Метилотрофних бактерій - джерела ізотопно-мічених Н-2 і С-13 амінокислот

[ виправити ] текст може містити помилки, будь ласка перевіряйте перш ніж використовувати.

скачати

БІОТЕХНОЛОГІЯ

Метилотрофних бактерій - ДЖЕРЕЛА ізотопно - Мічені 2 Н-та 13 С-АМІНОКИСЛОТ.

@ О.В. Мосіна.

Московська державна академія тонкої хімічної технології ім. М.В. Ломоносова, 117571.

Вивчено можливість використання різних штамів метилотрофних бактерій для отримання амінокислот, мічених стабільними ізотопами 2 Н і 13 С, як секретується в культуральну рідину в процесі ферментації штамів-продуцентів, так і виділяються з гідролізатів сумарного білка біомаси. Представлені дані щодо адаптації L-фенілаланін-продукуючого штаму факультативних метилотрофних бактерій Brevibacterium methylicum до ростовим середах, містить 2 об.% С 2 Н 3 О 2 Н і 98 об.% 2 Н 2 О і біосинтезу L-фенілаланіну. Для L-лейцин-продукуючого штаму облігатних метилотрофних бактерій Methylobacillus flagellatum проведено культивування на середовищі, що містить 1 об.% 13 СН 3 ОН і 99 об.% Н 2 О. Рівні ізотопного включення 2 Н-та 13 С в амінокислоти були вивчені методом мас-спектрометрії електронного удару у вигляді метилових ефірів N-діметіламінонафталін-5-сульфонільного (дансільних) похідних амінокислот і бензілоксікарбонільних похідних (Z-похідних) амінокислот. Максимальні рівні включення стабільних ізотопів 2 Н-та 13 С в амінокислоти при зростанні метилотрофних бактерій на середовищах, що містять 2 об. % СН 3 ОН і 98 об.% 2 Н 2 O, і 1 об.% 13 CH 3 OH і 99 об.% Н 2 О складають 97,5% і 95% відповідно.

Ключові слова: Стабільні ізотопи. - Brevibacterium methylicum. - Methylobacillus flagellatum. - Культивування на 2 Н 2 О. - Ізотопно-мічені амінокислоти.

ВСТУП

Розробка шляхів биосинтетического отримання амінокислот, мічених 2 Н і 13 С є актуальним завданням для сучасної біотехнології. Вартість отриманих у такий спосіб ізотопно мічених сполук значно нижче, ніж хімічно синтезованих, що становить інтерес для пошуку нових штамів - продуцентів амінокислот, здатних до росту і біосинтезу на ізотопно-мічених середовищах.

Зручними та дешевими джерелами ізотопно-мічених амінокислот можуть бути метилотрофних бактерій, біотехнологічний потенціал яких в даний час загальновизнаний [1,2]. Субстратом для росту метілотрофов при отриманні мічених амінокислот є метанол (або його мічені аналоги З 2 Н 3 О 2 Н / 13 СН 3 ОН), та інші низькомолекулярні з'єднання, наприклад, важка вода (2 Н 2 О) [3]. Однак, високі концентрації 2 Н 2 О в ростової середовищі можуть викликати інгібування росту і розвитку метілотрофов [3]. Незважаючи на негативний біостатичні ефект, що надається важкою водою на клітини, деякі бактерії стійкі до високих концентрацій важкої води в середовищі [4], в той час як рослинні клітини можуть нормально розвиваються при концентраціях не більше 50-75% 2 Н 2 О, а клітини тварин не більше 35% 2 Н 2 О [5]. На відміну від важкої води, при використанні 13 СН 3 ОН в якості джерела мітки немає необхідності проводити попередню адаптацію культури до ізотопного субстрату, так як показано, що ізотопний ефект 13 СН 3 ОН незначний [6]. Тому використання для отримання 13 С-амінокислот облігатних метилотрофних бактерій, які здатні асимілювати тільки метанол як єдине джерело вуглецю і енергії є дуже перспективним.

У плані раннє розпочатих досліджень з метілотрофамі з отримання амінокислот, мічених стабільними ізотопами, практичний інтерес представляє використання метилотрофних бактерій, особливо продуцентів амінокислот для отримання цільових сполук за рахунок біоконверсії низькомолекулярних мічених субстратів [7-10]. Традиційним підходом при отриманні амінокислот є культивування штамів - продуцентів на середовищах, що містять ізотопно-мічені субстрати і 2 Н 2 О з подальшим виділенням мічених амінокислот як з культуральної рідини після ферментації штамів-продуцентів, так і з гідролізатів загального білка біомаси.

Метою даної роботи було вивчення принципової можливості отримання 2 Н-та 13 С-амінокислот за рахунок використання штамів метилотрофних бактерій Brevibacterium methylicum і Methylobacillus flagellatum.

УМОВИ ЕКСПЕРИМЕНТУ.

Бактеріальні штами. Дослідження проводили з генетично маркованими штамами метилотрофних бактерій, отриманими з колекції культур Всеросійської колекції промислових мікроорганізмів (ВКПМ) Державного науково-дослідного інституту генетики та селекції промислових мікроорганізмів:

1. - Brevibacterium methylicum ВКПМ В 5652, лейцінзавісімий штам факультативних метилотрофних бактерій, продуцент L-фенілаланіну.

2. - Methylobacillus flagellatum KT, ізолейцінзавісімий штам облігатних метилотрофних бактерій, продуцент L-лейцину.

У роботі використовували 2 Н 2 O (99,9% 2 Н), С 2 Н 3 О 2 Н (97,5% 2 Н) і 13 СН 3 ОН (97,5% 13 С), отримані з Російського науково-дослідного центру "Ізотоп" (Санкт-Петербург, РФ), а також N-діметіламінонафталін-5-сульфохлорид (дансілхлорід) (Sigma, CША), карбобензоксіхлорід (Войківський хімзавод, РФ).

Умови адаптації. Адаптацію штамів до дейтерію проводили на агаризованих середовищах (2%-ний агар), що містять важку воду. При цьому використовували розсівання культур до окремих колоній на середовищах, що містять східчасто збільшуються концентрації важкої води [9].

Культивування бактерій проводили на мінеральному середовищі М9 [11], як описано в роботі [9].

Гідроліз білка проводили з використанням 6 н. 2 НСl (у 2 Н 2 О) і 4 н. Ва (ОН) 2 (110 0, 24 год) [12].

Екстракцію ліпідів проводили сумішшю хлороформ-метанол (2:1) за методом Блай і Дайера [13].

Метилові ефіри дансіламінокіслот отримували як описано в роботі [8].

Бензілоксікарбонільние похідні амінокислот отримували як зазначено у роботі [14].

Аналітичне та препаративної поділ бензілоксікарбонільних похідних амінокислот культуральної рідини і білкових гідролізатів проводили методом обернено-фазової високоефективної рідинної хроматографії (ВЕРХ) за раніше розробленою методикою [15].

Поділ метилових ефірів данс-амінокислот проводили методом обернено-фазової ВЕРХ на рідинному хроматографі "Knauer" (ФРН), обладнаним насосом "Knauer", УФ-детектором "2563" і інтегратором "С-R 3A" (Shimadzy, Японія). Використовували нерухому фазу: Separon SGX C 18, 7 мкм, 150 x 3,3 мм (Kova, Чехословаччина). Елюювання проводили в системі розчинників: (А) - ацетонітрил-трифторуксусной кислота (20:80 об / об) і (В) - ацетонітрил. Використовували градієнтне елюювання: від 20% В до 100% У протягом 30 хв, при 100% У протягом 5 хв, від 100% В до 20% У протягом 2 хв, при 20% У протягом 10 хв.

Іонообмінних хроматографію білкових гідролізатів проводили на приладі "Biotronic LC 5001" (ФРН), 230 x 3,2 мм, робочий тиск 50-60 атм, швидкість подачі цитратного буфера 18,5 мл / год, нингидрина 9,25 мл / год, детекція при 570 і 440 нм.

Кількісне визначення L-фенілаланіну в культуральній рідині проводили на приладі "Beckman DU-6" (США) при 540 нм, після обробки препаратів культуральної рідини нінгідрином.

Мас-спектри електронного удару похідних амінокислот отримані на приладі "MB-80A" (Hitachi, Японія) при енергії іонізуючих електронів 70 еВ.

РЕЗУЛЬТАТИ І ОБГОВОРЕННЯ.

Отримання штамів - продуцентів амінокислот, адаптованих до максимальних концентрацій 2 Н 2 О в середовищі.

У рамках даної роботи була досліджена можливість адаптації різних штамів метилотрофних бактерій, продуцентів амінокислот до зростання на середовищах з максимальними концентраціями важкої води. Для цього були перевірені два з наявних в колекції "ДержНДІ Генетики" штамів метилотрофних бактерій: штам облігатних метилотрофних бактерій M. flagellatum, продуцент L-лейцину і штам факультативних метилотрофних бактерій B. methylicum, продуцент L-фенілаланіну.

Для проведення адаптації був обраний ступінчастий режим збільшення концентрації 2 Н 2 О в ростових середовищах, так як ми припустили, що поступове звикання організму до 2 Н 2 О буде позитивно впливати на адаптацію. Етапи адаптації метилотрофних бактерій до середах, що містить максимальні концентрації 2 Н 2 О показані на рис. 1 і схемою. Проте всупереч нашим очікуванням, штам облігатних метилотрофних бактерій M. flagellatum виявив підвищену чутливість до важкій воді (інгібування росту бактерій спостерігалося при концентраціях 2 Н 2 О в середовищі 74,5 об.%) [3]. Подальші експерименти щодо адаптації з даним штамом метилотрофних бактерій не проводилися. У зв'язку з цим у наших експериментах з вивчення рівнів включення дейтерію в амінокислоти використовувалися препарати культуральної рідини і біомаса M. flagellatum, отримана із середовища, що містить 74,5 об.% 2 Н 2 О і 1 об.% С 2 Н 3 О 2 Н.

Раннє нами був описаний метод адаптації штаму факультативних метилотрофних бактерій B. methylicum до зростання при збереженні здатності до біосинтезу фенілаланіну на максимально дейтерированного середовищі [7]. У даній роботі були досліджені зразки біомаси штаму B. Methylicum (рис.1), отримані в ході багатоступінчастої адаптації його до важкої воді на середовищах з різним вмістом 2 Н 2 О (від 0; ​​24,5; 49,0; 74,5; про% до 98 об% 2 Н 2 О). Оскільки даний штам метилотрофних бактерій вдалося адаптувати до максимальних концентрацій 2 Н 2 О в ростовий середовищі, дослідження рівнів включення дейтерію в амінокислоти сумарних білків біомаси уявлялося найбільш цікавим.

Факультативні метилотрофних Облігатні метилотрофних

бактерії B. methylicum-джерела бактерії M. flagellatum,

2 Н-амінокислот джерела 2 Н-та 13 С-

амінокислот


Багатоступенева адаптація бактерій до

2 Н 2 О на середовищах, що містять 0; 24,5; 49; 74,5; 98

об.% 2 H 2 O


B. methylicum, адаптований M. flagellatum,

до 98 об.% 2 Н 2 О і 2 об.% С 2 Н 3 О 2 Н уповільнення зростання на

середовищі, що містить 74,5 об.% 2 Н 2 О


Культивування на середовищах, Культивування на середовищі,

містять різні концентрації містить звичайну воду

2 Н 2 О і 1 об.% 13 СН 3 ОН


Культуральна рідина після біомаса біомаса Культуральна рідина після відділення від клітин відділення від клітин

2 Н-секретуються амінокислоти 13 С-секретуються амінокислоти

Гідроліз сумарних білків у

4н. Ва (ОН) 2 або 6 н. 2 НСl (у 2 Н 2 О)


2 Н-та 13 С-амінокислоти в

складі білкових гідролізатів


Обробка DnsCl і CH 2 N 2 Обробка ZСl


Оцінка рівнів ізотопного Звернення-фазова Звернення-фазова ВЕРХ

включення методом мас-ВЕРХ метилових Z-похідних амінокислот

спектрометрії метилових ефірів данс- амінокислот

ефірів данс-амінокислот амінокислот

Оцінка рівнів ізотопного

Схема

Адаптація метилотрофних бактерій до середах, що містить максимальні концентрації 2 Н 2 О і отримання 2 Н-та 13 С-амінокислот.

Вивчення ростових характеристик M. flagellatum на середовищах, що містять СН 3 ОН / С 2 Н 3 О 2 Н / 13 СН 3 ОН та 2 Н 2 О.

Дані по зростанню штаму М. flagellatum на мінімальних середовищах, з 1 об.% СН 3 ОН (С 2 Н 3 О 2 Н / 13 СН 3 ОН) і містять східчасто збільшуються концентрації важкої води наведено в таблиці 1. Як видно з таблиці 1, на середовищах, що містять звичайну воду і аналоги метанолу З 2 Н 3 О 2 Н і 13 СН 3 ОН виходи мікробної біомаси склали 81% і 72% відповідно, а на середовищах з 74,5 об.% 2 Н 2 Про вихід біомаси склав 29%, що в 3,4 рази нижче, ніж у контрольних експериментах, коли використовували просту воду і метанол (табл. 1, досліди 1, 3, 8). Як видно з таблиці 1, стійке зростання у M. flagellatum зберігався лише у середовищах, що містять менше ніж 74,5 об.% 2 Н 2 О. Вище цієї концентрації спостерігалося пригнічення росту.

Таблиця 1.

Вплив ізотопного складу середовища на ріст штаму M. flagellaum.

Номер Компоненти середовища, про% Величина Вихід Час

досвіду лаг-фази біомаси генер.

Н 2 О 2 Н 2 О СН 3 ОН З 2 Н 3 О 2 Н годинник% ч

1

99,0

0

1,0

0

20,0

100

1,1

2

99,0

0

0,5

0,5

21,3

91,0

0,8

3

99,0

0

0

1,0

22,4

81,0

1,0

4

49,5

49,5

1,0

0

50,8

76,0

1,4

5

49,5

49,5

0,5

0,5

52,0

75,0

1,2

6

49,5

49,5

0

1,0

58,5

70,0

1,3

7

24,5

74,5

1,0

0

60,0

29,0

1,4


8


99,9


0

13 СН 3 ОН

1,0


0


20,8


72,0


1,0

Як і слід з літературних даних, введення стабільного ізотопу 13 С не призводить до летальних наслідків для клітини, що ми і спостерігали у випадку з M. flagellatum. У цілому, отримані для M. flagellatum дані можуть свідчити про те, що адаптація до 2 Н 2 О визначається як видовий специфічністю метилотрофних бактерій, так і особливостями їх метаболізму.

Вивчення ростових і біосинтетичні характеристик B. methylicum на середовищах, що містять СН 3 ОН / З 2 Н 3 О 2 Н і 2 Н 2 О.

Дані по зростанню вихідного і адаптованого до 2 Н 2 О штаму B. methylicum і максимального рівня накопичення L-фенілаланіну в культуральній рідині на мінімальних середовищах, що містять 2 об.% СН 3 ОН (С 2 Н 3 О 2 Н) і східчасто збільшуються концентрації важкої води представлені в таблиці 2. Як видно з цих даних, за відсутності дейтерій-мічених субстратів тривалість лаг-фази не перевищувала 24 год (див. таблицю 2, досвід 1). Зі збільшенням концентрації 2 Н 2 О в середовищі тривалість лаг-фази збільшувалася до 64,4 год на середовищах з 98 об.% 2 Н 2 О і 2 об.% С 2 Н 3 О 2 Н (таблиця 2, досвід 10). Відзначено, що тривалість часу клітинної генерації зі збільшенням ступеня ізотопного насичення середовища дейтерієм поступово збільшується, досягаючи 4,9 годин на максимально дейтерированного середовищі. Як видно з табл. 2, досвід 2, С 2 Н 3 О 2 Н не викликав суттєвого інгібування росту і не впливав на виході мікробної біомаси, в ​​той час як на середовищах з 98 об.% 2 Н 2 О мікробний зростання пригнічувався. Так, на середовищі, що містить 98 об.% 2 Н 2 О і 2 об.% С 2 Н 3 О 2 Н, вихід мікробної біомаси був знижений в 3,3 рази по-порівнянні з контролем. Важливо, що вихід мікробної біомаси, час клітинної генерації та рівень накопичення L-фенілаланіну в культуральній рідині при зростанні адаптованого до 2 H 2 O штаму B. methylicum на середовищі, що містить 98 об.% 2 Н 2 О і 2 об.% С 2 Н 3 О 2 Н змінюються незначно (табл. 2, досвід 10 ').

Таблиця 2.

Вплив ізотопного складу середовища на ріст штаму B. methylicum та рівень накопичення L-фенілаланіну в культуральній рідині.

Номер Компоненти середовища, про% Величина Вихід Час ген. Рівень

досвіду лаг-фази біомаси годинник секреції

Н 2 О 2 Н 2 О СН 3 ОН З 2 Н 3 О 2 Н годинник% L-Phe,%

1

98

0

2

0

24,0

100

2,2

100

2

98

0

0

2

30,3

92,3

2,4

99,1

3

73,5

24,5

2

0

32,1

90,6

2,4

96,3

4

73,5

24,5

0

2

34,7

85,9

2,6

97,1

5

49,0

49,0

2

0

40,5

70,1

3,0

98,0

6

49,0

49,0

0

2

44,2

60,5

3,2

98,8

7

24,5

73,5

2

0

45,8

56,4

3,5

90,4

8

24,5

73,5

0

2

49,0

47,2

3,8

87,6

9

0

98,0

2

0

60,5

32,9

4,4

79,5

10

0

98,0

0

2

64,4

30,1

4,9

71,5

10 '

0

98,0

0

2

39,9

87,0

2,9

95,0

* Дані (1-10) наведено для B. methylicum, не адаптованого до щосереди з високим вмістом дейтерію.

Дані 10 'наведені для адаптування B. methylicum.

За рахунок використання даного штаму B. methylicum вдалося отримати десятки міліграм високомеченного дейтерієм фенілаланіну з 20 г клітинної біомаси.

Вивчення рівнів включення ізотопів 2 Н-та 13 С у секретуються амінокислоти метилотрофних бактерій.

Ефективність використання дансільних і Z-похідних амінокислот для мас-спектрометричних досліджень було показано раннє [10, 16]. У даній роботі рівні включення ізотопів 2 Н-та 13 С у мультикомпонентного суміші амінокислот у складі культуральної рідини і білкових гідролізатів визначали методом мас-спектрометрії електронного удару метилових ефірів данс-амінокислот або у вигляді Z-похідних амінокислот після їх препаративного поділу методом обернено-фазової ВЕРХ.

Похідні амінокислот отримували прямий обробкою препаратів культуральної рідини і гідролізатів сумарних білків біомаси карбобензоксіхлорідом (ZCl) або дансілхлорідом (DnsCl) і діазометаном (CH 2 N 2). Реакцію проводили в лужному середовищі у водно-органічному розчиннику в співвідношенні карбобензоксіхлорід (дансілхлорід)-амінокислота, рівним 2:1 (схема 1).

Для лізину, гістидину, тирозину, серину, треоніну та цистеїну поряд з монопроізводнимі було характерне утворення ді-Z-(Dns)-похідних: ді-Z, (Dns)-лізину, ді-Z, (Dns)-гістидину, О, N-ді-Z, (Dns)-тирозину, O, N-ді-Z, (Dns)-серину, O, N-ді-Z, (Dns)-треоніну та N, S-ді-Z, (Dns )-цистеїну (на схемі 1 ці проізодние не показані). Крім цього, з аргініну синтезувався три-Z, (Dns)-аргінін.

Летючість дансілпроізводних амінокислот при мас-спектрометричного аналізу підвищували за рахунок додаткової деріватізаціі по карбоксильної групи (етерифікації) діазометаном. Вибір діазометана як етеріфіцірующего реагенту був обумовлений необхідністю проведення реакції в м'яких умовах, що виключають ізотопний (1 Н-2 Н) обмін в ароматичних амінокислотах.

Дані мас-спектрометрії за рівнями включення стабільних ізотопів 2 Н-та 13 С в бензілоксікарбонільние похідні амінокислот у межах однакових концентрацій важкої води в середовищі не відрізнялися від таких, отриманих для метилових ефірів дансіламінокіслот (точність визначення рівнів ізотопного включення в амінокислоти даним методом становить +5). Дані за рівнями включення 2 Н-та 13 С секретуються амінокислоти досліджуваних штамів наведені в таблиці 3. Для введення дейтерію в амінокислоти B. methylicum використовували мінімальні середовища з 2 об.% СН 3 ОН і різним вмістом 2 Н 2 О в них, оскільки раннє було показано, що внесок З 2 Н 3 О 2 Н в рівні дейтерірованності амінокислот незначний [10].

13 С-амінокислоти були отримані за рахунок культивування штаму M. flagellatum на середовищі, що містить звичайну воду і 1 об.% до 13 CH 3 OH. У всіх аналізованих зразках культуральної рідини не залежно від роду штаму були присутні аланін, валін, лейцин (ізолейцин) і фенілаланін (див. табл. 3). У культуральної рідини M. flagellatum на додаток вищеназваним амінокислотам також накопичувався гліцин.

Таблиця 3.

Рівні включення 2 Н і 13 С в секретуються амінокислоти B. methylicum та M. flagellatum (дані отримані для Z-, і Dns-похідних амінокислот) *.

Амінокислоти


Зміст 2 Н 2 О в середовищі, про%

24,5 49,0 73,5 98,0


1% 13 СН 3 ОН

Гліцин

-

-

-

-

60,0

Аланін

24,0

37,5

62,5

77,5

35,0

Валін

20,0

46,3

43,8

58,8

50,0

Лейцин (ізолейцин)

15,0

47,0

46,0

51,0

38,0

фенілаланін

15,0

27,5

51,3

75,0

95,0

* Дані по включенню 2 Н в амінокислоти наведені для B. methylicum при зростанні на середовищах, що містять 2 об.% CH 3 OH і 24,5; 49,5; 73,5; 98,0 об.% 2 Н 2 О.

Дані щодо включення 13 С наведені для M. flagellatum при зростанні на середовищі, що містить 1 об.% 13 СН 3 ОН і 99 об.% Н 2 О.

У всіх дослідах спостерігалося специфічне зростання рівнів ізотопного включення дейтерію в індивідуальні амінокислоти культуральної рідини при ступінчастому збільшенні концентрацій важкої води в ростовий середовищі (табл. 3). Як видно з таблиці 3, для амінокислот з культуральної рідини, кількість включених атомів дейтерію з вуглецевого скелету молекули варіює в межах 49 об.%-Ної концентрації 2 Н 2 O і становить для фенілаланіну 27,5%, аланіну - 37,5%, валіну - 46,3%, лейцину (ізолейцин) - 47%.

Як і слід було очікувати, для отримання 13 С-амінокислот за рахунок мікробної біоконверсії 13 СН 3 ОН, попередня адаптація не є необхідним етапом, оскільки цей ізотопний субстрат не робить істотного впливу на ростові та біосинтетичні характеристики метілотрофов. Мас-спектр культуральної рідини M. flagellatum, отриманої після обробки дансілхлорідом і діазометаном з середи, що містить 1 об.% 13 СН 3 ОН і 99 об.% Н 2 О зображений на рис. 2, б (Мас-спектр наведено щодо контрольних умов, де використовували звичайну воду і метанол (а)). Як видно з рис. 2, б, в деріватізованной культуральної рідини М. lagellatum детектируются збагачені ізотопом 13 С піки молекулярних іонів похідних амінокислот з М +. при m / z 337,4; 368,5; 382,3; 420,5, які відповідають за масою аланіну, валін, лейцин (ізолейцин) і фенілаланіну. Так як відношення маси до заряду m / z для лейцину (ізолейцин) в мас-спектрах електронного удару метилових ефірів дансіламінокіслот збігаються, то внаслідок цього не можна точно ідентифікувати структуру сполуки даним методом. Крім вищеназваних піків молекулярних іонів, в мас - спектрі фіксується пік з М +. при m / z 323,2 (замість m / z 322,0 в контролі), відповідний метиловому ефіру данс-гліцину.

У зв'язку з тим, що штам B. methylicum був ауксотрофом по лейцину, а інший штам M. flagellatum - ауксотрофом по ізолейцин, було цікаво вивчити як змінюються рівні включення дейтерію в цих амінокислотах. Для цього лейцин додавали в ростовую середу B. methylicum, приготовану на основі 98 об.% 2 Н 2 О в немічених вигляді. У випадку з M. Flagellatum ізолейцин додавали в середу, приготовану з звичайної води і 1 об.% 13 СН 3 ОН. Як показали наші дослідження, в умовах ауксотрофності по лейцину (ізолейцин) рівень ізотопного збагачення лейцину (ізолейцин), а також метаболічно пов'язаних з ними амінокислот нижче, ніж для інших амінокислот. Так, при зростанні B. methylicum на середовищі, що містить 98 об.% 2 Н 2 О і немічених L-лейцин, рівні включення дейтерію в лейцин (ізолейцин) склали 51,0%, аланін - 77,5%, валін - 58,8% (табл. 3 ). Рівень включення дейтерію в фенілаланін в цих умовах склав 75%. Ця ж особливість проявляється при зростанні M. flagellatum на середовищі з 1 об.% 13 СН 3 ОН та добавкою немічених L-ізолейцин. Як видно з таблиці 3, на відміну від фенілаланіну (рівень ізотопного збагачення - 95%), рівні включення ізотопу 13 С в лейцин (ізолейцин), аланін і валін склали 38,0; 35,0; 50,0% відповідно. Рівень ізотопного збагачення гліцину склав 60%. Підсумовуючи отримані дані, можна зробити висновок про збереження мінорних шляхів метаболізму, пов'язаних з біосинтезом лейцину (ізолейцин) de novo.

Вивчення рівнів включення ізотопів 2 Н-та 13 С в амінокислоти сумарних білків метилотрофних бактерій.

2 Н-та 13 С-мічені амінокислоти у складі гідролізатів білка біомаси були отримані в умовах, аналогічних таким для секретується амінокислот (табл. 4). Хоча в таблиці 4 наведені дані тільки для 10 амінокислот, не викликає сумніву, що в інших амінокислотах рівні ізотопного включення порівнянні, хоча вони не детектируются даним методом. Це припущення підтверджується даними з розділення білкових гідролізатів метилотрофних бактерій методом іонообмінних хроматографії, де детектується вже 16 амінокислот (див. рис. 3).

Отримані дані свідчать про можливість досягнення максимальних рівнів включення стабільних ізотопів 2 Н-та 13 С в амінокислоти. Наприклад, у випадку з дейтерированного амінокислотами цього результату вдалося досягти за рахунок адаптації культури B. methylicum до зростання і біосинтезу на середовищі з максимальною концентрацією 2 Н 2 О. Як видно з табл. 4, при зростанні B. methylicum на даному середовищі, що містить 98 об.% 2 Н 2 О, рівні включення 2 Н в залишки гліцину, аланіну, і фенілаланіну становлять 90, 97,5, і 95% відповідно. Як і слід було очікувати, в цих умовах мітка розподілена рівномірно по всіх положень вуглецевого скелета молекул амінокислот.

В експериментах з отримання амінокислот за рахунок біоконверсії 13 СН 3 ОН метилотрофних бактерій M. flagellatum була показана ефективність мічення амінокислот 13 С. Так, в фенілаланіну детектувати 80,5% мітки, в аланін - 95%, в гліцин - 90% (див. табл. 4).

Таблиця 4.

Рівні включення 2 Н і 13 С в амінокислоти загальних білків біомаси B. methylicum та M. flagellatum (дані отримані для Z-і Dns-похідних амінокислот *).

Амінокислоти


Зміст 2 Н 2 О в середовищі, про%

24,5 49,5 73,5 98,0


1% 13 СН 3 ОН

Гліцин

15,0

35,0

50,0

90,0

90,0

Аланін

20,0

45,0

62,5

97,5

95,0

Валін

15,0

36,3

50,0

50,0

50,0

лейцин (ізолейцин)

10,0

42,0

45,0

49,0

49,0

фенілаланін

24,5

37,5

50,0

95,0

80,5

тирозин

20,0

48,8

68,8

92,8

53,5

Серін

15,0

36,7

47,6

86,6

73,3

аспарагінова кислота

20,0

36,7

60,0

66,6

33,3

глутамінова кислота

20,0

40,0

53,4

70,0

40,0

Лізин

10,0

21,1

40,0

58,9

54,4

* Дані по включенню 2 Н в амінокислоти наведені для B. methylicum при зростанні на середовищах, що містять 2 об.% CH 3 OH і 24,5; 49,5; 73,5; 98,0 об.% 2 Н 2 О.

Дані щодо включення 13 С наведені для M. flagellatum при зростанні на середовищі, що містить 1 об.% 13 СН 3 ОН і 99 об.% Н 2 О.

У всіх експериментах рівні включення 2 Н і 13 С в метаболічно пов'язаних амінокислотах виявили певну коррелляцію. Так, рівні ізотопного збагачення валіну та лейцину, фенілаланіну і тирозину збігаються (див. табл. 4). Рівні ізотопного включення в гліцин і серин, аспарагінової та глутамінової в кислотах також мають близькі величини. Порівнюючи дані таблиці 3 і 4 можна зробити висновок, що рівні ізотопного збагачення секретується амінокислот та відповідних амінокислотних залишків сумарного білка в цілому також корелюють. Причина деяких можна побачити розбіжностей у рівні включення ізотопів у амінокислоти до кінця не з'ясована.

Як і у випадку з секретується амінокислотами, при зростанні бактерій на середовищах, що містять 98 об.% 2 Н 2 О або 1 об.% 13 СН 3 ОН, низькі рівні включення 2 Н-та 13 С у залишки лейцину (ізолейцин) і метаболічно пов'язані з ним амінокислоти, обумовлені ауксотрофностью бактерій в лейцин (ізолейцин).

Виділення ізотопно-мічених амінокислот з культуральної рідини і гідролізатів біомаси метилотрофних бактерій.

У ході виконання роботи було проведено препаративні поділ амінокислот культуральної рідини і гідролізатів біомаси метилотрофних бактерій методами обернено-фазової ВЕРХ у вигляді бензілоксікарбонільних похідних амінокислот. Так, дейтерій-мічений фенілаланін був виділений з культуральної рідини В. methylicum методом обернено-фазової ВЕРХ у вигляді Z-похідного з хроматографічної чистотою 99% і виходом 89%. Хроматографічних чисті 2 Н-та 13 С-амінокислоти були виділені з гідролізатів біомаси B. methylicum та M. flagellatum у вигляді їх Z-похідних в мілліграммових кількостях [8]. Окремі амінокислоти: фенілаланін і лейцин були також хроматографічно виділені з культуральних рідин даних штамів метилотрофних бактерій у вигляді метилових ефірів данс-амінокислот.

Іонообмінних хроматографія амінокислот на колонці "Dowex" добре зарекомендував себе як аналітичний метод для вивчення якісного і кількісного складу білкових гідролізатів метилотрофних бактерій. Хроматограмма гідролізату сумарних білків B. methylicum, отриманих при зростанні бактерій на середовищі, що містить 98 об.% 2 Н 2 О і 2 об.% С 2 Н 3 О 2 Н представлена ​​на рис. 3. Як видно з рис.3, в цьому гідролізаті присутні 16 амінокислот. Оскільки пролін не детектується в даних умовах його визначали при довжині хвилі 440 нм.

Таким чином, проведені дослідження підтвердили ефективність використання метилотрофних бактерій для отримання 2 Н-та 13 С- амінокислот. Запропонований підхід передбачає комплексне використання метилотрофних бактерій, дозволяючи виділяти амінокислоти як з культуральної рідини після ферментації штамів продуцентів, так і з гідролізатів сумарних білків біомаси.

ЛІТЕРАТУРА.

1. Patel GB, Sprott GD, Ekiel I. / / Appl. Environ. Microbiol. - 1993. - V. 59. - N. 4. - P. 1099-1103.

2. John Colby, Howard Dalton. / / Ann. Rev. Microbiol. - 1979. - V. 33. - P. 481-517.

3. Skladnev DA, Baev MV, Shilova S.Yu., et al. / / Proceedings of 6th Europ. Conf. on Biomass for Energy. - Industry and Environment. - Athens. - 1991. - P. 47-51.

4. Katz J., and Crespi HL / / Pure Appl. Chem. - 1972. - V. 32. - P. 221-250.

5. Crespi HL / / Biosynthesis and uses of per-deuterated proteins. in: Synthesis and Applications of Isotopically labeled Compounds, Proceedings of the Second Inter. Symp. - Elsevier. - 1986. - P. 111-112.

6. Karnaukhova EN, Reshetova OS, Semenov SY, Skladnev DA, Tsygankov YD / / Amino Acids. - 1994. - V. 6. 165-176. - P. 165-176.

7. Мосін О.В., Карнаухова Є.М., Пшеничникова О.Б., складні Д.А., Акімова О.Л. / / Біотехнологія. - 1993. - N. 9. - С. 16-20.

8. Єгорова Т.А., Мосін О.В., Єрьомін С.В., Карнаухова Є.М., Звонкова Є.М., Швець В.І. / / Біотехнологія. - 1993. - N. С . 8. - С. 21-25.

9. - 1993. Karnaukhova EN, Mosin OV, Reshetova OS / / Amino Acids. - 1993. - V. 5. - P. 125.

10. Мосін О.В., складні Д.А., Єгорова Т.А., Юркевич А.М., Швець В.І. / / Біотехнологія. - 1996. - N. 3. (У пресі).

11. Міллер Дж. Експерименти в молекулярній генетиці. - М.: Мир, - 1976. - С. 393.

12. Звонкова Є.М., Зотчік Н.В., Філліпович Є.І., Митрофанова Т.К., Мягкова Г.І., Серебреннікова Г.А / / Хімія біологічно активних природних сполук. С . - М.: Хімія, 1970. - С. 65-68.

13. Bligh EG, Dyer WJ / / Can. J. Biochem. Physiol. - 1959. - V. 37. - N. 8. - P. 911-918.

14. Єгорова Т.А., Єрьомін С.В., Мітснер Б.І., Звонкова Є.М., Швець В.І. / / Біотехнологія. - N5. - 1993. - С. 30-35.

15. Egorova TA, Eremin SV, Mitsner BI, Zvonkova EN, Shvets VI / / J. of Chromatography B. - 1995. - V. 665. - P. 53-62.

16. Daniely B. et al. / / J. Org. mass spectrometry. - 1989. - 24. - P. 225-229.

Про. V. MOSIN

Moscow State Academy of Fine Chemical Technology named after MV Lomonosov, 117571.

METHYLOTROPHIC BACTERIA - AS THE SOURCES OF ISOTOPICALLY LABELED 2 H - AND 13 C- AMINO ACIDS.

Н A possibility of using the various strains of methylotrophic bacteria for the preparation of amino acids labeled with stable isotopes 2 Н і С , both secreted into culture medium and obtaining from protein hydrolysates is investigated. 13 С, both secreted into culture medium and obtaining from protein hydrolysates is investigated. С 2 Н 3 О 2 Н and 98 v/v.% 2 Н 2 О and biosynthesis of L-phenylalanine are presented. The data on adaptaition of L-phynylalanine producing strain of facultative methylotrophic bacteria Brevibacterium methylicum to growth media containing 2 v / v.% З 2 Н 3 О 2 Н and 98 v / v.% 2 Н 2 О and biosynthesis of L-phenylalanine are presented. С 1 Н 3 ОН . For L-leucine producing strain of obligate methylotrophic bacteria Methylobacillus flagellatum the cultivation was carried out on a medium containing the ordinary water and 1 v / v.% 13 З 1 Н 3 ОН. Н - and 13 С incorporation in amino acids were studied using the electron impact mass-spectrometry method of methyl esters of dansyl -and carbobenzoxychloride - derivatives of amino acids. The levels of 2 Н - and 13 С incorporation in amino acids were studied using the electron impact mass-spectrometry method of methyl esters of dansyl-and carbobenzoxychloride - derivatives of amino acids. Н - and 13 C incorporation into amino acids while growing of methylotrophic bacteria on media containing 2 v/v CH 3 OH and 98 v/v.% 2 Н 2 O, and 1 v/v.% 13 CH 3 OH and 99 v/v. The levels of 2 Н - and 13 C incorporation into amino acids while growing of methylotrophic bacteria on media containing 2 v / v CH 3 OH and 98 v / v.% 2 Н 2 O, and 1 v / v.% 13 CH 3 OH and 99 v / v. H 2 O were found to vary from 97,5% to 95%.

Додати в блог або на сайт

Цей текст може містити помилки.

Біологія | Стаття
120.4кб. | скачати


Схожі роботи:
Метилотрофних бактерій джерела ізотопно мічених Н 2 і З 13 амінокі
Розробка методів біотехнологічного отримання білків амінокислот і нуклеозидів мічених дейтерієм
Ідентифікація генів біосинтезу ектоіна у метилотрофних бактерій Methylarcula marina
Фізіологічна адаптація нового RuMP штаму факультативних метилотрофних бактерій Brevibacterium
Технологія біосинтезу амінокислот
Екологія бактерій
Життєдіяльність бактерій
Гормони похідні амінокислот Катехоламіни
Властивості та роль в біохімічних процесах амінокислот входять до з
© Усі права захищені
написати до нас