Тонкошарова хроматографія в хімічному аналізі природних вод

[ виправити ] текст може містити помилки, будь ласка перевіряйте перш ніж використовувати.

скачати

«Тонкошарова хроматографія в хімічному аналізі природних вод»

Зміст
Введення
Глава 1. Моніторинг природних вод
Глава 2. Планарная (тонкошарова хроматографія) та її застосування
Глава 3. Приклади використання тонкошарової хроматографії в аналізі природних вод
Глава 4. Сучасне апаратурне оформлення
Література

Введення
Різноманітність оточуючих нас об'єктів в основному визначається органічними сполуками, що мають різну природу та молекулярну масу. Найбільш хвилюючі проблеми екології, якості харчових продуктів і природних вод, діагностики також переважно пов'язані з необхідністю отримувати інформацію про складні за складом сумішах органічних речовин. У той же час є простий і доступний по експерименту виконання метод - планарна хроматографія. Вода є одним з найцінніших природних ресурсів нашої планети, без неї неможливе існування людства. Антропогенне забруднення природних водойм почалося багато століть тому, постійно зростала з розвитком цивілізації і в даний час досягла планетарних масштабів. Серед різних фізико-хімічних методів велике значення набув метод планарної (тонкошарової) хроматографії.

РОЗДІЛ 1. МОНІТОРИНГ ПРИРОДНИХ ВОД
Зростаюча стурбованість щодо якості природних, питних вод, вод господарського призначення, безпеки стічних вод призвела різні міжнародні організації (Європейське співтовариство, Агентство з охорони навколишнього середовища США) і об'єднані регулюючі органи до необхідності складання переліку пріоритетних забруднювачів та вироблення відповідних правил для їх контролю.
Список пріоритетних забруднювачів, прийнятий Європейським співтовариством (ЄС) у 1982р., Налічує 129 речовин. Стільки ж речовин входить в аналогічний перелік, прийнятий Агентством з охорони навколишнього середовища США. Пізніше до списку ЄС були додані ще три речовини.
В обох "чорних списках" можна виділити такі основні групи речовин:
· Неорганічні сполуки;
· Леткі органічні сполуки;
· Органічні сполуки середньої летючості;
· Поліциклічні ароматичні вуглеводні;
· Пестициди, гербіциди і біфеніли;
· Феноли;
· Анілін і нітроароматіческіе з'єднання;
· Бензидин;
· Оловоорганические з'єднання;
· Інші сполуки.
У деяких випадках були встановлені максимально допустимі концентрації. Наприклад, вміст пестицидів і поліядерних ароматичних вуглеводнів у питній воді не повинен перевищувати 0,1 мкг / л (або 0,1 РРВ). ЄС, на відміну від американського Агентства з охорони навколишнього середовища, не регламентувало аналітичні методи для визначення небезпечних забруднювачів. Дозволено використовувати будь-який метод, чутливість якого дозволяє визначати забруднювачі на рівні гранично допустимих концентрацій.
У проведенні моніторингу вод різної природи і різного призначення можна виділити наступні етапи:
· Відбір проби;
· Пробопідготовка;
· Виявлення та ідентифікація очікуваних компонентів;
· Вимірювання концентрації знайдених компонентів. [1]
Методи аналізу
Забруднювачі зазвичай присутні у воді на рівні слідів в діапазоні від 1 мкг / л (1ррв) до 1 нг / л (1рр t). Межі виявлення більшості методів близькі до значень гранично допустимих концентрацій, тому для визначення домішок потрібно найвища чутливість аналітичних приладів. Завдання вибору оптимальної аналітичної методики та приладу в моніторингу вирішується з урахуванням типу визначених речовин і необхідних меж виявлення.
Методи аналізу, що використовуються в сучасних лабораторіях, які займаються контролем навколишнього середовища, включають
· Різні варіанти оптичних методів аналізу (наприклад, спектрофотометрії у видимій УФ-та ІЧ-областях, атомно-абсорбційна і емісійна спектрометрія);
· Хроматографічні методи (газова, рідинна, надкритична);
· Електроаналітичні методи (вольтамперометрия, іонометри та інші).
Жоден з перерахованих методів не є універсальним, деякі з них придатні для визначення тільки органічних речовин, інші - неорганічних.
Оптичні методи, зокрема, класичні фотометричні та спектрофотометричні методи, засновані на освіті обумовленими компонентами забарвлених сполук з різноманітними реагентами, здавна і широко застосовуються для цілей моніторингу навколишнього середовища. В останні десятиліття все більшого значення набувають також атомно-абсорбційна і емісійна (флуоресцентна) спектрометрія, методи, що дозволяють визначити велику кількість хімічних елементів у неорганічних матрицях з вкрай низькими межами виявлення (при абсолютних утриманнях приблизно 10 -14 нг). Підвищенню чутливості визначень цими методами сприяють найпростіша попередня пробопідготовка або концентрування (екстракція, упарювання проб води тощо).
Хроматографічні методи часто виявляються незамінними для ідентифікації та кількісного визначення органічних речовин з подібною структурою. При цьому найбільш широко використовуються для рутинних аналізів забруднювачів навколишнього середовища є газова і високоефективна рідинна хроматографія. Газохроматографический аналіз органічних забруднювачів у питній і стічних водах спочатку грунтувався на використанні насадок колонок, пізніше поширення набули і кварцові капілярні колонки. Внутрішній діаметр капілярних колонок складає зазвичай 0,20-0,75 мм, довжина - 30-105 м. Оптимальні результати при аналізі забруднювачів у воді досягаються частіше за все при використанні капілярних колонок з різною товщиною плівки з метілфенілсіліконов з вмістом фенільну груп 5 і 50% . Вразливим місцем хроматографічних методик з використанням капілярних колонок часто стає система введення проби. Системи введення проби можна підрозділити на дві групи: універсальні та селективні. До універсальних відносяться системи введення з поділом і без поділу потоку, "холодний" введення в колонку і випар при програмуванні температури. При селективному введенні використовують продувку з проміжним уловлюванням в пастці, парофазного аналіз і т.д. При використанні універсальних систем введення в колонку надходить вся проба повністю, при селективній інжекції вводиться тільки певна фракція. Результати, одержані при селективному введенні, є істотно більш точними, оскільки потрапила в колонку фракція містить тільки леткі речовини, і техніка при цьому може бути повністю автоматизована. [1, 2]
Глава 2. Планарний (тонкошарове ХРОМАТОГРАФІЯ) І ЇЇ ЗАСТОСУВАННЯ.
Планарна хроматографія - один з варіантів хроматографічних методів, заснованих на виборчій розподілі компонентів аналізованої суміші між двома несмешивающимися фазами. Хроматографічні методи розрізняють по агрегатному стані рухомого (газ або рідина) і нерухомої (рідина або тверде тіло) фаз. Планарна хроматографія - спосіб аналізу, в якому процеси поділу суміші речовин здійснюються в плоскому шарі сорбенту (нерухомій фазі). Вона розділяється на паперову та тонкошарову хроматографії. У першій в якості сорбенту використовується спеціальний папір, у другій процеси поділу відбуваються в тонких шарах сорбенту, нанесеного на інертну тверду підкладку, або в плівках пористого полімерного матеріалу. Паперова і тонкошарова хроматографії подібні за технікою виконання аналізу. Тонкошарова хроматографія (ТШХ), проте, зайняла особливе місце серед інших хроматографічних методів завдяки простоті методики та доступності обладнання, широкої сфери застосування, високої економічності, досить високої селективності та чутливості. ТШХ є єдиним хроматографічним методом, який дозволяє проводити повний аналіз невідомої суміші, оскільки дослідник може перевірити, чи не залишилося на старті неелюірованних (нерозділених) компонентів. Метод ТШХ був запропонований у 1938 році вітчизняними вченими Н.А. Ізмайловим і М.С. Шрайбер. Однак широкі можливості методу були відкриті пізніше завдяки роботам Ю. Кірхнера [4] та Е. Шталя [5].
Загальний опис методу. На результати аналізу в методі ТШХ впливає техніка експерименту. У методі ТШХ нерухома фаза тонким шаром (100-300 мкм) наноситься на скляну, металеву або пластмасову платівки. В якості сорбенту найчастіше використовують силікагель, оксид алюмінію, целюлозу, поліамід, кизельгур. На лінію старту (1,5-2 см від краю пластинки) дуже малим плямою наносяться аналізована суміш і стандартні речовини. Для цього використовують капіляри, мікропіпетки або микрошприца. Потім пластинку в герметичній камері занурюють в розчинник, який виконує роль рухомої фази. Під дією капілярних сил розчинник рухається вздовж шару сорбенту до фінішу і з різною швидкістю переносить компоненти суміші, що призводить до їх поділу. Принцип поділу такий же, як в інших видах хроматографії, - неоднакове спорідненість поділюваних органічних речовин до рухомої рідкій фазі і стаціонарному сорбенту. Після досягнення розчинником (елюентом) лінії фінішу платівку висушують і проводять ідентифікацію компонентів. Розділені компоненти на платівці чи смужці паперу утворюють окремі зони (плями). Багато речовин не виявляються у видимій області, і для їх визначення невидимі зони проявляють обприскуванням пластини ТШХ спеціальними реагентами. Для виявлення плям можна використовувати УФ-випромінювання або термічну деструкцію речовин.
Важливою характеристикою ступеня поділу визначених сполук у планарної хроматографії є ​​величина Rf - відношення відстані від центру плями на платівці до лінії старту (х) до відстані (у), пройденого розчинником від лінії старту до фінішу. Величина Rf є характеристикою природи визначається з'єднання і залежить від сорбенту, розчинника, використовуваних для поділу. Для надійності ідентифікації речовин при визначенні Rf часто використовують "свідки". Для цього на платівці разом з розділяється сумішшю речовин хроматографіруют стандартні речовини ("свідки").
Правильний вибір сорбенту і розчинника (суміші розчинників) визначає ефективність (повноту) поділу. Вибір хроматографічної системи визначається природою аналізованої суміші. Наприклад, насичені вуглеводні сорбуються в дуже малому ступені і тому рухаються в ньому з більш високою швидкістю. Ненасичені вуглеводні сорбуються тим сильніше, чим більше в них міститься подвійних зв'язків. Для їх поділу слід використовувати найбільш активні сорбенти і малополярние розчинники. Для органічних речовин, що містять різні функціональні групи, адсорбційну спорідненість підвищується наступного ряду:-СН3,-О-аlk,> С = О,-NH2,-ОН,-СООН. Це призводить до того, що на шарах силікагелю або окису алюмінію при застосуванні в якості розчинника, наприклад бензолу, прості або складні ефіри розташовуються у верхній частині хроматограми, кетони та альдегіди - приблизно в середині, спирти - ближче до лінії старту, а кислоти залишаються на старті.
Розчинники різної природи, які використовуються в ТШХ, розрізняються за їх елюірующему (витіснювальний) дії, і їх можна розташувати в так звані елюотропние ряди. Спостерігається очевидна залежність між полярністю і елюірующім дією розчинника. Наприклад, елюотропний ряд для силікагелю в міру зростання елюірующей здібності виглядає наступним чином: н-гексан, пентан, циклогексан, чотирихлористий вуглець, толуол, хлороформ, дихлорметан, діетиловий ефір, оцтова кислота, етанол, метанол, піридин, вода.
Методи обробки хроматограм. Для отримання інформації про якісний і кількісний склад аналізованої суміші використовують різні методи детектування - як хімічні, так і фізичні. В останні роки значно зросло використання ферментативних методів, особливо в клінічній діагностиці, при визначенні пестицидів. Платівки ТШХ виконують роль дискет, з яких хімічна, фізична або ферментативна інформація може бути прочитана в будь-якому місці і в будь-який час. Все це на відміну від інших варіантів хроматографії відбувається окремо від процесу поділу, і цим усувається вплив рухомої фази. Звідси випливає, що селективність (вибірковість) методу ТШХ складається з селективності процесу поділу і специфічності детектування, взятих вместе.Ето перевагу притаманне тільки ТШХ.
Ідентифікацію речовин (якісний аналіз) можна проводити за рівністю значень Rf аналізованого речовини і стандарту ("свідка"). Якщо на хроматограмі утворюються забарвлені зони, то це значно спрощує її обробку. Невидимі хроматограми виявляють (знаходять зони розділених речовин) хімічними і фізичними способами.
При хімічному способі плівку або папір обприскують розчином або тримають в парах взаємодіє з компонентами аналізованої суміші реагенту. Ці реактиви поділяють на два типи: 1) реактиви загального призначення, які дозволяють виявити велику кількість з'єднань різних класів; 2) більш специфічні реактиви, що дозволяють виявити сполуки певного класу або з певною функціональною групою. До реагентів загального призначення відносяться концентрована сірчана кислота, розчин біхромату калію в концентрованої сірчаної кислоти, 1%-ний спиртовий розчин йоду, фосфорно-молібденова кислота, родамін. Одне з істотних переваг ТШХ у порівнянні з паперовою хроматографією - можливість використання агресивних проявителей.
Прикладом селективного реагенту, що дозволяє візуально по фарбуванню плям виявляти присутність аминосоединений різної природи в сумішах, є 4-хлор-5 ,7-дінітробензофуразан. При фізичному способі прояви зон платівку опромінюють УФ-променями. Сорбент зазвичай містить флуоресцентні індикатори (силікати цинку, сульфіди цинку або кадмію, вольфрамати лужноземельних металів), і пластина при опроміненні світиться блідо-блакитним світлом. Якщо на платівці є речовини, здатні поглинати УФ-випромінювання (ароматичні і містять зв'язані С = С-зв'язку речовини), то відбувається інгібування флуоресценції. Тому на яскравому тлі платівок з'являються темні зони, що відповідають визначеного з'єднанню.
Більш інформативна ідентифікація речовин досягається при використанні спектральних методів детектування (спектрофотометрія, флуориметрії, ІЧ-спектроскопія). Збіги спектральних характеристик аналізованих і еталонних речовин є підтвердженням їхньої ідентичності. Реакції інгібування ферментативних реакцій на хроматографічної платівці також використовуються для ідентифікації речовин.
Кількісний аналіз здійснюють безпосередньо на хроматограмі (на шарі сорбенту або папері). Часто аналізоване речовина вимивають із шару сорбенту і отриманий розчин аналізують будь-яким методом. В обох випадках використовують перераховані вище спектральні, а також радіометричні методи. Перевага віддається першому способу, оскільки при цьому значно підвищуються експресність і чутливість визначення. Слід зазначити, що чутливість визначення залежить не тільки від умов поділу. Наприклад, чим менше Rf аналізованого речовини, тим менш розмита зона. Для рутинних кількісних визначень в ТШХ широко використовують денситометри, які вимірюють інтенсивність поглинання електромагнітного випромінювання при скануванні хроматографічної пластинки. У результаті реєструється хроматограмма, яка має форму, аналогічну для газової і інших видів рідинної хроматографії [3].
У багатьох випадках для визначення вмісту речовин після поділу на платівках ТШХ використовують напівкількісний метод, застосовний і в шкільній лабораторії. Він полягає у візуальному порівнянні розміру плями (а також зіставленні їх інтенсивностей) з розмірами серії плям цієї ж речовини з відомими концентраціями (стандартні розчини). Незважаючи на простоту підходу, він забезпечує правильність визначення 5-10% при вмісті 1-5 мкг.
Сучасний стан та перспективи планарної хроматографії. Як це часто буває в історії розвитку будь-якого інструментального методу, після бурхливого розвитку в 60-70-х роках планарную хроматографію потіснив новий метод - високоефективна рідинна хроматографія (ВЕРХ). Однак в останні роки тонкошаровий варіант планарної хроматографії отримав новий імпульс для розвитку і спостерігається зростання його ролі в хроматографічних методах. Це пов'язано з меншою вартістю устаткування для ТШХ, розробкою двовимірного і радіального варіантів поділу, впровадженням пластин для високоефективної хроматографії, появою систем автоматизованого багаторазового хроматографічного прояви (АМХП). У двовимірної хроматографії аналізовану суміш елюіруют одним розчинником (або сумішшю), потім пластинку сушать і під кутом 90 ° елюіруют другий розчинником. У радіальній хроматографії розчинник з регульованою швидкістю подається до центру платівки, змушуючи зони переміщатися від центру до периферії. Це дозволяє істотно прискорити процес поділу.
Особливо перспективною є методика АМХП. Вона зручна для визначення пестицидів та продуктів їх метаболізму в грунтах, грязьових шламах і грунтових водах, а також в питній воді і водах мінеральних джерел. Хроматографічне розділення проводять у АМХП-системі, робота якої управляється і контролюється за допомогою комп'ютера. Проводять багаторазове хроматографічне прояв (прогін розчинника). За таких багатоступеневих проявах (до 25 кроків) із зростаючою довжиною смуги поділу і градієнтним ступінчастим зменшенням полярності розчинника можливе розділення до 40 речовин на розділовій смузі довжиною 8 см.
Важливе значення має розвиток високоефективної тонкошарової хроматографії (ВЕТСХ). За рахунок створення примусового руху рухомої фази з регульованою швидкістю, зменшення розміру часток сорбенту (до 5-7 мкм) і насичення простору над пластиною парами розчинника вдається істотно прискорити процес і підвищити чіткість поділу.
Широко використовується поєднання ТШХ з іншими методами, зокрема з високоефективної рідинної хроматографією. Наприклад, такий прийом застосовують при аналізі стічних вод. Спочатку аналізований зразок можна розділити на шпальтах ВЕРХ. Після цього окремі фракції наносять на платівки ТШХ і проводять розділення з використанням методики АМХП. Таким чином в аналізованій суміші розділяється до 30 окремих фракцій. У кожній з цих фракцій, у свою чергу, на платівці ТШХ визначається до десяти сполук. В окремих випадках у зразках таким чином виявляли присутність до 300 речовин. Такий прийом продемонстрував ефективність сумісного використання двох методів при визначенні речовин в діапазоні концентрацій від нанограмів до пікограмів.
Застосування планарної хроматографії в аналізі складних сумішей органічних сполук. Можливості тонкошарової хроматографії в аналізі різних об'єктів можна проілюструвати на прикладі аналізу поліциклічних ароматичних вуглеводнів (ПАВ), гербіцидів на основі фенілмочевіни і стеролів у харчових продуктах.
Добре відомо, що деякі ПАУ володіють канцерогенною активністю. Їх аналіз актуальний з екологічної точки зору: вони присутні в слідових кількостях у мінеральному маслі, повітрі, воді, вихлопних газах, а також у харчових продуктах. Норми по питній воді встановлюють їх граничну концентрацію в 0,2 мкг / л для шести ПАУ, одним з яких є бензо (а) пірен
Для розділення ПАУ та кількісного визначення їх у питній воді була використана ВЕТСХ з флуоріметріческім детектуванням. Специфічність флуоріметріческого визначення досягалася дуже тонким вибором довжин хвиль збудження і реєстрації, що дозволило детектувати кожен окремий компонент на пікограммовом рівні навіть при неповному розділенні речовин.
Визначення гербіцидів на основі фенілмочевіни використовуваних для обробки рослин, за однією з нормованих методик проводиться методом ТШХ. Швидкість переміщення речовин на платівках визначається природою замісників в них. На рис. 5 наведені результати фотометричного детектування (l = 254 нм) визначених з'єднань після одно-та дворазового елюювання.
Стероли - похідні вуглеводнів стерана, що має гідроксильну групу у третій позиції. Вони широко поширені в природі і (залежно від походження) поділяються на зоостероли і фітостероли. Найбільш важливими з них є холестерол (в російській літературі холестерин), 7-дігідрохолестерол, b-ситостерол, стігмастерол і ергостерол
Стероли мають важливе значення для характеристики жирів (рослинні і тваринні), а холестерол, як відомо, за певних умов може підвищувати ризик появи інфаркту. Рослинні жири містять здебільшого поліненасичені жирні кислоти і лише сліди холестеролу. На підставі фізіологічних аспектів харчування рекомендується вживати більше рослинних жирів, зокрема маргарину, та визначення стеролів в маргарині є важливою характеристикою його якості. Для контролю його змісту можна використовувати різні види хроматографії, в тому числі і ТШХ. Після екстракції стероли можна поділити в ВЕТСХ камері на платівці імпрегнованої нітратом срібла. Для детектування використовується флуоресцентний детектор. Межа виявлення при цьому становить 3 нг / зону. [5, 6]
Розвиток процесу хроматографування у часі:

Крок 1

Крок 2

Крок 3

Крок 4

Крок 5

Крок 6

Крок 7
Глава 3. ПРИКЛАДИ ВИКОРИСТАННЯ тонкошарової хроматографії в АНАЛІЗІ ПРИРОДНИХ ВОД
Метод тонкошарової хроматографії визначення ХОП у природних водах. [11]
Метод заснований на виведенні ХОП з води гексаном, сернокислотной очищення екстракту і визначенні в тонкому шарі сорбенту на оксиді алюмінію, силікагелі або платівках Силуфол в різних системах рухливих розчинників з проявом місць локалізації пестицидів різними проявляють реагентами.
Підготовка до визначення. Ретельно промиту хромовою сумішшю, содою, дистильованою водою і висушену платівку протирають етиловим спиртом або ефіром і покривають сорбційної масою. Масу готують наступним чином. Змішують 50 г просіяного через сито з розміром отворів 0,149 мм оксиду алюмінію у фарфоровій ступці з 5 г сульфату кальцію, додають 75 мл дистильованої води і перемішують у ступці або колбі до утворення однорідної маси. На платівку 9 * 12 см наносять 10 г сорбційної маси (на платівку 13 Х 18 см - 20 г) і, похитуючи, рівномірно розподіляють по всій платівці. Платівки сушать при кімнатній температурі 18-20 год, можна сушити 20 хв при кімнатній температурі, а потім 45 хв в сушильній шафі при 110 ° С.
Змішують 35 г силікагелю КСК, просіяного через сито з розміром отворів 0,149 мм, з 2 г сульфату кальцію і 90 мл дистильованої води і перемішують у ступці або колбі до однорідної маси. Наносять на платівки і сушать, як зазначено вище. Порція розрахована на 10 платівок.
Якщо пластинки з тонким шаром силікагелю темніють після УФ-опромінення, силікагель перед застосуванням треба очистити від домішок. Для цього силікагель заливають на 18-20 год розведеною соляною кислотою (1: 1), кислоту зливають, промивають силікагель водою і кип'ятять в круглодонні колбі 2-3 год з розведеною азотною кислотою (1:1), промивають проточною водопровідною, потім дистильованою водою до нейтральної реакції промивних вод, сушать у сушильній шафі 4-6 год при 130 0 з. Силікагель подрібнюють і просіюють через сито з розміром отворів 0,149 мм.
Пластинки для хроматографії Силуфол UV-254 (ЧССР) перед використанням импрегнирующими о-толідіном. Для цього кожну платівку опускають на 0,5 см в 0,1%-ний розчин про-толідіна в ацетоні, налитий у камеру для хроматографування. Пост того як фронт розчинника підніметься до верхнeгo краю пластинки, її виймають і сушать на повітрі, уникаючи прямого сонячного світла. Після цього пластинки готові до роботи. Платівки, насичені о-толідіном, зберігають в ексикаторі.
Платівки Силуфол UV-254 попередньо промивають дистильованою водою в хроматографічної камері, висушую на повітрі і безпосередньо перед використанням активують в сушильній шафі 4 хв при 65 ОС.
Хід визначення. Екстракцію ХОП і концентрування екстракту проводять за схемою, викладеної вище, при визначенні ХОП методом ГЖХ. При необхідності екстракти обробляють концентрованою сірчаною кислотою, як вказано в тому ж розділі.
Сконцентрований до 1-2 мл екстракт (без очищення або після сернокислотной очищення) кількісно за допомогою ацетону переносять у конічну пробірку місткістю 5 мл. У пробірку поміщають заплавленний у верхній частині скляний капіляр і видаляють розчинник на гарячій водяній бані до обсягу 0,2-0,3 мл. Залишок кількісно, ​​за допомогою того ж скляного капіляра, але з відламати запаяним кінцем, наносять на хроматографічну платівку в одну точку, так щоб діаметр плями не перевищував 1 см. Залишок екстракту в колбі змивають трьома порціями по 0,2 Мл діетилового ефіру, які завдають в центр першого плями. Праворуч і ліворуч від проби на відстані 2 см наносять стандартні розчини, що містять 1, 3, 5, ... , 10 мкг досліджуваних препаратів (або інші кількості препаратів, близькі до обумовлених концентрацій препаратів).
Платівки з нанесеними розчинами поміщають в хроматографічну камеру, на дно якої за 30 хв до початку хроматографування наливають рухливий розчинник. При використанні пластинок з тонким шаром оксиду алюмінію або силікагелю в якості рухомого розчинника застосовують н-гексан або суміш гексану з ацетоном у співвідношенні 6: 1 для препаратів, R, яких в гексані нижче 0,3. При використанні платівок Силуфол рухомим розчинником є ​​'1%-ний розчин ацетону в гексані, а при використанні платівок Силуфол, насичені о-толідіном, - гексан з діетіловим ефіром у співвідношенні 49: 1. Край пластинки з нанесеними розчинами може бути по груже в рухомий розчинник не більш ніж на 0,5 см.
Після того як фронт розчинника підніметься на 1О см, платівку виймають з камери і залишають на кілька хвилин для випаровування розчинника. Далі платівку зрошують одним з виявляють реактивів і піддають дії УФ-променів 10 - 15 хв (лампа ПРК-4). Платівки слід розташовувати на відстані 20 см від джерела світла.
При обробці хроматограм проявляють реактивами на основі нітрату срібла ХОП проявляються на хроматограмі у вигляді сіро-чорних плям на білому тлі. Забарвлення плям стійка кілька днів.
Після обробки платівок ортотолідіновим реактивом і УФ - опроміненням гексахлоран та ефіросульфонат проявляються через 20-35 хвилин у вигляді зелено-помаранчевих плям, стійких 2-3 дні.
Визначення поліароматичних вуглеводнів в об'єктах навколишнього середовища методами рідинної і тонкошарової хроматографії. [7]
Було визначено зміст поліароматичних вуглеводнів (ПАВ), зокрема, бенз (а) пірену в сніжному покриві. Пробопідготовка здійснювали екстракцією діетіловим ефіром. Якісний аналіз здійснювали методом тонкошарової хроматографії. Проби наносили на пластину Silufol UV-254 і здійснювали хроматографічний аналіз у двох системах: система 1 - розчин кофеїну в хлороформі; система 2 - суміш циклогексану і н-гексану. Використання системи 1 дозволило знизити нижню межу виявлення.
Кількісний аналіз здійснювали методом газорідинної хроматографії (ГЖХ). Дослідження проводили на хроматографі «Колір-500» з полум'яно-іонізаційним детектором. В якості сорбенту використовували силіконовий каучук SE-54 з нанесеною на нього нерухомою фазою OV-101. Аналіз проводили в режимі програмування температури від 200 до 310 ° С зі швидкістю 4  С / хв. В якості газу-носія використовували азот. Метод дозволив визначити ПАУ на рівні ГДК.
Денситометр «Сорбфіл» для кількісної ТШХ. [8]
Денситометрія є найбільш зручним методом кількісних розрахунків у тонкошарової хроматографії (ТШХ). Для її реалізації використовуються денситометри, скануючі ТШХ пластину вузьким променем світла певної довжини хвилі, і відеоденсітометри, проводять розрахунки за відеозображень хроматограм. Основними перевагами останніх є висока швидкість обробки і простота документування.
Денситометр «Сорбфіл» (виробництво ЗАТ «Сорбполімер») дозволяє обробляти будь-яку ТШХ, видиму в денному або УФ світлі з довжиною хвилі 254 або 365 нм. Зображення пластини, отримане за допомогою сканера, цифрової або відеокамери передається в комп'ютер. Виходячи з базового положення денситометрії, що розмір та інтенсивність забарвлення плями є функція кількості речовини в плямі, програма «Денситометр Сорбфіл» проводить розрахунок процентного складу речовин в суміші і концентрації речовини в пробі. Відтворюваність вимірювань складає 98% при відносному среднеквадратичном відхилення площі хроматографічних зон менше 4%, що не перевищує значення звичайне для скануючих денситометрів. Результати розрахунків (графіки, таблиці), текстові пояснення, а також зображення хроматограми, можуть бути збережені і віддруковані у вигляді звіту.
Простота конструкції і досить висока точність результатів орієнтовані на лабораторії будь-якого типу. Застосування денситометра «Сорбфіл» не вимагає зміни існуючих методик ТШХ аналізу.
Денситометр «Сорбфіл» сертифікований (сертифікат Держстандарту Росії RU.C.31.001.А № 6488, реєстраційний № 23965-02 в Державному реєстрі засобів вимірювань).
Метод визначення нафтопродуктів тонкошарової
хроматографією з люмінесцентним закінченням. [9,10]
Принцип методу. Метод заснований на виділенні нафтопродуктів з води екстракцією чотирьоххлористим вуглецем, концентруванні екстрак-та і хроматографічному відділенні нафтопродуктів в тонкому шарі окису алюмінію в суміші органічних розчинників: петролейний ефір: чоти-реххлорітстий вуглець: оцтова кислота (70:30:2). Кількісне визна-ня нафтопродуктів проводиться люмінесцентним методом. Метод призначений для аналізу вод із вмістом нафтопродуктів вище 0,02 мг / л. Люмінесцентне визначення засноване на здатності входять до со-ставши нафтопродуктів ароматичних, особливо поліциклічних конденсату ваних вуглеводнів під дією ультрафіолетових променів (λ возб. = 300-400 нм) інтенсивно люминесцировать в короткохвильовій області спектру (λ вимір. = 343 нм, ν = 23040 см -1).
Реактиви
1. Окис алюмінію, безводна
2. Чотирихлористий вуглець, CСl 4, ч.д.а.
3. Сірчанокислий натрій Na 2 SO 4, безводний, х.ч.
4. Петролейний ефір, х.ч.
5. Гексан, С 6 Н 14, х.ч.
6. Оцтова кислота, СН 3 СООН, крижана, х.ч.
7. Рухомий розчинник (петролейний ефір (чи гексан): чотирихлористий вуглець: крижана оцтова кислота)
70 г петролейного ефіру або гексану, 30 мл чотирихлористого вугле-роду і 2 мл крижаної оцтової кислоти струшують в склянці з притертою пробкою. Готують безпосередньо перед вживанням, використовують Протя-гом робочого дня.
8. Фільтри паперові, біла стрічка, d = 6 см
Апаратура
1. Флюоріметр (для люмінесцентного визначення), первинний све-тофільтр (λ возб. = 300-400 нм), вторинний світлофільтр (λ люмен. = 434 нм) з еталоном.
2. Освітлювач ртутно-кварцовий з лампою ПРК-4 і синім светофільт-ром (λ = 400 нм) типу ОЛД-1 -1 шт.
3. апарат для струшування рідин типу АВУ-1 - 1 шт.
4. Пристрій для нанесення тонкого шару окису алюмінію (не-закріпленого) товщиною 1 мм - валик - 1 шт.
5. Вентилятор - 1 шт.
6. Сушильна шафа - 1 шт.
Посуд
1. Хроматографічні пластинки 9х12 - 2 шт.
2. Ділильні воронки на 1 л - 1шт.
3. Колби конічні 50 мл - 1 шт.
4. Колба мірна 100 мл - 1 шт.
5. Пробірка з притертою пробкою, з відміткою 10 мл - 1 шт.
6. Піпетки 5 мл - 1 шт.;
1 мл - 1 шт.
7. Микропипетка з витягнутим кінцем і капіляр - 1 шт.
8. Тигель скляний, d внутр. = 0,15 мм, h = 25 мм
9. Кристалізатор, d = 20см з притертою кришкою - 1 шт.
10. Воронка, d = 4 см - 1 шт.
Хід визначення. Пробу води об'ємом 0,5-1 л поміщають в діли-тільну воронку, додають 25 мл чотирихлористого вуглецю і суміш струшують кілька разів, відкриваючи пробку для випускання пари розчи-рителя. Потім пробу поміщають в апарат для струшування і екстрагують протягом 30 хв. Ділильну воронку зміцнюють у штативі і залишають на 15-20 хвилин до повного розшарування шарів рідини. Потім відкривають кран і шар чотирихлористого вуглецю зливають у конічну колбу з притертою пробкою.
Екстракт сушать 5 г безводного сульфату натрію протягом 30 хвилин і зливають у скляний тигель. Розчинник у тиглі видаляють випаровуванням при кімнатній температурі під струмом повітря від вентилятора. Цю операцію слід проводити у витяжній шафі.
Після повного випаровування розчинника знаходиться в тиглі концентрат кількісно (омиваючи кілька разів стінки тигля малими порціями чотирихлористого вуглецю) переносять на попередньо підготовлену хроматографічну платівку з незакріпленим шаром окису алюмінію. Концентрат поміщають на середину смуги сорбенту на відстані 0,6-0,7 см від нижнього краю так, щоб діаметр плями не перевищував 0,5 см. Для цього концентрат наносять малими (0,005 мл) порціями після випаровування розчинника з попередньої порції екстракту. Не слід наносити на одну смугу більше 0,5 мг нафтопродуктів, тому що при цьому погіршується раз-розподіл суміші.
Хроматографічесую платівку з нанесеними на її смуги пробами поміщають в скляну хроматографічесую камеру, насичену парами рухомого розчинника під кутом 20 о. Товщина шару рухомого розчи-рителя 0,5 см. Плями з нанесеними пробами на повинні бути нижче шару рас-творителя. Через 3 хвилини, коли фронт рухомого розчинника досягне верхнього шару окису алюмінію, платівку виймають і витримують у ви-тяжном шафі протягом 10-15 хвилин для випаровування розчинника.
Платівку поміщають під ультрафіолетовий освітлювач і спостерігають хроматографічні зони: блакитну з R f = 0,9 (вуглеводні), жовту з R f = 0,4 (смоли) і коричневу з R f = 0 (асфальтени та ін.) Відзначають кордону блакитний зони (нафтопродуктів), кількісно переносять її в воронку з паперовим фільтром і елюіруют нафтопродукти 4 мл чотирихлористого вуглецю.
Вимірюють інтенсивність люмінесценції елюатов в ультрафіолетовій області спектру.
Інтенсивність люмінесценції вимірюють на флюоріметре з первинним світлофільтром λ = 320 +390 нм і вторинним λ = 400 +580 нм. Установку діафрагми виробляють за еталоном.
Вміст нафтопродуктів знаходять за відповідним калібру-вочной графіком.
Роздільне визначення летючих фенолів методом тонкошарової хроматографії. [11]
Суть методу.
Летючі феноли спочатку перетворюють в азобарвники з диазотироваться n-нітроаналіном, потім останні поділяють методом тонкошарової хроматографії на оксиді алюмінію. Рухомим розчинником служить хлорбензол. Плями забарвлених сполук вирізають скальпелем, з'єднання ці витягають тим чи іншим органічним розчинником, оксид алюмінію фільтрують і забарвлені сполуки Колориметрують.
Хід визначення. Аналіз стічних вод з відносно високим вмістом летких фенолів. Відбирають такий обсяг аналізованої стічної води, щоб у ній містилося 10-100 мг всіх летких фенолів і відганяють їх. Дистилят підкисляють до рН = 3-4 додаванням 1 н. HCI, насичують кухонною сіллю та обробляю діетіловим ефіром до повного вилучення фенолів. Зазвичай на це витрачається кілька порцій ефіру по 20-30 мл. Повноту вилучення перевіряють якісною реакцією з 4-аміноантіпіріном. З об'єднаної ефірної витяжки феноли кількісно витягають декількома порціями 1,5%-ного розчину їдкого калі і у мірній колбі доводять об'єм лужного розчину до 100 мл. Переносять в ділильну воронку аліквотну частина лужного розчину 1-10 мл, додають 1 мл розведеної (1: 4) сірчаної кислоти, 25 мл 2 н. розчину карбонату натрію і 2,5 мл диазотированного п-нітраніліна. Утворюється суміш азобарвників червоного кольору. Для її витягання обережно доливають 50 мл розведеної (1: 4) сірчаної кислоти (виділяється С0 2!). 25 мл хлорбензолу і взбалтиваютют. Відокремлюють шар хлорбензолу і пропускають його через сухий паперовий фільтр.
Для хроматографічного поділу використовують скляні пластинки розміром 20 Х 10 см. Насипають на скло близько 20 г оксиду алюмінію і прокатування скляною паличкою, на кінці якої надіті гумові трубки, створюють шар товщиною близько 1 мм. На відстані 15 мм від нижнього краю проводя'J .1, стартову лінію і наносять на неї 0,5-1,0 мл хлор бензольного розчину. Потім поміщають платівку в хроматографічну камеру так, щоб вона була нахилена до горизонтальної площини приблизно на 100. У камеру попередньо наливають 80 мл бензолу, рівень його повинен досягати нижнього краю скла. Посудина закривають пришліфованою кришкою і залишають на 20 хв. Протягом цього часу фронт розчинника просувається до верхнього краю шару адсорбенту. На відстані 1-1,5 см від стартової лінії з'являється рожево-бузкове пляма фенолу (Rr = Е 0,1}, далі, на відстані (-8 см від старту утворюється сіро-бузкове пляма о-крезолу і на відстані близько 13 см -світло-коричнева пляма m-крезолу і n-крезолу.
Потім скло виймають, висушують на повітрі під тягою і вирізують скальпелем забарвлені плями. забарвлені ділянки адсорбенту, що містять фенол і о-крезол, обробляють окремо ізопропанольной сумішшю порціями по 10 мл і фільтрують оксид алюмінію через скляний фільтр № 4 або відокремлюють його центрифугуванням. Оптичну щільність отриманих розчинів вимірюють у кюветі з товщиною шару 20 мм при λ = 540 нм. За калібрувальним графіками знаходять вміст фенолу і про-крезолу.
Адсорбент з плямою, утвореним похідними т-крезолу і п-крезолу, обробляють 10 мл хлорбензолу і по відділенні адсорбенту вимірюють оптичну щільність отриманого розчину в кюветі з товщиною шару 20 мм при λ = 450 нм. Зміст цих сполук знаходять за калібрувальним графіком.
Аналіз очищених стічних вод і природних вод, що містять леткі феноли в дуже малих концентраціях.
До дистиляту, отриманого з 1 л аналізованої води, додають 1,5 мл 1 н. розчину їдкого натру і насичують кухонною сіллю при кімнатній температурі. Потім розчин переносять в ділильну воронку, додають 2 мл 1 н. соляної кислоти і проводять екстракцію, додаючи 50 мл діетилового ефіру і збовтуючи 10 хв. Переносять ефірний шар в невелику ділильну воронку і беруть із нього летючі феноли, додаючи 10 мл 1,5%-ного розчину їдкого калі, і сильно збовтують. Весь отриманий лужний розчин використовують для отримання азобарвників. Для цього його вносять в маленьку ділильну воронку, додають 1 мл розведеної (1: 4) сірчаної кислоти, 10 мл 2 н. розчину карбонату натрію і 1,5 мл розчину диазотированного п-нітроаніліна. Після утворення суміші барвників їх витягують 10 мл розведеної (1: 4) сірчаної кислоти і 5 мл ефіру, сильно збовтуючи.
За допомогою скляного шприца весь ефірний шар по краплях наносять на стартову лінію покритої оксидом алюмінію платівки. Останню поміщають в хроматографічну камеру і далі продовжують, як при визначенні фенолів у високих концентраціях. Вміст фенолів знаходять за калібрувальним графіками.
Глава 4. Сучасним апаратурним ОФОРМЛЕННЯ
Пластини для тонкошарової хроматографії компанії Merck

ТШХ пластини, скляна підкладка, Silica gel 40

Кат №
Опис
Розміри, см
Упаковка, шт
Ціна з ПДВ
Примітка
105634
Silica gel 40 F 254 TLC
20x20
25
4693 Руб.
-

ТШХ пластини, скляна підкладка, Silica gel 60

Кат №
Опис
Розміри, см
Упаковка, шт
Ціна з ПДВ
Примітка
105721
Silica gel 60
20x20
25
5236.4 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
111845
Silica gel 60
20x20 with concentrating zone 20 x 2.5 cm
25
5779.8 Руб.
-
105626
Silica gel 60
10x20
50
5829.1 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
111844
Silica gel 60
10x20 with concentrating zone 10 x 2.5 cm
50
8348.6 Руб.
-
105724
Silica gel 60
5x20
100
6718.4 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
115326
Silica gel 60
2.5x7.5
100
5779.8 Руб.
-
105715
Silica gel 60 F 254
20x20
25
5236.4 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
111798
Silica gel 60 F 254
20x20 with concentrating zone 20 x 2.5 cm
25
5779.8 Руб.
-
105729
Silica gel 60 F 254
10x20
50
5730.4 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
111846
Silica gel 60 F 254
10x20 with concentrating zone 10 x 2.5 cm
50
8052.2 Руб.
-
105714
Silica gel 60 F 254
5x20
100
6817.2 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105808
Silica gel 60 F 254
5x20
25
2185 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105789
Silica gel 60 F 254
5x10
25
2014 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
10х25
1702.3 Руб.
105719
Silica gel 60 F 254
5x10
200
8348.6 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
115341
Silica gel 60 F 254
2.5x7.5
500
12942.8 Руб.
-
105566
Silica gel 60 F 254 GLP
20x20
25
5730.4 Руб.
пластини GLP (Good Laboratory Practice) з індивідуальним лазерним кодуванням
105620
Silica gel 60 F 254 multiformat
20x20 div-scored to 5x10
25
5582.1 Руб.
-
116485
Silica gel 60 WF 254 s
20x20
25
4643.6 Руб.
-
105608
Silica gel F 254
5x20 ex 20x20 div-scored
80
5038.8 Руб.
-
115327
Silica gel F 254
2.5x7.5
100
5779.8 Руб.
-
105802
Silica gel 60 F 254 LuxPlate
5x10
25
2025.3 Руб.
У два рази яскравішим при UV висвітленні в порівнянні зі звичайними пластинами і більш твердим шаром.
105007
Silica gel (monolithic) 10 μm UTLC
60x36
25
9484.7 Руб.
Унікальні ультратонкі пластини UTLC (Ultra Thin Layer Chromatography) з монолітним SiO2 шаром товщиною 10 мкм, що дозволяють збільшити чутливість визначення в порівнянні з HPTLC і забезпечують поділ в пікограммовом діапазон аналізованих

ТШХ пластини, алюмінієва підкладка, Silica gel 60

Кат №
Опис
Розміри, см
Упаковка, шт
Ціна з ПДВ
Примітка
105553
Silica gel 60
20x20
25
3876 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105582
Silica gel 60
20x20 (concentrating zone 20x2.5)
25
4172.3 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
116835
Silica gel 60
5x10
50
1926.6 Руб.
-
105562
Silica gel 60 F 254
500x20 roll
1 рулон
3705 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105554
Silica gel 60 F 254
20x20
25
3876 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105583
Silica gel 60 F 254
20x20 (concentrating zone 20x2.5)
25
4172.3 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105570
Silica gel 60 F 254
10x20
25
1915.2 Руб.
-
116834
Silica gel 60 F 254
5x10
50
1778.3 Руб.
-
105549
Silica gel 60 F 254
5x7.5
20
790.3 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
116487
Silica gel 60 W
20x20
25
3705 Руб.
-
116484
Silica gel 60 WF 254 s
20x20
25
3754.4 Руб.
-

ТШХ пластини, пластикова підкладка, silica gel 60

Кат №
Опис
Розміри, см
Упаковка, шт
Ціна з ПДВ
Примітка
105748
Silica gel 60
20x20
25
4050.7 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105735
Silica gel 60 F 254
20x20
25
4225.6 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105749
Silica gel 60 F 254
500x20 roll
1 рулон
4050.7 Руб.
pH 7.0 - 7.4 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)

ТШХ пластини, скляна підкладка, хімічно модифіковані фази

Кат №
Опис
Розміри, см
Упаковка, шт
Ціна з ПДВ
Примітка
105746
Silica gel 60silanized TLC
20x20
25
8447.3 Руб.
pH ~ 7 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105747
Silica gel 60 F 254 silanized TLC
20x20
25
8447.3 Руб.
pH ~ 7 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
115388
RP-8 F 254 s TLC
20x20
25
14770.6 Руб.
-
115424
RP-8 F 254 s TLC
10x20
50
18426.2 Руб.
-
115682
RP-8 F 254 s TLC
5x20
50
10423.3 Руб.
-
115684
RP-8 F 254 s TLC
5x10
25
3085.5 Руб.
-
115389
RP-18 F 254 s TLC
20x20
25
14770.6 Руб.
-
115423
RP-18 F 254 s TLC
10x20
50
18426.2 Руб.
-
115683
RP-18 F 254 s TLC
5x20
50
10423.3 Руб.
-
115685
RP-18 F 254 s TLC
5x10
25
2888 Руб.
-

ТШХ пластини, алюмінієва підкладка, хімічно модифіковані фази

Кат №
Опис
Розміри, см
Упаковка, шт
Ціна з ПДВ
Примітка
105533
NH2 F 254 s TLC
20x20
20
8645 Руб.
-
105559
RP-18 F 254 s TLC
20x20
20
8645 Руб.
-
105560
RP-18 F 254 s TLC
5x7.5
20
1345.2 Руб.
-

ТШХ пластини, Kieselguh, Silica gel 60 / Kieselguh

Кат №
Опис
Розміри, см
Упаковка, шт
Ціна з ПДВ
Примітка
105738
Kieselguhr F 254 TLC
20x20
25
5038.8 Руб.
pH ~ 7 (100 g / l, H 2 O, 20 ° C)
105568
Kieselguhr F 254 TLC aluminiumsheets
20x20
25
4100.1 Руб.
-
105737
Silica gel 60 / Kieselguhr F 254 TLC
20x20
25
4495.3 Руб.
-
105567
Silica gel 60 / Kieselguhr F 254 TLC aluminiumsheets
20x20
25
3507.4 Руб.
-

ТШХ пластини, LuxPlate silica gel

Кат №
Опис
Розміри, см
Упаковка, шт
Ціна з ПДВ
Примітка
105805
LuxPlatesilica gel 60 F 254 TLC
20x20
25
5285.8 Руб.
ТШХ пластини, LuxPlate silica gel, Удвічі яскравішим при UV висвітленні в порівнянні зі звичайними пластинами, більш твердий шар.
105804
LuxPlatesilica gel 60 F 254 TLC
10x20
50
5977.4 Руб.
ТШХ пластини, LuxPlate silica gel, Удвічі яскравішим при UV висвітленні в порівнянні зі звичайними пластинами, більш твердий шар.
105801
LuxPlatesilica gel 60 F 254 TLC
2.5x7.5
100
6175 Руб.
ТШХ пластини, LuxPlate silica gel, Удвічі яскравішим при UV висвітленні в порівнянні зі звичайними пластинами, більш твердий шар.
105803
LuxPlatesilica gel 60 F 254 TLC
5x20
100
6767.8 Руб.
ТШХ пластини, LuxPlate silica gel, Удвічі яскравішим при UV висвітленні в порівнянні зі звичайними пластинами, більш твердий шар.

ЛІТЕРАТУРА
1. Горелік Д.О., Конопелько Л.О., Панков Е.Д. Екологічний моніторинг. У 2 т. СПб.: Крісмас, 2002. - 457с.
2. Хроматографічний аналіз навколишнього середовища. / Под ред. Р. Гробу. М.: Світ, 1979. - 606 с.
3. Зеленін К.Н. Газова хроматографія в медицині / / Соросівський Освітній Журнал. 1996. № 11. С. 20-25.
4. Кірхнер Ю. Тонкошарова хроматографія. М.: Світ, 1981.
5. Хроматографія в тонких шарах / Под ред. Е. Шталя. М.: Світ, 1965.
6. Евгеньев М.І., Євгеньєва І.І., Москва Н.А., Левінсон Ф.С. 5-Хлор-4 ,6-дінітробензофуразан як реагент в тонкошарової хроматографії ароматичних амінів / / Завод. лаб. 1992. Т. 58, № 4. С. 11-13.
7. Назаркіна С.Г. Визначення поліароматичних вуглеводнів в об'єктах навколишнього середовища методами рідинної і тонкошарової хроматографії.
8. Соголовський Б.М. Денситометр «Сорбфіл» для кількісної ТШХ
9. Керівництво по хімічному аналізу поверхневих вод суші (під редакцією А. Д. Семенова) / / Л.: Гидрометеоиздат. - 1977. - 540 с.
10. Уніфіковані методи аналізу вод. Під редакцією Ю.Ю. Лур'є / / М.: Хімія. - 1973. - 376 с.
11. Лур'є Ю.Ю. Аналітична хімія промислових і стічних вод. / / М.: Хімія. - 1984. - 447 с.
12. Таубе П.Р., Баранова А.Г. Хімія та мікробіологія води / / М.: Вища школа. - 1983. - 275 с.
Додати в блог або на сайт

Цей текст може містити помилки.

Екологія та охорона природи | Курсова
204.8кб. | скачати


Схожі роботи:
Високоефективна рідинна хроматографія забруднювачів природних і стічних вод
Тонкошарова хроматографія та її роль в контролі якості харчових продуктів
Похідна спектрометрія і її можливості в хімічному аналізі
Основи розчинення та його використання в хімічному аналізі
Адсорбенти та іонні обмінники у процесах очищення природних і стічних вод
Застосування методу електрофорезу при контролі складу питних природних і стічних вод
Вчення про хімічному виробництві
Організація управління на Рубіжанському хімічному заводі Заря
Організація управління на Рубіжанському хімічному заводі Заря
© Усі права захищені
написати до нас