводить до того, що активність досліджуваних ферментів обміну регуляторних пептидів (ВПП і ФМСФ-КП) не тільки виявляється зміненою у дорослих тварин, а й впливає на їх реакцію при подальшому хронічному впливі етанолу в постнатальному періоді. Причому ця реакція відрізняється у самок і самців.

Механізми регуляції основних карбоксипептидази мало вивчені. Але вже загальноприйнято, що пренатальний вплив етанолу викликає порушення структури і функціонування генетичного апарату клітин [8, 21, 238]. У разі ВПП є літературні дані, що дозволяють обговорювати ці механізми. У структурі гена ВПП виявлені численні тканеспеціфічние регуляторні ділянки, що впливають на рівень експресії гена ферменту [157, 218, 220, 237, 316]. Представляється ймовірним, що активність ВПП при пренатальному впливові етанолу регулюється на рівні експресії гена. [20], а также отсутствие данных о реальных механизмах регуляции активности зрелой формы фермента in vivo [34, 167, 187, 218, 219] и на уровне процессинга препроформы КПН [34]. Підтвердженням цього можна вважати відсутність впливу етанолу на активність ВПП in vitro [20], а також відсутність даних про реальні механізми регуляції активності зрілої форми ферменту in vivo [34, 167, 187, 218, 219] і на рівні процесингу препроформи ВПП [34] . Виявлена ​​аналогічна генетична регуляція активності інших ферментів, зокрема, ферментів обміну самого етанолу [8, 15, 22, 107, 238], ферментів катехоламінергіческой системи [331]. Такий же механізм регуляції можна припустити й для ФМСФ-КП.

Можна припустити, що вплив пренатальної алкоголізації може виявлятися і на рівні експресії генів різних форм ферментів. ВПП представлена ​​у вигляді розчинної і мембранозв'язаних форм [33, 37, 44, 49, 121, 145, 150, 161, 166, 167, 188, 193, 200, 205, 206, 270, 285, 286, 318, 325, 330 , 338, 350]. Активність зазначених форм відрізняється [44, 49, 145, 188, 193, 200, 205, 206, 325, 330, 350]. Відрізняється і співвідношення цих форм у нормі в різних тканинах. Наприклад, в β-клітинах підшлункової залози, хромафінної клітинах надниркових залоз і гіпофізі переважає розчинна форма, а в мозку - мембранозв'язаних [161, 285]. Для ФМСФ-КП також відомі ізоформи, що відрізняються регіональним розподілом [38, 42, 43, 88, 101, 102]. -конца КПН [219, 220, 253, 255, 300]. У структурі ДНК виявлена ​​ділянка, що кодує послідовність 15-20 гідрофобних амінокислот з N-кінця ВПП [219, 220, 253, 255, 300]. Вважається, що саме цією послідовністю мембранозв'язаних форма цього ферменту відрізняється від розчинної форми і за її допомогою зв'язується з мембраною [166, 270, 338]. Можливо, при порушенні експресії різних форм ВПП і ФМСФ-КП відбувається зміна змісту зазначених форм і їх співвідношення.

Крім того, можна припустити механізм впливу ембріональної аклоголізаціі на активність зазначених форм через зміну стану мембран. Пренатальна алкоголізація змінює зміст і поширення плазмових і мембранних глікопротеїнів [191, 208]. Очевидно, що це впливає на будову мембран і, як наслідок, на функціонування мембранозв'язаних ферментів. Аналогічний вплив вже вважається доведеним при впливі гострого, хронічного етанолу та / або стресу на активність ВПП. Так, етанол (у різних дозах) і іммобілізаційний стрес при індивідуальному і спільній дії викликають різні зміни активності розчинної і мембранозв'язаних ВПП у гіпофізі, гіпоталамусі, середньому мозку, стріатумі, гіпокампі і сірій речовині щурів [33]; хронічне споживання етанолу викликає зниження активності розчинної і мембранозв'язаних форм ВПП у корі великих півкуль, зниження активності розчинної і підвищення мембранозв'язаних форм у стріатумі [17]. Можливо, пренатальний вплив етанолу також по-різному змінює активність розчинної і мембранозв'язаних форми досліджуваних ферментів.

Крім наведених найбільш ймовірних механізмів впливу пренатальної алкоголізації на активність досліджуваних ферментів можна обговорити існування й інших способів регулювання їх активності. Так, у разі ВПП у літературі обговорюється залежність її активності від продуктів реакції - фізіологічно активних пептидів. Пренатальна алкоголізація, змінюючи рівень регуляторних пептидів (АКТГ, КРФ, опіоїдів, ПОМК і т. д.) [64, 69, 114, 153, 177, 182, 263, 282], можливо, тим самим, впливає на активність ВПП. Для ФМСФ-КП немає даних про залежність.

Для ВПП і ФМСФ-КП відома залежність їх активності від статевих гормонів [41, 88, 101, 102]. Пренатальна алкоголізація впливає на утримання цих гормонів [239, 265, 322], що, можливо, відображає один із способів впливу на активність цих ферментів.

Можна припустити регуляцію активності ферментів зміною конформації молекули, що призводить до зміни спорідненості до субстрату. Зокрема, це можна припустити для ВПП. Відсутність відмінностей у значеннях До m розчинної і мембранозв'язаних форм цього ферменту припускає, що таке зміна не пов'язана з перетворенням мембранозв'язаних форми в розчинну [188, 193, 200, 205, 206, 325, 330]. Ацетальдегід - продукт окислення етанолу - завдяки наявності надзвичайно реакційноздатного карбонила взаємодіє з аміногрупами амінокислот, що входять до складу поліпептидів, модифікуючи білки, що тягне за собою зміну функцій молекул і структур клітини, в які вони входять. Істотно, що зв'язування ацетальдегіду характеризується відсутністю специфічності, тому що здійснюється в результаті неферментний реакцій [21]. Відомо, що ацетальдегід модифікує білки сироватки крові, білки та фосфоліпіди клітинних мембран, порушує біогенез ферментних систем мембран і сироватки крові, призводить до утворення міжмолекулярних зшивок, викликає деградацію деяких високомолекулярних білкових структур [21, 96, 117, 152, 223, 245]. Також, ацетальдегід несприятливо впливає на основні процеси посттрансляційної модифікації білків: ацелірованіе, фосфорилювання, метилювання, через що перекручуються регуляторні ефекти гормонів і нейромедіаторів [77]. Можливо, етанол, що вводиться у внутрішньоутробний період, призводить до порушення структури, а, значить, і властивостей, досліджених нами ферментів.

Узагальнюючи результати нашого експерименту і літературні дані, можна зробити висновок, що ВПП і ФМСФ-КП беруть участь у патогенезі алкоголізму й у формуванні залежності у потомства алкоголіків.

Відповідність отриманих нами даних про зміни активності ферментів з літературними даними про зміни рівнів нейропептидів і білковому обміні, при вивчених впливах дозволяє припустити можливість використання визначення активності цих ферментів для дослідження змін метаболізму регуляторних пептидів при фізіологічних і патологічних станах організму. Це може мати важливе значення для медицини, оскільки дозволить, контролюючи активність ферментів, впливати на біосинтез біологічно активних пептидів.

З урахуванням впливу пренатальної алкоголізації на активність досліджуваних ферментів в процесі розвитку тварин, при подальшому хронічному впливі етанолу в постнатальному періоді, і відмінності змін ферментативної активності при вказаних впливах на самок і самців, запропонована гіпотетична схема одного з можливих механізмів формування схильності до алкоголізму у пренатально алкоголізірованних особин за участю досліджених ферментів.

Пренатальний вплив етанолу

Порушення експресії генів ВПП і ФМСФ-КП?

Інші механізми впливу?

Зміна активності ВПП і ФМСФ-КП
в мозку і периферичних тканинах у процесі розвитку

Порушення формування та функціонування пептідергіческіх систем

Залежне від статі зміна активності ВПП і ФМСФ-КП при постнатальному хронічному впливі етанолу на дорослих особин

Залежне від статі модулюючий вплив постнатального впливу етанолу на зміну рівня опіоїдних пептидів

Схильність до розвитку алкоголізму

ВИСНОВКИ

  1. У інтактних тварин найбільша активність карбоксипептидази Н виявляється у тканинах з високим рівнем нейропептидів, а саме у гіпофізі, гіпоталамусі і четверохолміе, що свідчить про залучення цього ферменту в процесинг регуляторних пептидів. У багатьох тканинах активність цього ферменту достовірно нижче у самок, ніж у самців.

  2. Найбільша активність ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази наголошується в гіпофізі, надниркових і яєчниках контрольних пацюків. У мозку розподіл ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази добре корелює з інтенсивністю обміну білка (найбільш висока у великих півкулях), але не збігається з розподілом нейропептидів. Активність даного ферменту менше залежить від статі та взаємодії статі і віку, ніж активність карбоксипептидази Н. При наявності достовірної залежності впливу статі та взаємодії статі і віку активність ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази вище у самок, ніж у самців.

  3. У відділах мозку і гіпофізі інтактних щурів обох статей у процесі їх розвитку і в дорослому стані, а також сім'яниках дорослих тварин активність карбоксипептидази Н більше або дорівнює ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази. У наднирниках тварин обох статей і яєчниках активність ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази істотно вище, ніж карбоксипептидази Н.

  4. Активність карбоксипептидази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази у контрольних пацюків змінюється з віком майже у всіх відділах і тканинах. Причому найбільша активність обох ферментів відзначається, в основному, у самців в ювенільному та періпубертатном періодах, а у самок - в інфантильному періоді.

  5. Вікова динаміка активності обох ферментів у інтактних тварин різниться у відділах мозку і периферичних тканинах, а також у сім'яниках та яєчниках. У наднирниках і статевих залозах вікова динаміка активності карбоксипептидази Н відрізняється від ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази.

  6. У відділах мозку тварин обох статей різного віку відзначається висока позитивна кореляція активності карбоксипептидази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази. У гіпофізі, надниркових і статевих залозах кореляції між ними немає.

  7. Пренатальна алкоголізація впливає на активність карбоксипептидази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в тканинах щурів. Причому у випадку карбоксипептидази Н цей вплив більш виражено, ніж у випадку ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази, як у період статевого дозрівання, так і у дорослих тварин.

  8. У пренатально алкоголізірованних тварин обох статей різного віку активність карбоксіпептіддази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в багатьох тканинах нижче, ніж у нормі. Виняток становить активність карбоксипептидази Н в гіпофізі і гіпоталамусі і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в гіпофізі у дорослих самок, де ферментативна активність вище в порівнянні з контролем.

  9. Пренатальний вплив етанолу порушує вікову динаміку активності карбоксипептидази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в більшості тканин щурів обох статей. У ембріонально алкоголізірованних тварин ферментативна активність менше залежить від віку, ніж у інтактних. Очевидно, зміна вікової динаміки активності досліджених ферментів у ембріонально алкоголізірованних особин відображає один з механізмів опосередкованого порушення вмісту активних пептидів під час найважливіших пубертатних періодів і, отже, порушення розвитку організму, спостерігались у нащадків алкоголіків.

  10. При пренатальної алкоголізації змінюються статеві відмінності активності досліджених карбоксипептидази в деяких тканинах тварин різного віку. При цьому ферментативна активність, особливо в разі карбоксипептидази Н, менше залежить від статі в порівнянні з контрольними групами.

  11. У деяких тканинах при пренатальної етанольних інтоксикації спостерігається різне і / або різноспрямована зміна активності карбоксипептидази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази, або зміна активності тільки одного з ферментів. Це може бути однією з причин відзначається порушення співвідношення рівня різних регуляторних пептидів.

  12. У самців спільна дія пренатальної та постнатальної алкоголізації викликає в більшості досліджуваних тканин більш суттєві зміни активності карбоксипептидази Н і ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази, ніж кожен з цих видів інтоксикації окремо.

  13. У самок пренатальна алкоголізація в більшості тканин не підсилює зміна активності обох ферментів при подальшому постнатальному впливові етанолу.

  14. Спільна дія пренатальної та постнатальної алкоголізації викликає поява статевих відмінностей активності ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в більшості тканин, в порівнянні з нормою і з кожним видом інтоксикації окремо.

  15. З урахуванням впливу пренатальної алкоголізації на активність досліджуваних ферментів в процесі розвитку тварин, при подальшому хронічному впливі етанолу в постнатальному періоді, і відмінності змін ферментативної активності при вказаних впливах на самок і самців, запропонована гіпотетична схема одного з можливих механізмів формування схильності до алкоголізму у пренатально алкоголізірованних особин за участю досліджених ферментів.

ЛІТЕРАТУРА

  1. Азарян А.В. Пептідгідролази нервової системи та їх біологічні функції - Єреван, Айастан, 1989, - 208 с.

  2. Актушіна Г. А., Лютикова Т. М. / / Структурні основи і регуляція компресаторно - пристосувальних реакцій. - Омськ, 1986. - С. 28.

  3. Алієв Н. А. Нейрогормони і алкоголізм. / / Пат. Фізіолого. Експер. Терапія. - 1989. - 5, № 5. - С. 85-90.

  4. Андронова Л. М. Біологічний механізм і фармакотерапія експериментального алкоголізму в залежності від статевих відмінностей: Автореф. дис ... док. мед наук. - М., 1989. 36 с.

  5. Анохін І.К. Біологія і нейрофізіологія умовного рефлексу. - М.: Медицина, 1968. - 547 с.

  6. Анохіна І.П. Нейро-гуморальні основи впливу алкоголю на потомство / / Тез. докл. съезда Всесоюз. Х V з'їзду Всесоюз. физиол. т-ва ім. І. П. Павлова. - Л., 1987. - С. 298-300.

  7. Анохіна І.П., Балашов А.М., Коган Б.М., Панченко Л.Ф. Роль опіатної системи в механізмах формування алкогольної залежності / / Зап. нарк. - 1989. № 3. - С. 3-1.

  8. Анохіна І.П., Векшина Н.Л., Кузнєцова М.М,, Овчинникова Л.М., Станішевська А.В., Христолюбова Н.А., Шамакіна І.Ю. Деякі біологічні механізми вродженої схильності до алкоголізму / / фізіолого. жур. їм І.М. Сєченова. - 1992. - 78, № 12. - С. 30-38.

  9. Анохіна М. П. Роль опіатної системи в механізмах формування алкогольної залежності. / / Зап. наркол. - 1989. № 3. - С. 3-11.

  10. Ашмарин І.П., Каменська М.А. Нейропептиди у симпатичної передачі / / Підсумки Н. і Т. (ВІНІТІ. Сер. Фізіологія людини і тварин). - 1988. - 34, 184 с.

  11. Бабаян Е. А., Гонопольський М. Х. Наркологія. - М.: Медицина, 1987 - 335 с.

  12. Бабічев В.М. Нейроендокринний контроль процесів пубертации / / Усп. сучас. біол. - 1994. - 114, № 3. - С. 330-344.

  13. Балаклаавскій А.І., Маслова І.В., Петренко С.В., Суриков П.М. Зміст енкефалінів і циклічних нуклеотидів у структурах мозку щурів у різні стадії формування і розвитку алкогольної залежності / / 1986. № 3. - С. 291-295.

  14. Балаклевскій А. І., Гесіна Л. В., Гурло І. Б. та ін Механізми підвищення вмісту продуктів перекисного окислення ліпідів та активності каталази в плазмі крові хворих на хронічний алкоголізм, тканинах тварин при експериментальному алкоголізмі і лікувальної дії апоморфіну тетурама. Обгрунтування мембранотропних терапії алкоголізму. / / Респуб. мiжвiд. наук. робота. Алкогольна інтоксикація і залежність. Механізми розвитку, діагностика, лікування: - Мінськ: «Білорусь», - 1988. - С. 116-144.

  15. Бардіша Л. Р., Сатанівська В. І. Метаболічна адаптація до алкоголю у щурів, що розрізняються за бажанням етанолу воді / / Зап. мед. хімії - 1999. № 2 - С. 45-48.

  16. Бейрд Д.Т. Яєчник / / Гормональна регуляція розмноження у ссавців. - М.: Мир, 1987, - С. 118-144.

  17. Бєляєв М. А., Генгін М., Година С. В., Каліхевіч В. М., Панченко Л. Ф. Активність енкефалінконвертази у відділах мозку щурів при алкогольної інтоксикації / / Зап. мед. хімії. 1988. 34, № 4. - С. 118-122.

  18. Бєляєв Н.А., Балакірєва М.М., Брусов О.С., Панченко Л.Ф. Вплив етанолу на енкефалінергіческую опіоїдних систему мозку щурів / / Біохімія - 1984. - 49, № 9. - С. 1425-1430.

  19. Бєляєв Н.А., Брусов О.С., Панченко Л.Ф. Вплив хронічного споживання алкоголю на активність енкефалінази А в стріатумі, гіпокампі і середньому мозку щурів / / Зап. мед. хімії - 1983. - 29, № 1. - С. 102-110.

  20. Бєляєв Н.А., Генгін М.Т., Година С.В., Каліхевіч В.М., Панченко Л.Ф. Активність енкефалінконвертази у відділах мозку щурів при алкогольної інтоксикації / / Зап. мед. хім. - 1988. № 4. - С. 118-120.

  21. Божко Г. Х., Волошин П. В. Дія етанолу на білки тканин і сироватки крові людини і тварин. / / Усп. сучас. біол. - 1989. - 108, № 1 (4). - С. 52-65.

  22. Бородкін Ю. С., Усатенко М. С., Петрова П. А. Фармакологія - клініці. / / Збірник наукових праць під ред. Ю. С. Бородкіна, - 1988. - С. 44-45.

  23. С ., Усатенко М. С ., Разумовская Н. И. // Алкоголизм и наследственность. Бородкін Ю. С. Усатенко М. С. Разумовська Н. І. / / Алкоголізм і спадковість. - Л: 1987. - С. 52.

  24. Буров Ю.В., Ведерникова К.М. Нейрохімія та фармакологія алкоголізму. / / М. Мед. - 1985. 240 с.

  25. Бурчинський С. Г., Фролькіс М.В. Нейропептиди при старінні / / Нейрохімія. - 1987. - 6, № 2, - С. 269-281.

  26. Бутова О.А. Функціональний стан гіпоталамо-гіпофізарно-адренокортикальної системи потомства при впливі алкоголем на організм матері: Автореф. дис .... канд. мед. наук. - М., 1985. -22 С.

  27. Венедиктова М.М., Борисова І.П., Орєхов С.М. Чи є етанол стресогенним чинником для щурів зі сформованою алкогольною мотивацією? 1989. № 4. - С. 456-458.

  28. Вернигора А. Н., Генга М. Т., Щетиніна Н. В., Нікішин І. І. Порівняння тривалого впливу етанолу, транквілізаторів і емоційного стресу на активність деяких ферментів метаболізму нейропептидів. / / Науково-практична конфер. - СПб, 1996. - С. 26-30.

  29. Вернигора А. Н., Генгін М., Макарова В. В. Вплив стресових чинників на активність карбоксипептидази Н у відділах головного мозку щурів / / Укр. биохим. журн. - 1992. - 64. № 2. - С. 45-49. Н124.

  30. Вернигора А. Н., Генгін М., Нікішин М. М. Про участь деяких ферментів обміну нейропептидів в механізмах емоційного стресу / / фізіолого. журн. - 1995. - 81. № 5. - С. 103-112.

  31. Вернигора О.М. Дослідження ролі ферментів обміну нейропептидів в механізмах емоційного стресу і формування залежності від етанолу.

  32. Вернигора О.М., Генгін М.Т. Вплив етанолу на активність карбоксипептидази Н в гіпофізі і деяких відділах головного мозку щурів при різних стрессірующіх впливах / / фізіолого. жур. ім. Сєченова - 1993. - 79, № 3. З 34-37. ХЕ208,

  33. Вернигора О.М., Генгін М.Т. Вплив етанолу на активність розчинної і мембрано-зв'язаної карбоксипептидази Н у відділах головного мозку щурів при іммобілізаційному стресі. / / Зап. мед. хімії. - 1994. - 40. № 1. - С. 54-56.

  34. Вернигора О.М., Генгін М.Т. Механізми регуляції активності та біологічна роль карбоксипептидази Н - ферменту процесингу нейропептидів / / Біохімія. - 1995. -60, № 12. - С. 1491-1497.

  35. Вернигора О.М., Генгін М.Т. Протеолітичні ферменти: субклітинних локалізація, властивості та участь в обміні нейропептидів / / Біохімія - 1996. - 61, № 5. - С. 771-785.

  36. Вернигора О.М., Генгін М.Т. Субклітинних локалізація карбоксипептидази Н в сірій речовині головного мозку кішки / / Укр. Биохим. журнал.-1992. -64, № 2. - С. 45-49.

  37. Вернигора О.М., Генгін М.Т., Нікішин Н. М. Очищення і фізико-хімічні властивості розчинної карбоксіпептідізи Н із сірої речовини головного мозку кішки / / Біохімія. - 1992. - 57, № 11. - С. 1712-1719.

  38. Вернигора О.М., Генгін М.Т., Салдан Д.А., Щетиніна Н.В. Розподіл активності фенілметілсульфонілфторід-інгібіруемой карбоксипептидази в нервовій тканині котів / / Нейрохімія - 1997. - 14, № 4. - С. 423-425.

  39. Вернигора О.М., Нікішин М.М., Генгін М.Т. Вплив глюкортікоідов на активність розчинної і мембранозв'язаних форм карбоксипептидази Н in vivo / / Укр. биохим. журн. - 1995. - 67, № 6. - С. 93-98.

  40. Вернигора О.М., Нікішин М.М., Генгін М.Т. Часткова характеристика фенілметілсульфонілфторід-інгібіруемой карбоксипептидази з головного мозку кішки / / Біохімія - 1995. - 60, № 11. - С.1860-1866.

  41. Вернигора О.М., Щетініна Н.В., Генгін М.Т. Дослідження активності основних (відщеплюють залишки аргініну і лізину) карбоксипептидази у щурів різного віку / / Біохімія - 1996. - 61, № 10. - С. 1848-1856.

  42. Вернигора О.М., Щетініна Н.В., Генгін М.Т. Розподіл активності ФМСФ-інгібіруемой карбоксипептидази в тканинах і відділах головного мозку їжака європейського (Erinaceus europaeus) / / Укр. биохим. журн. - 1996. - 68, № 5. - С.118-121.

  43. Вернигора О.М., Щетініна Н.В., Салдан Д.А., Генгін М.Т. Розподіл активності основних карбоксипептидази в тканинах лабораторних тварин різних видів / / Ж. еволюції. биохим. физиол. - 2002. - 38, № 1. - С. 25-27.

  44. Генгін М. Вернигора О. М. Вплив етанолу на активність карбоксипептидази Н в мозку щурів / / Укр. биохим. журн. - 1993. - 65. № 1. - С. 100-103.

  45. Генгін М. Т., Вернигора О. М. Вплив емоційно-больового стресу та етанолу на карбоксипептидази-Н-подібну активність у гіпофізі та сироватці крові щурів. / / Зап. мед. хімії. - 1994. - 40, № 1. - С. 52-54.

  46. Генгін М.Т. Особливості структурно-функціональної організації та фізико-хімічні властивості нелізосомальних пептідгідролаз мозку тварин: Автореф. дис. ... Док. біол. наук. - Пенза, 2002. - 35 с.

  47. Генгін М.Т., Вернигора О.М. Нова карбоксипептидаза процесингу енкефалінів нервової тканини тварин / / Укр. биохим. журн. - 1989. - 61, № 3. - С.62-66.

  48. Генгін М.Т., Вернигора О.М. Ферменти процесингу опіоїдних пептидів і методи визначення їх активності / / Укр. биохим. журн. - 1994. - 66, № 2. - С.3-17.

  49. Генгін М.Т., Вернигора О.М., Нікішин М.М. Вплив емоційно-больового стресу на активність ВПП - ферменту процесингу нейропептидів головного мозку щурів / / фізіолого. ж. - 1994. - 80, № 3. - С.23-27.

  50. Генгін М.Т., Вернигора О.М., Нікішин М.М., Керімов В.Ю. Ефект емоційного стресу на активність карбоксипептидази Н у відділах головного мозку щурів з різною до нього стійкістю / / Зап. мед. хімії. - 1995. - 41, № 4. - С.8-9.

  51. Генкіна О.М., Курелла Б. Деякі нейрофізіологічні аспекти дії алкоголю на центральну нервову систему / / Зап. наркол. - 1988. № 4. - С. 38-40.

  52. Гомазков О. А. Функціональна біохімія регуляторних пептидів. - М.: Наука. 1993, 160 с.

  53. Гомазков О. А., Панфілов А. Д., Коміссарова Н. В., Ростовцев А. П. Вплив тривалого споживання етанолу на фізіологічний стан і зміни активності пептидаз мозку у муріцідних (агресивних) щурів / / Журн. вищ. нервн. діяльності. - 1992. - 42. № 4. - С. 771-778.

  54. Гомазков О. А., Панфілов А. Д., Ростовцев А. П., Коміссарова Н. В., Фомін В. В., Грігорьянц О.О. - образующих пептидаз мозга и периферических тканей у крыс с различным влечением к этанолу. Регіональна активність енкефалінів-і ангіотензин II - утворюючих пептидаз мозку і периферичних тканин у щурів з різним потягом до етанолу. / / Зап. мед. хімії. - 1991. - 37, № 4. - С. 33-37.

  55. Гомазков О.А. Ензимологічні основи фізіологічного дії регуляторних пептидів / / Біологічні науки. - 1986, № 2. - С. 13-23.

  56. Григор О.О., Гомазков О.А. Енкефалінобразующіе ферменти / / Зап. мед. хімії. - 1986. - 32, № 3. - С. 15-20.

  57. Громова Е.А., Бобкова Н.В., Плакхінас Л.А., Дейгін В.І., Ярова Є.П., Михалева І.І. Роль моноамінергічних систем мозку в протиалкогольної дії динорфінів і пептиду дельта-сну / / фізіолого. жур. ім. Сєченова - 1989. - 75, № 5. - С. 633-636.

  58. Груздева К. М., Висогорскій Р. Є., Купор В. Г. Ферменти окислення етанолу та його метаболітів при гострої алкогольної інтоксикації і іммобілізаційному стресі / / Питання наркології. - 1991. № 4. - С. 2-4.

  59. Гурін В.М., Сандахов Д.Б., Гурін А.В. Активність протеїну головного мозку і мобільних ендогенних інгібіторів протеолізу як фактор формування функціонального стану організму / / Фізіологія людини. - 1999. - 25, № 1, - С. 71-77.

  60. Зілов В.Г., Рогачова С.К., Іванова Л.І. Підвищення стійкості реакції уникнення до етанолу на тлі речовини / / Бюлл. експ. біол. мед. - 1991. № 3. - С. 281-284.

  61. Казакова П. Б., Хохріна Н. Т. / / Ж. невропатії. Психіатрії ім. С. С. Корсакова. - 1986. - 88, № 7. - С. 1033-1036.

  62. Келешева Л.Ф., Судаков К.В. Олігопептиди в механізмах алкогольної мотивації. Нові підходи до вивчення алкоголізму, наркоманії і токсикоманії / / Міжнародний симпозіум - Гагра, 28-30 березня. 1989. - С. 6-7.

  63. Керменгольц Б.М. Основні біохімічні механізми впливу екзогенного етанолу на обмін речовин в організмі людини / / Збірник наукових праць. Етанол і його метаболізм у вищих організмах. Якутська. 1990. - С. 106-125.

  64. Кирющенков А.П. Алкогольний синдром плода / / Алкоголізм і спадковість / Мат-ли межд. симпозіуму. - М., 1987. - С. 79-83.

  65. Клешева Л. Ф., Судаков К. В. Олігопептиди в механізмах алкогольної матіваціі. / / Нові підходи до лікування алкоголізму, наркоманії і таксікоманій (тез. докл). Междун. призначення;. - Гагра, 1989. - С. 65-66.

  66. Колупаєв Г. М., Яковлєв В. А. Гормональні порушення при хронічній інтоксикації алкоголем. / / Ж. невропатії. Псих. ім. Корсакова. - 1984. - 11. - С. 1712-1714.

  67. Кузін О. М. Структурно - метаболічна теорія в радіобіології. М.: Наука, 1986. - 285 с.

  68. Лакин Г.Ф. Біометрія. - М.: Вищ. шк., 1990. - 352 с.

  69. Майзеліс М.Я., Заблудовський А.Л. Зміст енкефалінів у відділах головного мозку щурів, які перенесли внутрішньоутробний вплив етанолу / / Бюл. Експ. Біол. Мед. - 1986. - № 3. - С. 311-312. ПЕ87,

  70. Майзеліс М.Я., Заблудовський А.Л., Шихов С.М. Особливості поведінки та білкового обміну в мозку другого покоління тварин, які отримували етанол під час вагітності / / Ж. Невропатії психіатричних. -1989. - 89, № 2. - С. 112-117.

  71. Травневий А. І., Ведерникова М. М., Чистяков В. В., Макін В. В. Біологічні основи наркоманій. - М.: Мед., 1982,. - 256 с.

  72. Маркель А.Л., До оцінки основних характеристик поведінки щурів в тесті «відкрите поле» / / Ж. вищ. нервн. деят. - 1981. - ХХХI, № 2. - С. 301-307.

  73. Маркель А.Л., Хусаїнов Р.А. Метод комплексної реєстрації поведінкових і вегетативних реакцій у щурів при проведенні тесту «відкритого поля» / / Ж. вищ. нервн. деят. - 1976. - 26, № 6. - С. 1314.

  74. Маркель О.М., Галактионов Ю.К., Єфімов В.М. Факторний аналіз поведінки щурів в тесті відкритого поля / / Ж. вищ. нервн. деят. - 1988. , № 5. - ХХХ VIII, № 5. - С. 855-863.

  75. Медведєв В.І., Миролюбов А.В. Проблема управління функціональним станом / / Фізіологія людини. - 1984. - 10, № 5. - С. 761.

  76. Нейрохімія / Під. ред. Ашмаріна І.П., Стукалова П.В. М.: Видавництво Інституту Біомедичної хімії РАМН. - 1996. 470 с.

  77. атановская В. И., Садовник М. Н. Биологический компонент в генезе алкоголизма. Островський Ю. М., C атановская В. І., Садівник М. М. Біологічний компонент в генезі алкоголізму. - Мінськ: Наука і техніка, 1986, - 95 с.

  78. Островський Ю. М., Сатанівська В. І., Островський С. Ю. та ін Метаболічні передумови та наслідки споживання алкоголю. - Мінськ: Наука і техніка, 1988. 264 с.

  79. Панченко Л. Ф., Бєляєв І. А. Енкефалінергіческая опіоїдна система і етанол: патогенетичне обгрунтування нових напрямків пошуку засобів лікування алкоголізму. / / Сучасні проблеми нейропсіхофармакологіі, принципи патогенетичного лікування хворих нервовими і психічними розладами (Тез.докл.). - М, 1984. - С. 147-150.

  80. Панченко Л. Ф., Брусов О. С., Бєляєв І. А. Дослідження механізму дії етанолу на активність енкефаліази А мозку щурів. / / Біол. експертів. біол. і мед. - 1984. - 47. - С. 691-692.

  81. Панченко Л. Ф., Пільміярова Ф. Н., Радомська В. М. Етанол і атеросклероз. - М.: Медицина, 1987. 128 з.

  82. Панченко Л.Ф., Пирожков С. В., Антоненков В. Д. Пероксісомальная ферментативна система окислення етанолу. / / Біологічні та медичні аспекти алкоголізму: Матер. межд. призначення;. / Під ред. акад. АМІ СРСР П. В. Морозова / М. - 1984. - С. 137-144.

  83. Попова Е.М. Ультраструктура нейронів сенсомотороной кори у потомства щурів, які отримували алкоголь під час вагітності / / Архів Анат. Гістол. Ембріол. - 1988. - № 3. - С. 5-8.

  84. П'ятницька І. М. Зловживання алкоголем і початкова стадія алкоголізму. - М.: Медицина, 1988. - 288 с.

  85. Раєвський К.С., Айраксінен М.М., Травневий А.І. Вплив етанолу на рівень дофаміну і його метаболітів у мозку щурів з різною стійкістю до стресу / / Бюлл. експ. біол. мед. - 1990. № 4. - С. 362-365.

  86. Ростовцев А. В., Грігорьянц О. О., Гомазков О. А. Субстрати для дослідження енкефалінобразующей карбоксипептидази в мозку і наднирниках щури / / Зап. мед. хімії. 1988. 34. - 1. С. 126-129.

  87. Салдана Д.А. Активність основних карбоксипептидази в тканинах мишей при введенні тестостерону і прогестерону: Автореф. дис. ... Канд. біол. наук. - СПб., 2001. - 20 с.

  88. Салдана Д.А. Активність основних карбоксипептидази в тканинах мишей при введенні тестостерону і прогестерону: Автореф. дис. ... Канд. біол. наук. - СПб., 2001. - 20 с.

  89. Сатанівська О.А. Окислення етанолу / / Зап. мед. хімії - 1991. - 114, № 5. - С. 573-580.

  90. Скосирева А.М., Балика Ю.Д., Картамишева В.Є. Вплив етилового алкоголю на розвиток ембріона в експерименті / / Акушерство і гінекологія. - 1981. - № 1. -С. 38-40.

  91. Сторожок С. А., Панченко Л. Ф., Пилипович Ю. Д., Глушков В. С. Зміни фізико-хімічних властивостей біологічних мембран при розвитку толерантності до етанолу. / / Зап. мед. хімії. - 2001. № 2. - С. 23-28.

  92. Сторожок С.А. Вміст гідроперекисів в ліпідах, активність супероксідісмутази і глюкозо-6-фофсатдегідрогенази еритроцитів при алкогольної інтоксикації / / Зап. мед. хімії - 1983. - 29, № 6. - С. 31-34.

  93. Судаков К.В. Геном і олігопептиди в системних механізмах навчання / / Треті Павловські читання, Рязань. - 1989. - С. 3.

  94. Сухоруков В.С., Тарабрін С. Б. Роль пролактіла в регуляції функцій чоловічої гонади / / Усп. сучас. біол. - 1993. - 113, № 3. - С. 366-376.

  95. Тінніков А.А. Роль гіпоталамо-гіпофізарно-надниркової системи в регуляції статевого розвитку / / Усп. сучас. біол. - 1990. - 110, № 3 (6). - С. 419-428.

  96. Троїцький Г. В., Багдасарян С. М. / / Зап. мед. хімії - 1987, - 33, № 2,. - С. 38-42.

  97. ., Петрова М. А., Матвеева М. М. и др. Динамика активности ферментов – маркеров системного употребления алкоголя в крови больных алкоголизмом // Вопр. Усатенко М. C., Петрова М. А., Матвєєва М. М. та інших Динаміка активності ферментів - маркерів системного вживання алкоголю в крові хворих алкоголізмом / / Зап. наркології. - 1991. № 4. - С. 9-12.

  98. Хоха А. М. Пригнічення етанолом біосинтезу статевих гормонів та гіпоталамо-гіпофізарно-надниркова система / / Зап. мед. хімії - 1994. - 114, № 5. - С. 573-580.

  99. Чиркова С.К., Війт І.С. Вплив алкоголю на розвиток гострих емоційно-стресорні станів у мавп / / Жур. вищ. нервн. деят. - 1990. - 40, № 3. - С. 585-587.

  100. Щетиніна Н.В. Активність основних карбоксипептидази в тканинах і відділах мозку щурів в онтогенезі: Автореф. дис .... канд. біол. наук. - СПб., 1997 - 20 с.

  101. Щетиніна Н.В., Вернигора О.М., Генгін М.Т. Активність основних карбоксипептидази у щурів різної статі / / Укр. биохим. журн. - 1997. - 70, № 3. - С. 110-113.

  102. Щетиніна Н.В., Вернигора О.М., Генгін М.Т., Фірстова Н.В. Тканинне і регіональний розподіл активності фенілметілсульфонілфторід-інгібіруемой карбоксипептидази та інших карбоксипептидази у щурів / / Укр. биохим. журн. - 1997. - 70, № 3. - С. 23-28.

  103. Ендорфіни: Пер. з англ. / Под ред. Е. Коста, М. Трабуккі. Переклад Панова М.А.; Під ред. В. Б. Розена - М.: Світ, 1981. - 368 с.

  104. Янський Л., Вибирав С., Романовський О.О., Гурін В.Н Механізм впливу нейропептидів на терморегуляцію / / Нейропептиди і терморегуляція / Под ред. В.Н. Гуріна, Мінськ. - 1990. - С. 9.

  105. Aasmoe L., Aarbakke J. Sex dependent induction of alcohol-dehydrogenase activity in rats / / Biochem. Pharmacol. - 1999. - 57, N 9. - P. 1067-1072.

  106. Adams N., Oldham TD, Briscoe JT, Hannah JA, Blizard DA Ethanol preference in maudsley and RXNRA recombinant inbred strains of rat / / Alcohol - 2001. - 24, N 1. - P. 25-34.

  107. Agarwal DP, Goedde HW Aldehyddehydrohenazes of human: genetiсs reason a different sens: tiveness to alсohol / / Genet. Biol. с oholism. Al з oholism. - 1990. С . - С. 253-261.

  108. Aguilardiosdado M., Parkinson D., Corbett JA, Kwon G., Marshall CA, Gingerich RL, Santiago JV, Mcdaniel ML Potential autoantigens in IDDM - expression of carboxypeptidase H and insulin but not glutamatedecarboxylase on the beta-cellsurface / / Diabetes. - 1994. - 43, N 3. - P. 418-425.

  109. Aird F., Halasz I., Redei E. Ontogeny of hypothalamic corticotropin-releasing factor and anterior pituitary proopiomelanocortin expression in male and female offspring of alcohol exposed and adrenalectomized dams / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1997. - 21, N 9. - P. 1560-1566.

  110. Alcalde L., Tonacchera M., Costagliola S., Jaraquemada D., Pujol Borrell R., Ludgate M. Cloning of candidate autoantigen carboxypeptidase H from a human islet library: sequence identity with human brain CPH / / J. Autoimmunity. - 1996. - 9, N 4. - P. 525-528.

  111. Allan AM, Weeber EJ, Savage DD, Caldwell KK Effects of prenatal ethanol exposure on phospholipase C-beta-1 and phospholipase A (2) in hippocampus and medial frontal cortex of adult rat offspring / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1997. - 21, N 8. - P. 1534-1541.

  112. Alling C., Gustavsson L., Hansson E., Ronnback L. Lipids and fatty acids in membranes from astroglial cells cultured in ethanol-containing media. / / Drug. с ohol. Al з ohol. Depend. - 1986. - 18, N 2. - P. 115-126.

  113. Almeida OFX, Shoaib M., Deicke J., Fischer D., Darwish MH, Patchev VK, Gender differences in ethanol preference and ingestion in rats - the role of the gonadal-steroid environment / / J. Clin. Invest. - 1998. - 101, N 12. - P. 2677-2685.

  114. Angelucci F., Fiore M., Cozzari C., Aloe L. Prenatal ethanol effects on NGF level, NPY and chat immunoreactivity in mouse entorhinal cortex - a preliminary-study / / Neurotoxicol. Teratol. - 1999. - 21, N 4. - P. 415-425.

  115. Azaryan AV, Hook VYH Unique cleavage specificity of prohormone thiol protease related to proenkephalin processing / / FEBS Lett. - 1994. - 341, N 2-3. - P. 197-202.

  116. Bader MF, Simon JP, Sontag JM,. Langley K., Aunis D. Role of calcium in secretion and synthesis in bovine adrenal chromaffin cells / / Adv. Exp. Biol. Med. Biol. - 1990. - 269. - P. 93-97.

  117. Barry RE, McGivan JD Acetaldehyde alone may initiate hepatocellular damage in acute alcoholic liver disease / / Gut. - 1985. - 26, N 10. - P. 1065-1069.

  118. Bayon A., Shoemaker WS, Bloom FE, Mauss A., Guillemin R. Perinatal development of the endorphin and enkephalincontaining systems in the rat brain / / Brain Res. - 1979. - 179. - P. 93-101.

  119. Beinfeld MC, Korchak DM, Nilaver G., O'Dorisio TM The development of motilin, cholecystokinin and vasoactive intestinal polypeptide in the forebrain and hindbrain of the rat, as determined by radioimmuno assay / / Der. Brain. Res. - 1983. - 10. - P. 146-150.

  120. Bell SM, · Reynolds JG, Thiele TT, Gan J., Figlewicz DP, Woods SC Effects of third intracerebroventricular injections of corticotropin-releasing factor (CRF) on ethanol drinking and food intake / / Psychopharmacology - 1998. . V. 139. - P. 128-135.

  121. Bellparikh LC, Eipper BA, Mains RE Response of an integral granule membrane protein to changes in pH. / / J. Biol. Chem. - 2001. - 276, N 32. P. 29854-29863.

  122. Beresford T., Arciniegas D., Rojas D., Sheeder J., Teale P., Aasal R., Sandberg E., Reite M. Hippocampal to pituitary volume ratio: a specific measure of reciprocal neuroendocrine alterations in alcohol dependence / / J . Stud. Alcohol. - 1999. - 60, N 5. - P. 586-588.

  123. Bidder M., Weizman R., Fares F., Grel I., Gavish M. Chronic ethanol consumption and withdrawal affects mitochondrial benzodiazepine receptors in rat brain and peripheral organs / / Biochem. Pharmacol. - 1992. - 44, N 7. - P. 1335-1339.

  124. Birch NP, Rodriguez C., Dixon JE, Mezey E. Distribution of carboxypeptidase H messenger RNA in rat brain using in situ hybridization histochemistry: implications for neuropeptide biosynthesis / / Brain Res. Mol. Brain Res. - 1990. - 7, N 1. - P. 53-59.

  125. Blum H. Alсohol and Сentral nervous system peptides. / / Supst. Alсohol Aсt. Misuse. - 1983. - 4, N 2-3. - P. 73-78.

  126. Bommer M, Nikolarakis K, Noble EP, Herz A. In vivo modulation of rat hypothalamic opioid peptide content by intracerebroventricular injection of guanidinoethylmercaptosuccinic acid (GEMSA) possible physiological role of enkephalin convertase / / Brain Res. - 1989. - 492, N 1 / 2. - P. 305-313.

  127. Bonten EJ, Galjart NJ, Willemsen R, Usmany M, Vlak JM, d'Azzo A. Lysosomal protective protein / cathepsin A. Role of the "linker" domain in catalytic activation / / Biol Chem. - 1995. - 270, N 44. - P. 26441-26445.

  128. Boyadjieva N., Meadows G., Sarkar D. Effects of ethanol consumption on ß-endorphin levels and natural killer cell activity in rats / / A nn. New York Acad. Sci. . - 1999. N. 885. . - P. 383-386.

  129. Brust P., Bech A., Kretzschmar R., Bergmann R. Developmental changes of enzymes involved in peptide degradation in isolated rat brain microvessels / / Peptides. - 1994. - 15, № 6. - P. 1085-1088.

  130. Burd L., Martsolf JT Fetal alcohol syndrome variability / / Physiol. Behav. - 1989. - 46, N 1. - P. 39-43.

  131. Bures EJ, Courchesne PL, Douglass J., Chen K., Davis MT, Jones MT, Jones MD, Mcginley MD, Robinson JH, Spahr CS, Sun JL, Wahl RC, Patterson SD Identification of incompletely processed potential carboxypeptidase-E substrates from Cpefat / Cpefat mice. / / Proteomics. - 2001. - 1, N 1. P. 79-92.

  132. Butters NS, Gibson MAS, Reynolds JN, Brien JF Effects of chronic prenatal ethanol exposure on hippocampal glutamate release in the postnatal guinea pig / / Alcohol - 2000. - 21, N 1. - P. 1-9.

  133. μ –opioid receptors in specific brain regions of ovariectomized rats // Life Sci. Carter A., Soliman.MRI Estradiol and progesterone alter ethanol induced effects on μ-opioid receptors in specific brain regions of ovariectomized rats / / Life Sci. - 1997. - 62, N 2. - P. 93-101.

  134. Castoldi AF, Barni S., Randine G., Costa LG, Manzo L. Ethanol selectively interferes with the trophic action of NMDA and carbachol on cultured cerebellar granule neurons undergoing apoptosis / / Develop. Brain Res - 1998. - 111, N 2. - P. 279-289.

  135. Charness MF Ethanol and opioid reсeptor signalling / / Experientia. - 1989. - 45, N 5. - P. 418-428.

  136. Che FY, Yan L., Li H., Mzhavia N., Devi LA, Fricker LD, Identification of peptides from brain and pituitary of Cpe (Fat) / Cpe (Fat) mice. / / Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 2001. - 98, N 17. P. 9971-9976.

  137. Chen H. Jawahar S., Qian YM, Duong QY, Chan GY, Parker A., ​​Meyer JM, Moore KJ, Chayen S., Gross DJ, Glaser B., Permutt MA, Fricker LD Missense polymorphism in the human carboxypeptlidase-E gene alters enzymatic activity. . / / Hum. Mutat. - 2001. - 18, N 2. P. 120-131.

  138. Conway S., Ling SY, Leidy JW, Blaine K., Holtzman T., Effect of fetal ethanol exposure on the in vitro release of growth hormone, somatostatin and growth hormone - releasing factor induced by clonidine and growth hormone feedback in male and female rats / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1997. - 21, N 5. - P. 826-839.

  139. Cool DR, Loh YP Carboxypeptidase E is a sorting receptor for prohormones - binding and kinetic studies / / Mol. Cell. Endocrinol. - 1998. - 139, N 1-2, P. 7-13.

  140. Cool DR, Normant E., Shen FS, Chen HC, Pannell L., Zhang Y., Loh YP Carboxypeptidase E is a regulated secretory pathway sorting receptor: genetic obliteration leads to endocrine disorders in Cpe (Fat) mice / / Cell. - 1997. - 88, N 1, P. 73-83.

  141. Crippens D., White ML, George MA, Jaworski JN, Brunner LJ, Lancaster FE, Gonzales RA Gender differences in blood levels, but not brain levels, of ethanol in rats / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1999. - 23, N 3. - P. 414-420.

  142. Dakes MJ, Davis TP The ontogeny of enzymes involved in posttranslational processing and metabolism of neuropeptides / / Dev. Brain Res. - 1994. - 80, N 1-2, P. 127-136.

  143. Daniel MA, Evans MA Quantitative comparison of maternal ethanol and maternal tertiary butanol diet on postnatal development / / J. Pharmacol. Exp. Ther. - 1982. - 222, N 2. - P. 294-300.

  144. Das B., Sablan EL, Kilbourne EJ, Fricker LD Regulation of carboxypeptidase E by membrane depolarization in PC12 pheochromocythoma cells: comparison with the mRNA's encording other peptide and catecholamine's biosynthetic enzymes / / Neurochem. - 1992. - 59, N 6. - P. 2263-2270.

  145. Davidson HW, Hutton JC The insulin-secretory-granule carboxypeptidase H: Purification and demonstration of involvement in proinsulin processing / / Biochem. J. - 1987. - 245, N 2. - P. 575-582.

  146. ß -endorphin metabolism by purified synaptosomal plasma membranes. Davis TP, Gulling-Berglund AS, Gillespie TS, Smith TL Ethanol treatment alters ß-endorphin metabolism by purified synaptosomal plasma membranes. / / Peptides. - 1987. - 8, N 3. - P. 467-472.

  147. Demmer W., Brand K. Carboxypeptidase activity in synaptic vesicles isolated from striatum and cortex of calf brain / / Arch. Biochem. Biophys. - 1985. - 239, N 2. - P. 375-378.

  148. Devaud LL, Chadda R., Sex-differences in rats in the development of and recovery from ethanol dependence assessed by changes in seizure susceptibility / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2001. - 25, N 11. - P. 1689-1696.

  149. Devaud LL, Fritschy JM, Morrow AL Influence of gender on chronic ethanol induced alterations in GABA (A) receptors in rats / / Brain Res. - 1998. - 796, N 1-2. - P. 222-230.

  150. Dhanvantari S., Loh YP Lipid raft association of carboxypeptidase E is necessary for its function as a regulated secretory pathway sorting receptor. / / J. Biol. Chem. -2000. - 275, N 38. P. 29887-29893.

  151. Dochetry K., Hutton JC Carboxypeptidase activity in the insulin secretory granule / / FEBS Lett. - 1983. - 162, N 1. - P. 137-141.

  152. Dronou A., Lucas D., Powell LW / / Clin. Chem. - 1985. - 31, N 9. - P. 1543-1546.

  153. Druse MJ, Hao HL, Eriksen JL In utero ethanol exposure increases proenkephalin, a precursor of a neuropeptide that Is inhibitory to neuronal growth / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1999. - 23, N 9. - P. 1519-1527.

  154. Du XP, Hamre KM Increased cell death in the developing vestibulocochlear - ganglion complex of the mouse after prenatal ethanol exposure / / Teratology - 2001. - 64, N 6. - P. 301-310.

  155. Dufouil C., Ducimetiere P., Alperovitch A., Sex-differences in the association between alcohol consumption and cognitive performance / / Amer. J Epidemol. - 1997. - 146, N 5. - P. 405-412.

  156. Dulka JG, Maler L., Ellis W. Androgen-induced changes in electrocommunicatory behavior are correlated with changes in substance P-like immunoreactivity in the brain of the electric fish Apteronotus leptorhynchus / / J. Neurosci. - 1995. - 15, № 3 (Pt.1). - P. 1879-1890.

  157. Eipper BA, Green CB, Mains RE Expression of prohormone processing enzymes in neuroendocrine and non neuroendocrine cells / / Monogr. Natl. Cancer. Inst. - 1992. - 13, P. 163-168.

  158. Ekstrom J., Ekman R., Hakanson R., Luts A., Sundler F. Developmental studies on vasoactive intestinal peptide, substance P and caleifonin generelated peptide in salivary glands of postnatal rats / / Acta Physiol. Scand. - 1994. - 151, № 1. - P. 107-115.

  159. Emson PC, Gilbert RFT, Lorer I., Fakrenkrung J., Sundler F., Schaffalitzky de Muckadell OB Development of vasoactive intestinal polypeptide (VIP) containing neurons in the rat brain / / Brain Res. - 1979. - 177. - P. 437-444.

  160. Feng Y., Reznik SE, Fricker LD Distribution of proSAAS derived peptides in rat neuroendocrine tissues. / / Neurosci. - 2001. - 105, N 2. P. 469-478.

  161. Fiedorek FT Jr, Parkinson D. Carboxypeptidase H processing and secretion in rat clonal beta cell lines / / Endocrinology. - 1992. - 131, N 3. - P. 1054-1062

  162. Foster GA, Schultzbeng M. Immunohistochemical analysis of the ontogeny of neuropeptide Y immunoreactive neurons in foctal rat brain / / Int. J.Dev.Neurosci. - 1994. - 2. - P. 387-407.

  163. Fricker LD Carboxypeptidase E / / Ann. Rev. Physiol. - 1988. - 50. - P. 309-321.

  164. Fricker LD Neuropeptide biosynthesis: focus on carboxypeptidase processing enzyme / / Trends Neurosci. - 1985. Р . - 8, № 5. Р. 210-214.

  165. Fricker LD, Adelman JP, Douglass J., Thompson RC, von Strandmann RP, Hutton J AD. Isolation and sequence analysis of cDNA for rat carboxypeptidase E [EC 3.4.17.10], a neuropeptide processing enzyme / / Mol. Endocrinol. - 1989. - 3, N 4. - P. 666-673.

  166. Fricker LD, Das B., Angeletti RH Identification of the pH dependent membrane anchor of carboxypeptidase E (EC 3.4.17.10) / / J. Biol. Chem. - 1990. - 265, N 5. - P. 2476-2282.

  167. Fricker LD, Devi L. Posttranslational processing of carboxypeptidase E, a neuropeptide processing enzyme, in AtT 20 cells and bovine pituitary secretory granules / / J. Neurochem. - 1993. - 61, N 4. - P. 1404-1415.

  168. Fricker LD, Herbert E. Comparison of a carboxypeptidase E-like enzyme in human, bovine, mouse, Xenopus, shark and Aplysia neural tissue / / Brain Res. - 1988. - 453, N 1-2. - P. 281-286.

  169. Fricker LD, Plummer TH, Snyder SH Enkephalin convertase: potent, selective and irreversible inhibitors / / Biochem. and Biophys. Res. Commun. - 1983. - 11, N 3. - P. 994-1000.

  170. Fricker LD, Reaves BJ, Das B., Dannies PS Comparison of the regulation of carboxypeptidase E and prolactin in GH4C1 cells, a rat pituitary cell line. / / Neuroendocrinology. - 1990. - 51, N 6. - P. 658-663.

  171. Fricker LD, Rigual RJ, Diliberto EJ Jr., Viveros OH Reflex spanchnic nerve stimulation increases levels of carboxypeptidase-E mRNA and enzymatic activity in the rat adrenal medulla / / J. Neurochem. - 1990. - 55, N 2. - P. 461-467.

  172. Fricker LD, Snyder SH Enkephalin convertase: purification and charasterization of a specific enkephalin-synthesizing carboxypeptidase localized to adrenall chromaffin granules / / Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1982. - 79. - P. 3886-3890.

  173. Fricker LD, Snyder SH Purification and characterization of enkephalin convertase, an enkephaline-synthesizing carboxypeptidase / / J. Biol. Chem. - 1983. - 79. P. 33886-3890.

  174. Fricker LD, Supattapone S., Snyder SH Enkephalin convertase: a specific enkephalin synthesing carboxypeptidase in adrenal chromaffin granules, brain and pituitary gland / / Life Sci. - 1982. - 31. - P. 1841-1844.

  175. Friishansen L., Lacourse KA, Samuelson LC, Holst JJ Attenuated processing of proglucagon and glucagon-like peptide-1 in carboxypeptidase E deficient mice. / / J. Endocrinol. - 2001. - 169, N 3. P. 595-602.

  176. Friksen SP, Kulkarni AB Methanol in normal human breath / / Science - 1963. - 141. - P. 639-640.

  177. Gabriel KI, Yu W., Ellis L., Weinberg J. Postnatal handling does not attenuate hypothalamic-pituitary-adrenal hyperresponsiveness after prenatal ethanol exposure / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2000. - 24, N 10. - P. 1566-1574.

  178. Gabriel KI, Weinberg J. Effects of prenatal ethanol exposure and postnatal handling on conditioned taste-aversion / / Neurotoxicol. Teratol. - 2001. - 23, N 2. - P. 167-176.

  179. Gandarias JM, Irazusta J., Fernandez D., Silio M., Casis L. Membrane-bound pyroglutamyl-arylamidase activity during the first postnatal month in several rat brain areas / / Int. J. Dev. Biol. - 1994. - 38, № 1. - P. 127-129.

  180. Gandarias JM, Ramirez M., Zulaica J., Casis L. Aminopeptidase (arylamidase) activity in discrete areas of the rat brain: Sex differences / / Horm. Metab. Res. - 1989. - 5, № 21. - P. 285-286.

  181. Genazzani AR, Faechinetti F., Petraglia F., Pintor C., Bagnoli F., Puggioni R., Corda R. Correlations betneen plasma levels of opioid peptides and adrenal androgens in prepuberty and puberty / / J. Steroid. Biochem. - 1983. - 19, № 1. - P. 891-895.

  182. Glavas MM, Hofmann CE, Yu WK, Weinberg J. Effects of prenatal ethanol exposure on hypothalamic-pituitary-adrenal regulation after adrenalectomy and corticosterone replacement / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2001. - 25, N 6. - P. 890-897.

  183. Glombik MM, Kromer A., ​​Salm T., Huttner WB, Gerdes HH The disulfide-bonded loop of chromogranin-B mediates membrane-binding and directs sorting from the trans-Golgi network to secretory granules. / / EMBO J. - 1999. - 18. 4. P. 1059-1070.

  184. Goldstein DB, Chim YH Interaktion of ethanol with biological membranes. / / Fed. Proc. - 1981. - 40, N 7. - P. 2073-2076.

  185. Gorenstein C., Snyder S., Tmo distinct enkephalinases solupilizabion, partial purification and separation from angiotensin converting enzyme / / Life. Sci. - 1979. - 25. - P. 2065.

  186. Graham K., Wilsnack R., Dawson D., Vogeltanz N. Should alcohol consumption measures be adjusted for gender differences / / Addiction - 1998. - 93, N 8. - P. 1137-1147.

  187. Grigoriants O., Devi L., Fricker LD Dopamine antagonist haloperidol increases carboxypeptidase E mRNA in rat neurointermediate pituitary but not in various other rat tissues / / Mol. Brain Res. - 1993. - 19. - P. 161-164.

  188. Grimwood BG, Plummer TH Jr., Tarentino AL Carboxypeptidase H. A regulatory peptide-processing enzyme produced by human hepatoma Hep G2 cells / / J. Tiolog. Chem. - 1989. - 264, N 26. - P. 15662-15667.

  189. Guaza C., Borrell S. Modifications in adrenal hormones response to ethanol by prior ethanol dependence / / Pharmacol. Biochem. Behav. - 1985. - 22, N 3. - P. 357-360.

  190. Guerri C. Neuroanatomical and neurophysiological mechanisms involved in central nervous system dysfunctions induced by prenatal alcohol exposure / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1998. - 22, N 2. - P. 304-312.

  191. Guerri C., Renaupiqueras J. Alcohol, astroglia, and brain development / / Mol. Neurobiol. - 1997. - 15, N 1. - P. 65-81.

  192. Guest PC, Arden SD, Rutherford NG, Hutton JC The posttranslational processing and intracellular sorting of carboxypeptidase H in the islets of Langerhans / / Mol. Cell. Endocrinol. - 1995. - 113, N 1, P. 99-108.

  193. Guest PC, Ravazzola M., Davidson HW, Orci L., Hutton JC Molecular heterogeneity and cellular localization of carboxypeptidase H in the islets of Langerhans / / Endocrinology. - 1991. - 129, N 2. - P. 734-740.

  194. Hall CS Emotional behavior in the rat. The relationship between emotionality and ambulatory activity / / J. Copm. Physiol. Psychol. - 1936. - 22. - P. 345-352.

  195. Hanna WL, Turbov JM, Jackman HL, Tan Fulong, Froelich CJ Dominant chymotrypsin-like esterase activity in human lymphocyte granules is mediated by the serine carboxypeptidase called cathepsin A-like protective protein / / Immunol. - 1994. - 153, N 10, - P. 4663-4672.

  196. Hansen LF, Rehfeld JF Impaired feedback of gastric functions in carboxypeptidase E deficient mice / / Biochem. and Biophysic. Res. Comm. - 2000. - 267, N 2. P. 638-642.

  197. Harada S., Tachiyashiki K., Imaizumi K. Effect of sex-hormones on rat-liver cytosolic alcohol dehydrogenase activity / / J Nutr. Sci. Vitaminol. - 1998, - 44, N 5, P. 625-639.

  198. Hitсhison WD, Gianoulakis С., Kalant H. ß – endorphin levels in rat brain and pituitary. Effeсt of ethanol withdrawal on ß - endorphin levels in rat brain and pituitary. / / Pharm. Bioсhem. Behav. - 1988. - 30, N 4. - P. 933-939.

  199. Hook VY Arginine and lysine product inhibition of bovine adrenomedullary carboxypeptidase H, a prohormone processing enzyme / / Life Sci. - 1990. - 47, N 13. - P. 1135-1139.

  200. Hook VY Carboxypeptidase B-like activity for the processing of enkephalin precursors in the membrane component of bovine adrenomedullary chromaffin granules / / Neuropeptides. - 1984. - 4, N 2. - P. 117-126.

  201. Hook VY, Affolter HU, Palkovits M. Carboxypeptidase H in the hypothalamo neurohypophysial system: evidence for processing and activation of a prohormone processing enzyme during axonal transport / / J. Neurosci. - 1990. - 10, N 10. - P. 3219-3226.

  202. Hook VY, LaGamma EF Product inhibition of carboxypeptidase H / / J. Biol. Chem. - 1987. - 262, N 26. - P. 12583-12588.

  203. Hook VY, Lee EE Two peptidases that convert 125 J-Lys-Arg-(Met)-enkephalin and 125 J-enkephalin-Arg 6, respectively, to 125 J-(Met)-enkephalin in bovine adrenal medullary chromaffin granules / / FEBS Lett. - 1984. - 172, N 2. - P. 212-218.

  204. Hook VY, Loh YP Carboxypeptidase B-like convertasing enzyme activity in secretory granules of rat pituitary / / Cell Biol. - 1984. - 81. - P. 2776-2780.

  205. Hook VY, Mezey E., Fricker LD, Pruss RM, Siegel RE, Brownstein MJ Immunochemical characterization of carboxypeptidase B-like peptide-hormone-processing enzymes / / Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1982. - 82. - P. 4745-4749.

  206. Hook VYH, Affolter HU Identification of zymogen and mature forms of human carboxypeptidase H. A processing enzyme for the synthesis of peptide hormones / / FEBS Lett. - 1988. - 238, N 2. - P. 338-342.

  207. Hook VYH, Eiden LE Two peptidases that convert 125J-Lys-Arg-(Met)-enkephalin and 125J-enkephalin-Arg6, respectively, to 125J-(Met)-enkephalin in bovine adrenal medullary chromaffin granules / / FEBS Let. - 1984. - 172, N 2. - P. 212-218.

  208. Hughes PD, Kim YN, Randall PK, Leslie SW Effect of prenatal ethanol exposure on the developmental profile of the NMDA receptor subunits in rat forebrain and hippocampus / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1998. - 22, N 6. - P. 1255-1261.

  209. Inder WJ, Joyce PR, Ellis MJ, Evans MJ, Livesey JH, Donald RA The effects of alcoholism on the hypothalamic-pituitary-adrenal axis: interaction with endogenous opioid peptides / / Clin. Endocrinol. - 1995. - 43, N 3. - P. 283-290.

  210. Irminger JC, Verchere CB, Meyer K., Halban PA Proinsulin targeting to the regulated pathway is not impaired in carboxypeptidase E deficient Cpe (Fat) / Cpe (Fat) mice / / J. Biol. Chem. - 1997. - 272, N 44, P. 27532-27534.

  211. Isenberg KT, Bora PS, Zhou Xia, Wu Xiaolin, Moore BW, Lange LG Nonoxidative ethanol metabolism: expression of fatty aсid ethyl ester synthase-III in сultured neural сells. / / Bioсhem. Biophys. Res. Сommun. - 1992. - 185, N 3. - P. 938-943.

  212. Iversen I., Turner A. Neuropeptides and their peptidases: functional consideration / / Neurochem. Intern. - 1987. - 12. - P. 383-387.

  213. Jin KL, Graham SH, Nagayama T., Goldsmith PC, Greenberg DA, Zhou A., Simon RP Altered expression of the neuropeptide processing enzyme carboxypeptidase-E in the rat brain after global ischemia. / / J. Cerebr. Blood Flow Metabol. - 2001. N 12. - 21. N 12. P. 1422-1429.

  214. Juarez J., Detomasi E., B. Sex differences in alcohol drinking patterns during forced and voluntary consumption in rats / / Alcohol - 1999. - 19, N 1. - P. 15-22.

  215. Jung ME, Wallis CJ, Gatch MB, Lal H. Sex differences in the pentylenetetrazol-like stimulus-induced by ethanol withdrawal / / J Pharmacol. Exp. Ther. - 1999. - 291, N 2. - P. 576-582.

  216. Jung ME, Wallis CJ, Gatch MB, Lal H. Sex-differences in nicotine substitution to a pentylenetetrazol discriminative stimulus during ethanol withdrawal in rats / / Psychopharmacology - 2000. - 149, N 3. - P. 235-240.

  217. Jung ME, Wallis CJ, Gatch MB, Lal H. Sex-differences in the discriminative stimulus effects of M-chlorophenylpiperazine and ethanol withdrawal / / Psychopharmacology - 2000. - 149, N 2. - P. 170-175.

  218. Jung YK, Fricker LD Expression of the carboxypeptidase-E gene - characterization of the initiator-binding proteins / / Biochimie. - 1994. N 3-4. - 76. N 3-4. - P. 336-345.

  219. Jung YK, Kunczt CJ, Pearson RK, Dixon JE, Fricker LD Structural characterization of the rat carboxypeptidase-E gene. / / Mol. Endocrinol. - 1991. - 5, N 9. - P. 1257-1268.

  220. Jung YK, Kunczt CJ, Pearson RK, Fricker LD, Dixon JE Expression of the rat carboxypeptidase-E gene in neuroendocrine and nonneuroendocrine cell lines / / Mol. Endocrinol. - 1992. - 6, N 12. - P. 2027-2037.

  221. Juvvadi S., Fan XM, Nagle GT, Fricker LD Characterization of aplysia carboxypeptidase E / / FEBS Lett. - 1997. - 408, N 2, P. 195-200.

  222. Keith LD, Crabbe JC, Robertson LM, Young ER Ethanol dependence and the pituitary adrenal axis in mice. II. Temporal analysis of dependence and withdrawal / / Life Sci. - 1983. - 33, N 19. - P. 1889-1897.

  223. Kenney WC Formation of Schiff base adduct between acetaldehyde and rat liver microsomal phosphatidylethanolamine. / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1984. - 8, N 6. - P. 551-555.

  224. Kim CK, Yu W., Edin G., Ellis L., Osborn JA, Weinberg J. Chronic intermittent stress does not differentially alter brain corticosteroid receptor densities in rats prenatally exposed to ethanol / / Psychoneuroendocrinology - 1999. - 24, N 6. - P. 585-611.

  225. Kimura KA, Chiu J., Reynolds JN, Brien JF Effect of chronic prenatal ethanol exposure on nitric oxide synthase-I and synthase-III proteins in the hippocampus of the near term fetal guinea pig / / Neurotoxicol. Teratol. - 1999. - 21, N 3. - P. 251-259.

  226. Kimura KA, Reynolds JN, Brien JF Ethanol neurobehavioral teratogenesis and the role of the hippocampal glutamate-N-methyl-D-aspartate receptor - nitric oxide synthase system / / Neurotoxicol. Teratol. - 2000. - 22, N 5. - P. 607-616.

  227. King JC, Fabro S. Alcohol counsumption and cigarette smoking: effect on pregnancy / / Clin. Obstet. Gynecol. - 1983. - 26. - P. 437-448.

  228. Kinoshita, Jessop /

  229. Klein RS, Das B., Fricker LD Secretion of carboxypeptidase E from cultured astrocytes and from AtT-20 cell, a neuroendocrine cell line: implications for neuropeptide biosynthesis / / J. Neurochim. - 1992. N 6. - 58. N 6. - P. 2011-2018.

  230. Kluger MJ Fever: vole of pyrogens and cryagens / / Physiol. Rev. - 1991. - 71. - P. 93.

  231. Krahl SE, Berman RF, Hannigan JH Electrophysiology of hippocampal Ca1 neurons after prenatal ethanol exposure / / Alcohol - 1999. - 17, N 2. - P. 125-131.

  232. Kuhn PE, Miller MW Expression of p53 and Alz-50 immunoreactivity in rat cortex - effect of prenatal exposure to ethanol / / Exp. Neurol. - 1998. - 154, N 2. - P. 418-429.

  233. Kulkosky PJ, Allison CT, Allison TG, Marquez LM, Mattson BJ Interaction of CCK and 8-Oh-Dpat in the satiation of alcohol intake / / Alcohol - 1998. - 16, N 4. - P. 305-309.

  234. Kulkosky PJ, Allison CT, Mattson BJ Thyrotropin releasing hormone decreases alcohol intake and preference in rats. / / Alcohol. - 2000. - 20, N 1. - P. 87-91.

  235. Kulkosky PJ, Clayborne YJ, Sandoval SL Cholecystokinin and bombesin inhibit ethanol and food intake in rats selectively bred for ethanol sensitivity. / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1993. - 17, N 3. - P. 545-551.

  236. Lacourse KA, Friishansen L., Rehfeld JF, Samuelson LC Disturbed progastrin processing in carboxypeptidase E deficient fat mice / / FEBS Lett. - 1997. - 416, N 1. - P. 45-50.

  237. Laslop A., Tschernitz C. Effects of nerve growth factor on the biosynthesis of chromogranin A and B, secretogranin II and carboxypeptidase H in rat PC12 cells / / Neuroscience. -1992. - 49, N 2. - P. 443-450.

  238. Li TK Pharmacogenetics of responses to alcohol and genes that influence alcohol drinking. / / J. Stud. Alcohol. - 2000. - 61, N 1. - P. 5-12.

  239. Li Y., McGivern RF, Nagahara AH, Handa RJ Alterations in the estrogen sensitivity of hypothalamic proenkephalin mRNA expression with age and prenatal exposure to alcohol / / Molecular Brain Research - 1997. - 47, N 1-2. - P. 215-222.

  240. Lingfordhughes AR, Acton PD, Gacinovic S., Boddington SJA, Costa DC, Pilowsky LS, Ell PJ, Marshall EJ, Kerwin RW Levels of gamma-aminobutyric acid-benzodiazepine receptors in abstinent, alcohol-dependent women - preliminary findings from an I- 123 lomazenil single-photon-emission-tomography study / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2000. - 24, N 9. - P. 1449-145.

  241. Livy DJ, Maier SE, West JR Fetal alcohol exposure and temporal vulnerability - effects of binge like alcohol exposure on the ventrolateral nucleus of the thalamus / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2001. - 25, N 5. - P. 774-780.

  242. Loh YP, Brownstein MJ, Gainer H. Proteolysis in neuropeptide processing and ofker neurol functions / / Ann.Rev.Neurosci. - 1984. - 7. - P. 183-185.

  243. Loh YP, Snell CR, Cool DR Receptor mediated targeting of hormones to secretory granules, role of carboxypeptidase E / / Trends Endocrinol. Met. - 1997. - 8, N 4, P. 130-137.

  244. Lowry OH, Rosebrought NJ, Farr AG, Randall RJ Protein measurement with Folin phenol reagent / / J. Biol. Chem. - 1951. - 193, N 1. - P. 265-275.

  245. Luсas D., Penneс Y., Menez JF, Floch HH, Menn G. Le. Acetaldehyde adducts with serum proteins are not responsible for decreased drug binding in alcoholic patients. / / Drug Alс. Depend. - 1986. - 17, N 1. - P. 67-71.

  246. Lynch DR, Braas KM, Hutton JC, Snyder SH Carboxypeptidase E (CPE) immunocytochemical localization in the rat central nervous system and pituitary gland / / J. Neurosci. - 1990. - 10. - N 5. - P. 1592-1599.

  247. Lynch DR, Snyder SM Neuropeptides: multiple forms, metabolic pathnays and receptors / / Ann. Rev. Biochem. - 1986. - 55. - P. 773-799.

  248. Lynch DR, Venable JC, Snyder SH Enkephalin convertase in the heart: similar disposition to atrial natriuretic factor / / Endocrinology. - 1988. - 122, N 6. - P. 2683-2691.

  249. Lynch DR, Venable JC, Strittmatter SM, Snyder SH Enkephalin convertase: charasterization and localization using [3 H] guanidinoethyl-mercaptosuccinic acid / / Biochimie. - 1988. - 70, N 1. - P. 57-64.

  250. MacCumber MW, Snyder SH, Ross CA Carboxypeptidase E (enkephalin convertase): mRNA distribution in rat brain by in situ hybridization / / J. Neurosci. - 1990. - 10, N 8. - P. 2850-2860.

  251. Mackin RB, Noe BD Charasterization of an islet carboxypeptidase B involved in prohormone processing / / Endocrinology. - 1987. - 120, N 2. - P. 457-468.

  252. Maier SE, West JR Regional differences in cell loss associated with binge-like alcohol exposure during the first 2 trimesters equivalent in the rat / / Alcohol - 2001. - 23, N 1. - P. 49-57.

  253. a -amidating monooxygenase and a carboxypeptidase, by mouse pituitary corticotropic tumor cells // Endocrinology. Mains RE, Eipper BA Secretion and regulation of two biosyntetic enzyme activities, peptidyl-glycine a-amidating monooxygenase and a carboxypeptidase, by mouse pituitary corticotropic tumor cells / / Endocrinology. - 1984. - 115, N 5. - P. 1683-1690.

  254. Maletti M., Besson J., Bataille D., Laburthe M., Rosselin M. Ontogenesis and immunoreactive forms of vasoactive intestinal peptide in rat brain / / Acfa Endocrinol. - 1980. - 93, № 4. - P. 479-487.

  255. Manser E., Fernandez D., Loo L., Goh PY, Monfries C., Hall C., Lim L. Human carboxypeptidase E., Isolation and characterization of the cDNA, sequence conservation, expression and processing in vitro / / Biochem. J. 1990. - 267, N 2. - P. 517-525.

  256. Marks N., Berg N., Benuck M., Lo ES, Novachenko H., Seyfried C. Prodynorphin processing by rat CNS fractions and purified enzyme: formation of dynorphin A 1-8 by sulfhydryl activated carboxypeptidase and peptidyl dipeptidase / / Neurochem. Intern. - 1987. - 10, N 4. - P. 413-422.

  257. Marks N., Grynbaum A., Benuck M. On the sequential cleavage of myelin basic protein by cathepsin A and D / / J. Neurochem. - 1976. N 27. - P. 765-768.

  258. Marks N., Stern F., Lajtha A. Changes in proteolytic enzymes and proteins during maturation of the brain / / Brain Res. - 1975. - 86, № 2. - P. 307-322.

  259. Martinez-Millan L., De Gandaries JM, Irazusta J., Echevarria E., Casis L. Developmental changes of amino peptidase activity in the cortex of the cat hrain / / Int. J. Dev. Neurosci. - 1993. - 11, № 1. - P. 11-15.

  260. Mathieu-Kia AM, Resson MJ Repeatet administration of сoсaine, niсotine and ethanol: effeсts on preprodynorphin, preprotaсhykinin H and preproenkephalin mRNA expression in the dorsal and the ventral striatum of the rat / / Moleс. Brain Res. - 1998. - 54. - P. 141-151.

  261. Matsas R., Kenny AS, Turner AJ An immunohistochemical study of endopeptidase 24.11 (enkephalinase) in the pig nervous system / / Neuroscience. - 1986. - 18, № 4. - P. 991-996.

  262. McDonald JK, Schwabe C. Intracellular exopeptidase / / Proteinases in mammalian cells and tissues / Barrett AJ (ed.). Amsterdam: Elsevier / North Holland Biomedical Press - 1977. - P. 311-391.

  263. McGivern RF, Clancy AN, Mousa S., Couri D., Noble EP Prenatal alcohol exposure alters enkephalin levels, without affecting ethanol preference / / Life Sci. - 1984. - 34, N 6. - P. 585-589.

  264. McGivern RF, Ervin MG, Mcgeary J., Somes C., Handa RJ Prenatal ethanol exposure induces a sexually dimorphic effect on daily water-consumption in prepubertal and adult rats / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1998. - 22, N 4. - P. 868-875.

  265. McGivern RF, Handa RJ, Raum WJ Ethanol exposure during the last week of gestation in the rat - inhibition of the prenatal testosterone surge in males without long-term alterations in sex behavior / / Neurotoxicol. Teratol. - 1998. - 20, N 4. - P. 483-490.

  266. McMillian MK, Hudson PM, Lec DY, Thai L., Hung GH, Hong JS Developmental changes. in rat adrenal enkephalin premrsor: peptide ratio / / Brain. Res. Dev. Brain. Res. - 1993. - 71, № 1. - P. 75-80.

  267. Meunier J.-C. The opioid peptides and their receptors / / Biochimie. - 1986. - 68. - P. 1153-1158.

  268. Mihalick SM, Crandall JE, Langlois JC, Krienke JD, Dube WV Prenatal ethanol exposure, generalized learning impairment, and medial prefrontal cortical deficits in rats / / Neurotoxicol. Teratol. - 2001. - 23, N 5. - P. 453-462.

  269. Miller MW A longitudinal study of the effects of prenatal ethanol exposure on neuronal acquisition and death in the principal sensory nucleus of the trigeminal nerve - interaction with changes induced by transection of the infraorbital nerve / / J Neurocytol - 1999. - 28, N 12. - P. 999-1015.

  270. Mitra A., Song LX, Fricker LD The C-terminal region of carboxypeptidase E is involved in membrane-binding and intracellular routing in AtT-20 cells / / J. Biol. Chem. - 1994. - 269, N 31. - P. 19876-19881.

  271. Moore DB, Ruygrok AC, Walker DW, Heaton MB Effects of prenatal ethanol exposure on parvalbumin expressing GABAergic neurons in the adult rat medial septum / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1997. - 21, N 5. - P. 849-856.

  272. Mourik J., Raeven P., Steur K., Addink ADF Anatrobic metabolism of red skeletsl muscle of goldfish, Carassius auratus (L). Mitochondrial produced acetaldehyde as anaerobic electron acceptor / / FEBS Lett. - 1982. Р . - 137, N 1. Р. 111-114.

  273. Naggert JK, Fricker LD, Varlamov O., Nishina PM, Rouille Y., Steiner DF, Carroll RJ, Paigen BJ, Leiter EH Hyperproinsulinaemia in obese fat / fat mice associated with a carboxypeptidase E mutation which reduces enzyme activity / / Nature Genetics. - 1995. - 10, N 2. - P. 135-142.

  274. Nalamachu SR, Song LX, Fricker LD Regulation of carboxypeptidase E - effect of Ca 2 + on enzyme-activity and stability / / J. Biol. Chem. - 1994. - 269, N 15. - P. 11192-11195.

  275. Nemeskeri A., Acs Z., Toth BE Prolactin-synthesiring and prolactin-releasing activity of fetal andeurly postnatal rat piluitaries: in vivo and in vitro studies using RIA, reverse hemolytic plaque assay and immunocytochemistry. / / Neuroendocrinology. - 1995. - 61. - P. 687-694.

  276. Nolan CJ, Bestervelt LL, Mousigian CA, Maimansomsuk P., Cai Y., Piper WN Chronic ethanol consumption depresses hypothalamic-pituitary-adrenal function in aged rats / / Life Sci. - 1991. - 49, N 25. P. 1923-1928.

  277. Norenberg U., Richter D. Processing of the oxytocin precursor: isolation of an exopeptidase from neurosecretory granules of bovine pituitaries / / Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1988. - 156, N 2. - P. 898-904.

  278. Oakes MG, Davis TP The ontogeny of enzymes involved in post-translational processing and metabolism of neuropeptides. / / Dev. Brain Res. - 1994. - 80. N 1-2. . P. 127-136.

  279. Orskov C., Buhl T., Rabenhoj L., Kofod H., Holst JJ Carboxypeptidase-B-like processing of the C-terminus of glucagon-like peptide-2 in pig and human small intestine / / FEBS Lett. - 1989. - 247, N 2. P. 193-196.

  280. Osborn JA, Kim CK, Steiger J., Weinberg J. Prenatal ethanol exposure differentially alters behavior in males and females on the elevated plus-maze / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1998. - 22, N 3. - P. 685-696.

  281. Osborn JA, Yu C., Gabriel K., Weinberg J. Fetal ethanol effects on benzodiazepine sensitivity measured by behavior on the elevated plus-maze / / Pharmacol. Biochem. Behav. - 1998. - 60, N 3. - P. 625-633.

  282. Osborn JA, Yu C., Stelzl GE, Weinberg J. Effects of fetal ethanol exposure on pituitary-adrenalsSensitivity to secretagogues / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2000. - 24, N 7. - P. 1110-1119.

  283. Oyarce AM, Hand TA, Mains RE, Eipper BA Dopaminergic regulation of secretory granule associated proteins in rat intermediate pituitary / / J. Neurochem. - 1996. - 67, N 1. - P. 229-241.

  284. Ozer E., Sarioglu S., Gure A. Effects of prenatal ethanol exposure on neuronal migration, neuronogenesis and brain myelination in the mice brain / / Clin. Neuropatol. - 2000. - 19, N 1. - P. 21-25.

  285. Parkinson D. Carboxypeptidase H in bovine pituitary gland: soluble forms are not processed at the C-terminus / / Mol. Cell. Endocrinol. - 1992. - 86, N 3. - P. 221-233.

  286. Parkinson D. Two soluble forms of bovine carboxypeptidase H have different NH 2-terminal sequences / / J. Biol. Chem. - 1990. - 265, N 28. - P. 17101-17105.

  287. Perloff MD, Kream RM., Beinfeld MC Reduced levels of substance P in the brains of Cpe (Fat) / Cpe (Fat) Mice / / Peptides. - 1998. - 19, N 6, P. 1115-1117.

  288. Prendergast MA, Harris BR, Blanchard JA, Mayer S., Gibson DA, Littleton JM In-vitro effects of ethanol withdrawal and spermidine on viability of hippocampus from male and female rat / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2000. - 24, N 12. - P. 1855-1861.

  289. Pshezhetsky AV, Potier M. Direct affinity purification and supramolecular organization of human lysosomal cathepsin A / / Arch. Biochem. Biophys. - 1994. - 313, N 1. - P. 64-70.

  290. Rasmussen DD, Boldt BM, Bryant CA, Mitton DR, Larsen SA, Wilkinson CW Chronic daily ethanol and withdrawal: 1. Long-term changes in the hypothalamo-pituitary-adrenal axis / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2000. - 24, N 12. - P. 1836-1849.

  291. Revskoy S., Halasz I., Redei E. Corticotropin-releasing hormone and proopiomelanocortin gene expression Is altered selectively in the male rat fetal thymus by maternal alcohol consumption / / Endocrinology - 1997. - 138, N 1. - P. 389-396.

  292. Reznik SE, Salafia CM, Lage JM, Fricker LD Immunohistochemical localization of carboxypeptidase-E and carboxypeptidase-D in the human placenta and umbilical-cord / / J. Histochem.and Cytochem. - 1998. - 46, N 12. P. 1359-1367.

  293. Rikke BA, Simpson VJ, Montoliu L., Johnson TE No effect of albinism on sedative-hypnotic sensitivity to ethanol and anesthetics / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2001. - 25, N 2. - P. 171-176.

  294. Rintala J., Jaatinen P., Lu W., Sarviharju M., Eriksson CJP, Laippala P., Kiianmaa K., Hervonen A. Effects of lifelong ethanol consumption on erebellar layer volumes in AA and ANA rats / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1997. - 21, N 2. - P. 311-317.

  295. Rivier C. Female rats release more corticosterone than males in response to alcohol: influence of circulating sex steroids and possible consequences for blood alcohol levels. / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1993. - 17. . N. 4. . - P. 854-859.

  296. Rivier C., Bruhn T., Vale W. Effect of ethanol on the hypothalamic-pituitary-adrenal axis in the rat: role of corticotropin-releasing factor (CRF) / / J. Pharmacol. Exp. Ther. - 1984. - 229, N 1. - P. 127-131.

  297. Rivier C., Imaki T., Vale W. Prolonged exposure to alсohol: effeсt on СRF mRNA levels, and CRF - and stress-induсed ACTH seсretion in the rat / / Brain Res. - 1990. - 520, N 1-2. - P. 1-5.

  298. Rivier C., Rivest S., Vale W. Alcohol-induced inhibition of LH secretion in intact and gonadectomized male and female rats: possible mechanisms / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1992. - 16, N 5. - P. 935-941.

  299. Rockman CE, Markert LE, Delrizzo M. Effects of prenatal ethanol exposure on ethanol-induced locomotor activity in rat / / Alcohol. - 1989. - 6, N 5. - P. 353-356.

  300. Rodriguez C., Brayton KA, Brownstein M., Dixon JE Rat preprocarboxypeptidase H. Cloning, characterization, and sequence of the cDNA and regulation of the mRNA by corticotropin releasing factor / / J. Biol. Chem. - 1989. - 264, N 10. - P. 5988-5995.

  301. Rossier, J., Barres, E., Hutton, JC, Ricknell, RJ Radiometric assay for carboxypeptidase H (EC 3.4.17.10) and other carboxypeptidase B-like enzymes / / Anal. Biochem. - 1989. - 178, N 1. - P. 27-31.

  302. Rouille Y., Chauvet J., Acher R. Partial conversion of vasopressinyl-Gly-Lys-Arg into pharmacologically active vasopressin through secretory granule carboxypeptidase E and alpha-amidating processing enzymes / / Biochem. Int. - 1992. - 26, N 4. - P.739-746.

  303. Rovere C., Viale A., Nahon J., Kitabgi P. Impaired processing of brain proneurotensin and promelanin concentrating hormone in obese fat / fat mice / / Endocrinology. - 1996. - 137, N 7. - P. 2954-2958.

  304. Roy A., Mittal N., Zhang H., ​​Pandey SC Modulation of cellular expression of glucocorticoid receptor and glucocorticoid response element-DNA dinding in rat brain during alcohol drinking and withdrawal / / J. Pharmacol. Exp. Ther. - 2002. - 301, N 2, - P. ХЭ 364 774-784. ХЕ 364

  305. Salonen I., Huhtaniemi I. Effects of chronic ethanol diet on pituitary-testicular function of the rat / / Biol. Reprod. -1990. - 42. P. 55-62.

  306. Sarviharju M., Jaatinen P., Hyytia P., Hervonen A., Kiianmaa K. Effects of lifelong ethanol consumption on drinking behavior and motor impairment of alcohol-preferring AA and alcohol-avoiding ANA rats / / Alcohol - 2001. - 23, N 3. - P. 157-166.

  307. Scarceriaux V., Pelaprat D., Lhiaubet AM, Schimptf RM, Tramu G., Rostene W. Developmental pattern of neurofensin content in rat hypothalamic neurons culbured in serum free medium-comparison with in vivo data / / Dev. Brain Res. - 1994. - 81, № 1. - P. 128-130.

  308. Schlamp CL, Nickells RW Light and dark cause a shift in the spatial expression of a neuropeptide processing enzyme in the rat retina / / J. Neurosci. - 1996. - 16, N 7. - P. 2164-2171.

  309. Schneider ML, Moore CF, Kraemer GW Moderate alcohol during pregnancy - learning and behavior in adolescent Rhesus-Monkeys / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2001. - 25, N 9. - P. 1383-1392.

  310. Seizinger BR, Brinn C., Herr A. Evidence for a differential postnatal development of proenkephalin B (prodynorphin) - derived opieid peptides in the rat hypothalamus / / Endocrinology. - 1984. - 115, № 3. - P. 926-935.

  311. Shen FS, Loh YP Intracellular Misrouting and Abnormal Secretion of Adrenocorticotropin and Growth Hormone in Cpe (Fat) Mice Associated with a Carboxypeptidase E Mutation / / Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 1997. - 94, N 10. - P. 5314-5319.

  312. Silva WI, Benitez K., Ocasio J., Martinez L., Rosario N. Neuropeptide like immunoreactivities and carboxypeptide H activity associated with bovine brain clathrin coated vesicles / / Neuropeptides. -1995. - 28, N 6, P. 341-349.

  313. Sinha P., Halasz I., Choi JF, Mcgivern RF, Redei E. Maternal adrenalectomy eliminates a surge of plasma dehydroepiandrosterone in the mother and attenuates the prenatal testosterone surge in the male fetus / / Endocrinology - 1997. - 138, N 11. - P. 4792-4797.

  314. Skutohness CD, Holroyde CP, Nyers RN et al. Acetat in normal human blood / / J. Clin. Invest. - 1979. - 64. - P. 708-713.

  315. Sluyter F., Hof M., Ellenbroek BA, Degen SB, Cools AR Genetic, sex, and early environmental-effects on the voluntary alcohol - intake in Wistar rats / / Pharmacol. Biochem. Behav. - 2000. - 67, N 4. - P. 801-808.

  316. Smith DR, Pallen CJ, Murphy D., Lim L. Pituitary-specific transcriptional initiation sites of the rat carboxypeptidase-H gene and the influence of thyroid hormone status / / Mol. Endocrinol. - 1992. - 6, N 5. - P. 713-722.

  317. Smyth DG, Maruthainar K., Darby NJ, Fricker LD Catalysis of slow C terminal processing reactions by carboxypeptidase H / / J. Neurochem. - 1989. - 53, N 2. - P. 489-493.

  318. Song LX, Fricker LD Calcium and pH dependent aggregation of carboxypeptidase E / / J. Biol. Chem. - 1995. - 270, N 14. - P. 7963-7967.

  319. Song LX, Fricker LD The pro region is not required for the expression or intracellular routeing of carboxypeptidase E / / Biochemical Journal. - 1997. - 323, N 4. - P. 265-271.

  320. Spencer RL, McEwen BS Impaired adaptation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis to chronic ethanol stress in aged rats / / Neuroendocrinol. - 1997. - 65, N 5. - P. 353-359.

  321. с er RL, MсEwen BS Adaptation of the hypothalami с - pituitary-adrenal axis to с hroni с ethanol stress. Spen з er RL, MсEwen BS Adaptation of the hypothalami с - pituitary-adrenal axis to з hroni з ethanol stress. с rinology. / / Neuroendo з rinology. - 1990. - 52, N 5. - P. 481-489.

  322. Srivastava VK, Hiney JK, Dearth RK, Les Dees W. Chronic effects of prepubertal ethanol administration on steroidogenic acute regulatory protein in the rat ovary. / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2002. - 26, N 1. - P. 107-113.

  323. Stack G., Fricker LD, Snyder SH A sensitive radiometric assay for enkephalin convertase and for carboxypeptidase B-like enzymes / / Life Sci. - 1984. - 34. - P. 113-121.

  324. Stege TE Induсtion of aсetaldehyde lipid peroxidation in hepatiс сell. / / Reс. Commun. Chem. Phatal. Pharmaсol. - 1982. - 36, N 2. - P. 287-297.

  325. Stone TE, Li JP, Bernasconi P. Purification and Characterization of the Manduca Sexta Neuropeptide Processing Enzyme Carboxypeptidase E / / Arch. Insect Biochem. Phisiol. - 1994. - 27, N 3, P. 193-203.

  326. Strittmatter SM, Lynch DR, Skyder SH Differential ontogeny of rat brain peptidases: prenatal expression of enkephalin convertase and postnatal development of angiotensin converting enzyme / / Dev. Brain. Res. - 1986. - 29, № 2. - P. 207-215.

  327. Strittmatter SM, Lynch DR, Snyder SH (3 H) guanidinoethyl-mercaptosuccinic acid binding to tissue homogenates. Selective labeling of enkephalin convertase / / J. Biol. Chem. - 1984. - 259, N 19. - P. 11812-11817.

  328. Sullivan KA, Traurig HH, Papka RE Ontogeny of neurotransmitter system in the paracervical ganglion and uterine cervix of the rat / / Anat. Rec. - 1994. - 240, № 3. - P. 377-386.

  329. Summers ML, Gidley MS, Sanders SK Aсetaldehydeenkephalins: eluсidation of the struсture of the aсetaldehyde adduсts of methionine-enkephalin and leuсine-enkephalin. / / FEBS. - 1980. - 111, N 2. - P. 307-310.

  330. Supattapone S., Fricker LD, Snyder SH Purification and characterization of a membrane-bound enkephalin-forming carboxypeptidase, "enkephalin convertase" / / Neurochem. - 1984. - 42, N 4. - P. 1017-1023.

  331. Szot P., White SS, Veith RC, Rasmussen DD Reduced gene expression for dopamine biosynthesis and transport in midbrain neurons of adult male rats exposed prenatally to ethanol / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 1999. - 23, N 10. - P. 1643-1649.

  332. Tabakoff B., Hoffman PL, Litjequist S. Effeсts of ethanol on the aсtivity of brain enzymes. / / Enzyme. - 1987. - 37, N 1-2. - P. 70-86.

  333. Taylor AN, Branch BJ, Day JR, Lu JKH Alcohol effects progesterone, testosterone and prolactin secretionin pragnant rats / / 31th Congr. Physiol. Sci. - Helsinki, 1989. - P. 538-540.

  334. Tesсhke R., Hasumura V., Lieber Сh. S. Hepatiс ethanol metabolism: respeсtive roles of alсohol dehydrogenate, the miсrosomal ethanol-oxidizing system and сatalase. / / Arсh. Bioсhem. - 1976. - 175. - P. 635-643.

    1. Tschernitz C, Laslop A, Eiter C, Kroesen S, Winkler H. Biosynthesis of large dense core vesicles in PC12 cells: effects of depolarization and second messengers on the mRNA levels of their constituets / / Brain. Res. Mol. Brain Res. - 1995. - 31, N 1-2. - P. 131-140.

    2. Udupi V., Gomez P., Song LX, Varlamov O., Reed JT, Leiter EH, Fricker LD, Greeley GH Effect of carboxypeptidase E deficiency on progastrin processing and gastrin messenger ribonucleic acid expression in mice with the fat mutation / / Endocrinology. - 1997. - 138, N 5, P. 1959-1963.

    3. с ts: does sex make a defferen с e? Van Thiel DH, Tarter RE, Rosenblum E., Gavaler JS Ethanol, its metabolism and gonadal effe з ts: does sex make a defferen з e? / / Adv. с ohol. Al з ohol. Subst. Abuse. - 1988. - 7, N 3-4. - P. 131-169.

    4. Varlamov O., Fricker LD The C terminal region of carboxypeptidase E involved in membrane binding is distinct from the region involved with intracellular routing / / J. Biol. Chem. - 1996. - 271, N 11. - P. 6077-6083.

    5. Varlamov O., Fricker LD, Furukawa H., Steiner DF, Langley SH, Leiter EH Beta cell lines derived from trans genic Cpe (Fat) / Cpe (Fat) mice are defective in carboxypeptidase E and proinsulin processing / / Endocrinology. - 1997. - 138, N 11, P. 4883-4892.

    6. Varlamov O., Leiter EH, Fricker L. Induced and spontaneous mutations at Ser202 of carboxypeptidase E. Effect on enzyme expression, activity, and intracellular routing / / J. Biol. Chem. - 1996. - 271, N 24. - P. 13981-13986.

    7. Vernigora AN, Gengin MT, Shtchetinina NV, Nikishin NN Comparision of long-term effect of ethanol, tranquillizers and emotional stress on activity of some neuropeptide metabolism enzyme / / Neurochemistry and pharmacology of drug addiction and alcoholism: Proc. Int. Conf. (S.-Petersburg, 1996). - S.-Petersburg: Inst. of the Human Brain, 1996. - P. 70.

    8. Vida MIR, Kleid MC, Ase A., Finkielman S., Nahmond VE, Vindrola O. Synenkephalin processing in embryonic rat brain / / Dev. Brain. Res. - 1994. - 77, № 2. - P. 151-156.

    9. Vivian JA, Green HL, Young JE, Majerksy LS, Thomas BW, Shively CA, Tobin JR, Nader MA, Grant KA Induction and maintenance of ethanol self-administration in cynomolgus monkeys (Macaca-Fascicularis) - long-term characterization of sex and individual-differences / / Alcohol. Clin. Exp. Res. - 2001. - 25, N 8. - P. 1087-1097.

    10. Wallace EF, Evans CJ, Jurik, SM, Mettord IN, Barchas JD Carboxypeptidase B activity from adrenal medulla - is it involved in the processing of proenkephalin. / / Life Sci. - 1982. - 31, N 16-17. - P. 1793-1796.

    11. Wand GS, Dobs AS Alterations in the hypothalamic-pituitary-adrenal axis in actively drinking alcoholics / / J. Clin. Endocrinol. Metabol. -1991. - 72. - P. 1290-1295.

    12. Wardlaw SL Regulation of b-endorphin, corticotropin - like intermediate lobe hypothalamus by testosterone / / Endocrinology. - 1986. - 119, № 1. - P. 19-24.

    13. Weisman BA, Azov R., Sarne Y. Ontogenesis of enkephalin and humoral andorphin in the rat brain / / Neurochem. Int. - 1983. - 5, № 1. - P. 113-116.

    14. Wilkinson с. M., сrabbe J. ß –endorphin in the mouse. с., Keith LD, Kendall JW, Dorsa DM Influenсe of ethanol dependenсe on regional brain Сontent of ß-endorphin in the mouse. / / Brain Res. - 1986. - 378, N 1. - P. 107-114.

    15. Woodkams PL, Allen YS, McGovern J., Allen JM, Bloom SR, Balars R., Polrak JM Immunohistochemical analysis of early ontogeny of the neuropeptide Y system in rat brain / / Neurosci. - 1985. - 15. - P. 173-202.

    16. Yajima R., Chikuma T., Kato T. A rapid anterograde axonal transport of carboxypeptidase H in rat sciatic nerves / / J. Neurochem. - 1994. - 63, N 3, P. 997-1002.

    17. Zagon IS, Isayama T., Melaughlin PJ Preproenkepkalin messenger RNA expression in the developing and adult rat brain / / Mol. Brain Res. - 1994. - 21, № 1-2. - P. 85-98.

    18. Zamir N., Weber E., Palkovits M., Brownstein M., Differential processing of prodynorphin and proenkephalin in specific regions of the rat brain / / Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1984. - 81. - P. 6886-6889.

    19. Zheng M., Streck RD, Scott REM, Seidah NG, Pintar JE The developmental expression in rat of proteases furin, Pc 1, Pc 2, and carboxypeptidase E-implications for carly maturation of proteolytic processing capacity / / J. Nourosci. - 1994. - 14, № 8. - P. 4656-4673.

Додати в блог або на сайт

Цей текст може містити помилки.

Біологія | Дисертація
472.9кб. | скачати


Схожі роботи:
Вплив алкогольної інтоксикації на активність основних карбоксипептидази в тканинах самок щурів на різних
Вивчення токсичного впливу кадмію на активність амінотрансфераз у потомства білих щурів
Вивчення токсичного впливу кадмію на активність амінотрансфераз у потомства білих щурів 2
Активність і продуктивність основних словотвірних моделей
Активність і продуктивність основних словотвірних моделей 2
Вплив алкогольної інтоксикації на активність основних карбоксіпе
Активність основних карбоксипептидази при дії нейролептиків
Активність і продуктивність основних словотвірних моделей в історії англійської мови
Поняття про збудливих тканинах
© Усі права захищені
написати до нас