2. Дослідження мікробного обсіменіння об'єктів зовнішнього середовища.

Бактеріологічне дослідження мікробного обсіменіння предметів зовнішнього середовища передбачає виявлення стафілокока синьогнійної палички, бактерій групи кишкових паличок і аероманад (строго за показаннями). Забір проб з поверхонь різних об'єктів здійснюють методом змивів.

Взяття змивів виробляють стерильним ватним тампоном на паличках, вмонтованих в пробірки, або марлевими серветками, розміром 5х5 см, простерилізовані у паперових пакетах або в чашках Петрі. Для зволоження тампонів в пробірки з тампонами наливають по 2,0 мл стерильного фізіологічного розчину. При використанні серветок стерильний фізіологічний розчин розливають у стерильні пробірки по 2,0 мл. Серветку захоплюють стерильним пінцетом, зволожують фізіологічним розчином з пробірки, після протирання досліджуваного об'єкта поміщають в ту ж пробірку.

При контролі дрібних предметів змиви забирають з поверхні всього предмета. При контролі предметів з великою поверхнею змиви проводять у кількох місцях досліджуваного предмета площею приблизно в 100-200 кв. см.

Для виділення стафілококів роблять посів безпосередньо на чашку Петрі з желточно-сольовим агаром (див. схему дослідження на стафілокок). Крім того, в якості середовища накопичення використовують бульйон з 6,5% хлористого натрію, бульйон з 1% глюкози, розлиті в пробірки по 0,5 мл, в які засівають по 0,2-0,3 мл змивний рідини. Засіяні пробірки інкубують при 37 ° С протягом 20-24 годин, після чого роблять висів на ЖСА (див. схему дослідження на стафілокок).

Для виявлення бактерій групи кишкових паличок проводять посів на середу збагачення, для чого тампон (марлеву серветку) занурюють у 10-20% жовчний бульйон або середу Кесслера. Через добу інкубації при 37 ° С роблять пересів на середовище Ендо. Підозрілі колонії на середовищі Ендо мікроскопують і пересівати на 2-у бродильну пробу - середу Гисса з глюкозою. Середу витримують 24 години при 43 ° С.

Примітка: При використанні свинячий жовчі для приготування жовчного бульйону, концентрація жовчі повинна бути в 20 разів менше.

Для виявлення синьогнійної палички спеціальні посіви можна не проводити. Зазвичай колонії синьогнійної палички вдається виявити на кров'яному агарі або на середовищі Ендо. Колонії, підозрілі на синьогнійну паличку, пересівають на скошений агар, який містить 2-5% гліцерину або маніту. Колонії синьогнійної палички дають на поверхні скошеного агару рясний зростання з зеленуватим відтінком, маслянистої консистенції з характерним медовим запахом. Виділену культуру забарвлюють по Граму, мікроскопують, визначають гемолітичні властивості шляхом висіву на чашку з кров'яним агаром.

3.3 Орієнтовний перелік об'єктів, що підлягають бактеріологічному контролю:

А. наркозна кімната

1. Інкубаційна трубка

2. Маска наркозного апарату

3. Трійник наркозного апарату

4. Гофрована трубка

5. Ларингоскоп

6. Роторозширювач

7. Дихальний мішок

8. Руки лікарів анестезіологів-реаніматологів, сестер-анестезістов

Б. Передопераційна

1. Тази для миття рук хірургів

2. Чисті щітки для миття рук

3. Фартухи (клейончасті або поліетиленові)

В. Операційний

1. Робочий стіл анестезіологів

2. Операційний стіл

3. Шланг вакуумнасоса

4. Шланг кисневої підводки

5. Змиви з рук всіх що беруть участь в операції

6. Шкіра операційного поля

Г. Післяопераційні палати, відділення та палати реанімації та інтенсивної терапії

1. Ліжко, підготовлена ​​для хворого

2. Рушник для рук персоналу та змиви з рук

3. Щітка на раковині

4. Шланг кисневої підводки

5. Запасна наркозна апаратура (набір реанімаційної укладання)

6. Шланг вакуумотсоса

7. Внутрішня поверхня холодильника (для зберігання ліків)

8. Градусники

Д. Перев'язочна

1. Кушетка для перев'язок

2. Рушник для рук персоналу

3. Щітка на раковині

4. Халат медичних сестер

5. Руки лікарів, медичних сестер

6. Робочий медичний стіл

7. Внутрішня поверхня холодильника для зберігання ліків

3.4 Контроль на стерильність хірургічного інструменту

Інструментарії для медичних маніпуляції по ризику разлічяют:

Критичні - проникають у стерильні тканини або судини: імплантати, скальпелі, голки, інші хірургічні інструменти і т.д. Стерилізація - спороцидно хімічні речовини, тривалий контакт. Засоби для стерилізації або дезінфекції

Полукрітіческіе - стикаються з слизовими оболонками (за винятком стоматологічних інструментів): м ібкіе ендоскопи, ларингоскопи, ендотрахеальні трубки, а також інші аналогічні інструменти. Дезінфекція високого рівня - спороцидно хімічні речовини, короткочасний контакт. Засоби для стерилізації або дезінфекції

Термометри, ванни для гідротерапії. Дезінфекція середнього рівня. Лікарняні дезінфікуючі засоби з зазначенням у маркуванні про наявність туберкулоцидной активності.

Некритичні (стикаються з непошкодженою шкірою): стетоскопи, настільні прилади, підкладні судна та ін Дезінфекція низького рівня. Лікарняні дезінфікуючі засоби без зазначення в маркуванні про наявність туберкулоцидной активності.

Хірургічний інструментарій за допомогою стерильного пінцета витягують з бікс або м'якої упаковки і цілком занурюють у пробірки з поживними середовищами. Як виняток, в окремих випадках, якщо всі простерилізовані інструменти в одній упаковці великих розмірів (голкотримачі, ранорасшірітелі і т.д.), виробляють змив з поверхні інструменту стерильною серветкою, змоченою в стерильному фізіологічному розчині або стерильної водопровідної води і занурюють серветку в пробірку з тиогликолевой середовищем. Аналогічні змиви з інших інструментів засівають у пробірки з середовищем Хоттингера і Сабуро.

Методика посіву на стерильність голок і шприців. Для контролю на стерильність відбирають шприци малої місткості (1,0 або 2,0 мл) в умовах бактеріологічного боксу, з дотриманням правил асептики занурюють у пробірки з поживними середовищами окремо циліндр, поршень, голки. При необхідності контролю шприців великої місткості (10, 20 мл і більше) дослідження стерильності виробляють методом змиву, при цьому стерильною серветкою, змоченою в стерильному фізіологічному розчині або водопровідній воді, протирають за допомогою пінцета внутрішні частини шприца і занурюють серветку в живильне середовище.

Дослідження на стерильність систем переливання крові багаторазового використання. Від гумового шланга, ближче до голки, відрізають ножицями з допомогою пінцета невеликі шматочки (1-2 см) і занурюють у пробірки з поживними середовищами, голку окремо занурюють у живильні середовища.

Посів на стерильність катетерів, гумових рукавичок та інших виробів з гуми та пластикатів. Контроль стерильності зондів, катетерів, гумових рукавичок та інших виробів з гуми виробляють шляхом повного занурення дрібних виробів на поживні середовища, від більших за допомогою стерильного пінцета стерильними ножицями відрізають невеликі шматочки (1-2 см) і занурюють у живильні середовища.

Посів на стерильність хірургічного шовного матеріалу. Перед посівом ємність з відібраними зразками шовного матеріалу в предбоксніке протирають стерильною марлевою серветкою, рясно змоченою 6% розчином перекису водню, і залишають на 30 хвилин. Потім вносять у бокс.

1. Кетгут. Підготовлений до роботи кетгут в операційному блоці зберігають в спиртовому розчині йоду. Кетгут перед посівом піддають спеціальній обробці для нейтралізації і відмивання нейтралізуючого розчину. Моток кетгуту, приготований для дослідження, перекладають стерильним карнцангом або пінцетом у стерильний 10% розчин гіпосульфіту натрію. Розчин гіпосульфіту натрію готують на дистильованій воді, розливають у пробірки (колби) по 20-30 мл, стерилізують текучою парою по 30 хвилин у продовженні 3 днів. Кетгут витримують в розчині гіпосульфіту протягом 24 годин при кімнатній температурі (можливо помутніння розчину за рахунок випадання сірки), потім перекладають в пробірки з 20-30 мл стерильної дистильованої води, де також витримують протягом 24 годин при кімнатній температурі. Безпосередньо перед посівом Оток кетгуту витягають стерильним пінцетом і перекладають в терільную чашку Петрі, за допомогою пінцета і ножиць його розрізають на дрібні шматочки довжиною 1-2 см і раздергівают для проростання мікроорганізмів кетгуту. Посів роблять у 2 пробірки з тиогликолевой середовищем, 2 пробірки з середовищем Сабуро і 2 пробірки з середовищем Хоттингера, поміщаючи в кожну пробірку по 4-5 шматочків досліджуваного матеріалу.

2. Шовк. Підготовлений до роботи шовк в операційних зберігають в спиртовому розчині, тому перед посівом шовк (лавсан) поміщають на 24 години в стерильну дистильовану воду при кімнатній температурі. Перед посівом моток шовку (лавсану) перекладають у стерильні чашки Петрі, розрізають на дрібні шматочки довжиною 1-2 см. Посів шовку виробляють так само як і кетгуту.

Дослідження на стерильність апаратів екстракорпорального кровообігу. Дослідження на стерильність апарату штучного кровообігу проводить бактеріолог і лаборант лікувально-профілактичного закладу в операційній після асептичної зборки апарата.

Контролю підлягають:

- Змив з апарату;

- Перфузат до перфузії;

- Кров після перфузії.

Стерильний фізіологічний розчин в кількості не менше 250 мл проганяють через апарат, підготовлений до операції, відбирають 100 мл розчину і засівають на поживні середовища. Аналогічно проводять посів перфузата до перфузії і крові після перфузії.

Посів на стерильність перев'язувального матеріалу. Бинти, ватяні кульки, марлеві серветки, турунди і т.п. відбирають з різних місць бікс стерильним пінцетом. Дрібні вироби цілком занурюють у пробірки з поживними середовищами. Від бинтів (внутрішніх частин) і великих марлевих серветок за допомогою стерильних ножиць відрізають шматочки і занурюють у пробірки з поживними середовищами. На кожний вид перев'язувального матеріалу використовують по 2 пробірки кожного середовища.

Посів на стерильність хірургічного білизни. Простерилізовані і фламбірованнимі ножицями (змоченими в спирті і проведеними через полум'я пальника) за допомогою пінцета від хірургічного білизни відрізають невеликі шматочки тканини (зав'язка, внутрішні шви тощо) і занурюють у пробірки (колби) з живильними середовищами, по можливості, не торкаючись пробірки (колби).

4. Правила забору матеріалу на дослідження

Відповідно до Наказу Міністерства охорони здоров'я № 535 від 22.04.1985 р. і № 8 від 19.01.1995 р. завдання щодо вдосконалення та уніфікації діагностичної бази покладаються насамперед на лабораторію клінічної мікробіології. Тому мікробіологічні аспекти діяльності лікарняного епідеміолога на практиці зводиться до організації та контролю правильного взяття, зберігання і транспортування матеріалу для мікробіологічного дослідження.

Біологічний матеріалу мікробіологічних методів дослідження слід брати в максимально стерильних умовах, ретельно дотримуючись правил асептики і по можливості уникаючи контамінації зразків мікроорганізмами з навколишнього середовища.

Зразки для посівів необхідно брати до початку лікування антибактеріальними препаратами або в інтервалах між прийомом антибіотиків (не менше 12 годин). Відібраний матеріал повинен бути маркований і як можна швидше доставлений в мікробіологічну лабораторію. При необхідності зразки поміщають в транспортну середовище. Деякі зразки вимагають зберігання при t 37 °, інші - при зниженій (холодильнику).

5. У мікробіологічних дослідженнях застосовуються такі поживні середовища:

1. Для визначення загального мікробного числа мікроорганізмів використовується найчастіше 1% пептонную воду або бульйон мясопептонний (МПБ).

2. Для виявлення стафілококів використовується:

• молочно-сольовий агар: до 1 л мясопептонного бульйону додають 65 г хлориду натрію і 20 г сухого агар-агар. Розливають по колбам і стерилізують при 120 ° С 20 хв. Перед посівом до розплавленого і охолодженого до 45 ° С агару додають 10% стерильного молока, рівномірно змішують і розливають у чашки Петрі.

• желточно-сольовий агар Чістоковіча. 100 мл желточной емульсії (один жовток, розмішаний в 200 мл ізотонічного розчину хлориду натрію) вливають в 300 мл розплавленого і охолодженого до 50 ° С мясопептонного і розливають в стерильні чашки Петрі.

• молочно-желточно-сольовий агар. В 1 л дистильованої води розчиняють при нагріванні сухий поживний агар в кількості, зазначеній на етикетці банки, і 90 г хлориду натрію; розливають у колби, стерилізують при 120 ° С 20 хв. Перед вживанням в розплавлений і остуджений до 50 ° С агар додають 60мл стерильного молока, один жовток (ретельно розбитий скляними бусами з 50 мл ізотонічного розчину хлориду натрію), поліміксин М 300 000 ОД. Середу перемішують і розливають у чашки: по 20-25 мл для використання при підрощуванні стафілококів на мебрананних фільтрах і по 12-15 мл (тонким шаром) для прямого посіву.

3. Для виявлення бактерій групи кишкових паличок:

• використовується глюкозопептонную воду (ДПС), середа Ейкман. Концентрована середовище: в 1 л води розчиняють 100 г пептона, 50 г хлориду натрію, 50 г глюкоза, нагрівають суміш до кипіння, фільтрують, встановлюють рН 7,4-7,6, розливають по 10 мл у колби (ємністю по 100-250 мл) з поплавцями і по 1 мл в пробірки з поплавками. У середу можна додати індикатор Аедреде (кислий фуксин, знебарвлені лугом) або бромтимоловий синій. Розведену середу глюкозопептонной води готують так само, як концентровану, але кількість інгредіенов в 10 разів менше на 1 л води. Лактозо-пептонную середу готують так само як ДПС, із заміною глюкози на лактозу. Середовища стерилізують при 112 ° С 12 хв.

• середовище Ендо. Середовище готують з сухого порошку по прописи, зазначеної на етикетці банки. Склад порошку: сухий м'ясо-пептонний агар, лактоза, основний фуксин, сульфіт натрію. Середовище готують в день її використання. Гарячу середу розрізняють у стерильні чашки Петрі і залишають до застигання на поверхні столу. Зберігати чашки з середовищем можна не більше 3 днів у темному місці або в холодильнику.

• середовище Ендо з молоком (за Г. П. Калині). Середовище готують з сухого порошку, але води береться менше: до 90 мл середовища додають 10 мл стерильного молока, 0,2 мл 10% спиртового розчину основного фуксину, 0,2 мл 5% спиртового розчину розоловой кислоти, ретельно перемішати зони просвітління при випаданні в осад параказена.

• желточно-лактозною бульйон з діамантовим зеленим. До 700 мл дистильованої води додають 10 г пептона, 10 г лактози, 200 мл жовчі, 13,3 мл 1% водного розчину брильянтового зеленого і доливають по 5 мл в пробірки з поплавками, стерилізують при 112 ° С 12 хв.

• середу ФКП-1. Середовище готують так само, як желточнолактозний бульйон, але тільки лактози беруть 1 г і добовляют 1 г триптофану.

• середу Хейфеца. В 1 л води розчиняють при нагріванні 10 г пептона, 5 г хлориду натрію, 5 г маніту. Встановлюють рН 7,4-7,6, фільтрують і додають 10 мл 5% спиртового розчину розоловой кислоти, 23 мл 0,1% розчину влного метиленового синього. Стерилізують при 100 ° С (текучою парою) 20 хв. Зазлівают у стерильні пробірки і скошує із стовпчиком. Колір середовища краснофіолетовий.

• середу Кесслера. До 1 л води додають 10 г пептона, 50 мл жовчі, кип'ятять 20-30 хв, додають 2,5 г лактози, доводять об'єм до 1 л, встановлюють рН 7,8-8,2 і додають 4 мл 1% водного розчину генціального фіолетового. Серед розливають у пробірки з поплавками і стерилізують при 0,5 атм. 15 хв. Середа фіолетового кольору. Середа застосовується при дослідженні грунту.

• лактозною бульйон з борною кислотою

4. Для виявлення ентерококів використовується:

• лужно-поліміксіновая середовище. Готують три розчину по следущим реціптам

Інгредієнти	Звичайна концентрація	Подвоєна концетрація
Розчин 1 мясопептонний бульйон	40 мл	70 мл
хлорид натрію	0,5 г	1 г
глюкоза	1 г	1 г
дріжджовий екстракт рідкий (або сухий)	2 мл (0,2 г)	4 мл (0,4 г)
Розчин 2 вода дистилят-рованная	25 мл	12,5
карбонат натрію	0,53 г	1,1 г
Розчин 3 бікарбонат натрію	0,25 г	0,5
вода дистилят-рованная	25 мл	12,5 мл
поліміксин	20000 ОД / мл	40000 ОД / мл
1,6% спиртовий розчин бромтімоло-вого синього	0,5 мл	1 мл

Окремо стерилізують розчини 1, 2 і 3 при 112 ° С 12 хв. Розчини змішується, встановлюють рН 10,0-10,2, додають поліміксин, бромтимоловий синій, розливають по 10, 50 і 100 мл у флаконаи (подвоєною концентрації).

• молочно-інгібіторна середу Калини. До 85 мл стерильного поживного агару додають 15 мл стерильного молока, 1,25 мл 0,01% водного розчину кристалічного фіолетового. Перемішують і розливають по стерильним чашках Петрі.

• жовчна середовище, середовище Турчинського. До 600 мл дистильованої води додають 400 мл жовчі, 35-40 г сухого поживного агару, по 5 г фосфату калію однозамещенного сі двузамещенного, 5 г натрій-амонію фосфату. Розплавляють при нагріванні, розливають по флакон і стерилізують при 120 ° С 20 хв. Перед вживанням в розплавлений остуджений агар додають на кожні 100 мл середовища 0,5 г глюкози, 1 мл 1% водного розчину TTX, 0,6 мл 1% водного розчину синього, 20000 ОД поліміксину М, 1-2 мл 0,1% спиртового розчину фурациліну. Розливають по 20 мл в чашки Петрі (товстим шаром).

• застосування похідних п середу сланець-Бкртлі. В 1 л дистильованої води розчиняють (при нагріванні) 30-40 г скхого поживного агару, 4 г фосфату калію однозамещенного, встановлюють рН 7,0; стерилізують при 120 ° С 20 хв. Перед вживанням в розплавлений і злегка остуджений агар на кожні 100 мл середовища додають: 2 мл дріжджового екстракту, 1 г глюкози, 0,04 г азиду натрію, 1 мл 1% водного розчину TTX. Змішують і швидко розливають у чашки Петрі по 2 мл.

5. Для виявлення патогенних ентеробактерій Використовується:

• селенітовий бульйон. Бульйон готують з сухого середовища Луйфсона по прописи на етикетці. При необхідності її можна приготувати в такий спосіб. Основний раствол: в 1 л води розчиняють 7 г фосфату натрію двуузамещенного безводного, 3 г фосфату натрію однозамещенного, 5 г пептона та 4 г лактози. Встановлюють рН не вище 7,0. Стерилізують при 112 ° С 30 хв. Перед початком роботи 2 мл 10% розчину стерильного кислого селеністокіслого натрію. Готове середовище розливають в стерильні пробірки по 5-7 мл.

• тетратіонатний бульйон Мюллера. До 90 мл стерильного мясопептонного бульйону додають 4,5 г стерильного крейди, 2 мл розчину Люголя, 10 мл гіпосульфата натрію. (При приготуванні розчину Люголя до 20 мл дистильованої води додати йодиду калію 20 г, йоду 25 г, а за тим долити до 100 мл води). Середовище налаштовано для накопичення в матеріалі сальмонел.

• тетратіонатная середа з діамантовим зеленим (середа Кауфмана). До 500 мл тетратіонатной середовища додають 25мл стерільрой жклчі та 5 мл 0,1% розчину діамантів зеленого. Середа служить для накопичення сальмонел.

• Трьохцукровий агар з сечовиною за Олькеніцкому. Середовище є диференційно-діагностичної. До 100 мл дистильованої води додають 2,5 г сухого поживного агару, 1 г лактози, 1 г сахарози, 0,1 г глюкози, 1 г сечовини, 0,02 солі Мола, 0,03 г тіосульфату натрію, 0,4 мл 0 , 4% водного розчину фенолового червоного. Все ретельно перемішують, встановлюють рН 7,2-7,4, розливають по пробірках, стерилізують текучою парою по 20 хв 3 дні поспіль. Середу скошують, залишаючи стовпчик заввишки 5 см. середу після стерилізації блідо-рожевого кольору.

• Середа Рессела. До 100 мл 1,5% мясопептонного агару додають 1% лактози, 0,1% глюкози і 1 мл індикатора Андреде (кислий фуксин, знебарвлені їдким натром) або суміш водного блакитного і розоловой кислоти. Встановлюють рН 7,2. Середовище розливають в пробірки, стерилізують при 112 ° С 20 хв і скошують, залишаючи стовпчик агару заввишки 2-3 см.

6. Для виявлення іерсіній використовується

• буферна середу збагачення. Попередньо готують розчини солей: 3 мл 1 / 15 М гідрофосфату натрію в 100 мл дистильованої води і 7 мл 1 / 15 М дигідрофосфату натрію, також в 100 мл. Потім додають 8,5 г хлориду натрію, доводять загальний об'єм води до 1 л, фільтрують, встановлюють рН 7,2, розливають у пробірки по 5-6 мл і стерилізують текучою парою 30 хв.

7. Середовища для контролю стерильності:

• цукровий бульйон Хоттингера. До м'ясного перевар Хоттингера (140-160 мг% аммінного азоту) додають 0,5% хлориду натрію, подщелачивают до рН 8-8,2 (за допомогою 10% розчину їдкого натру), кип'ятять 10 хв і фільтрують через ватяний фільтр. Потім у середу вносять 1% глюкози, встановлюють рН 7,3-7,5, (за допомогою 5% хлористоводневої кислоти), фільтрують через паперовий фільтр і розливають в стерильні колби або пробірки. Стерилізація при 120 ° С 30 хв.

• бульйон Сабуро. В 1 л дистильованої води додають 10 г пептона, кип'ятять 10 хв і фільтрують через паперовий фільт. Потім додають 4% глюкози (або мальтози), встановлюють рН 5,7 розливають в стерильні колби і пробірки. стерилізація при 112 ° С 30 хв.

• тіоглікольовая середовище. До 1 л дистильованої води додають 15 г гідролізату казеїну, 5 г дріжджового екстракту, 2,5 г хлориду натрію, 0,75 г цистину, 0,75 г агар-агару. Цистину попередньо розчиняють у невеликій кількості води (за допомогою їдкого натру). Встановлюють рН суміші всіх компонентів до 8-8,2, кип'ятять 5-10 хв до повного розплавлення агару. Потім додають 5 г глюкози і 0,3 мл тиогликолевой кислоти. Середу фільтрують, встановлюють рН 7,2-7,3 вносять 1 мл розчину резазуріна натрію 1:1000, перемішують і розливають у стерильні пробірки. стерилізація при 120 ° С 20 хв.

Список літератури:

1. Актуальні питання епідеміології та інфекційних хвороб. / Н. А. Сьоміна. - М.: Медицина, 1999

2. Внутрішньолікарняна інфекція. / Шерертц, Хемптон, Рістуціна. - Під ред. Р. П. Венцела. - М.: Медицина 1990.

3. Внутрішньолікарняна інфекція. / Співавторами. - Навчально-методична допомога, Іркутськ, 1999. - 32 с.

4. Дезінфекційне справу. / Гандельсман Берта Ізраіловна. - Під ред. І. І. Карон. - М.: Медицина, 1971

5. Медична мікробіологія / Под ред. акад. РАМН В.І. Покровського. - М.: ГЕОТАР-МЕД, 2001. - Стр.543-547

6. Медична мікробіологія. / Гол. ред. В.І. Покровсктй, О. К. Поздєєв - М.: ГЕОТАР МЕДИЦИНА, 1998. - Стор 631-656

7. "Медична енциклопедія" РАМН 2001 Russ Portal Company Ltd.

8. Санітарна мікробіологія та вірусологія. / З. М. Качемасова, С. О. Єфремова, А. М. Рибакова - М.: Медицина, 1987. - 352 с.

9. "Довідник госпітального епідеміолога". М.: Хрізгостом, 1999

10. Епідеміологія внутрішньолікарняної інфекцій. / Р. Х. Яфаев, Л. П. Зуєва. - Ленінград: Медицина, 1989

11. Епідеміологічні особливості внутрішньолікарняних інфекції в районах Сибіру і Крайньої півночі. / Ратушняк С. С. - автореферат, Іркутськ, 1999